霍瑞,周亭亭,趙景娜,王昊乾,陳永福
(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學乳品生物技術與工程教育部重點實驗室農(nóng)業(yè)農(nóng)村部奶制品加工重點實驗室呼和浩特010018)
為了提高青貯的發(fā)酵品質(zhì),減少有害菌生長,通常會在其發(fā)酵過程添加青貯發(fā)酵劑[1]。乳酸菌種屬、數(shù)量和活性都對飼料的品質(zhì)起到至關重要的作用[2]。同型發(fā)酵乳酸菌可產(chǎn)大量的乳酸,降低pH,抑制細菌增殖;而異型發(fā)酵乳酸菌能產(chǎn)生乙酸等有機酸來抑制真菌的生長[3]。L.plantarum是同型乳酸菌,具有生長迅速和產(chǎn)酸能力強的特性,然而關于玉米青貯中添加L.plantarum的報道鮮少:Contreras-Govea等[4]研究發(fā)現(xiàn),L.plantarum能提高全株玉米青貯蛋白質(zhì)含量;L.plantarum與L.buchneri混合添加提高牧草有氧暴露穩(wěn)定性[5];對玉米[6]和高粱[7]青貯也有積極作用。
本實驗室以L.plantarum IMAU80162、IMAU10585和IMAU20013為研究對象,評價單菌和復合發(fā)酵對全株玉米青貯發(fā)酵期、有氧暴露期的活菌數(shù)和發(fā)酵品質(zhì)的影響,為菌株在青貯應用提供重要研究基礎。
供試乳酸菌包括L.plantarum IMAU80162、IMAU10585和IMAU20013均由內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學乳品生物技術與工程教育部重點實驗室保藏和提供。
全株玉米于秋季在呼和浩特市郊區(qū)收割,其水分含量為65%~75%,并剪成1.5×1.5×1.5 cm的小塊備用。
MRS固體培養(yǎng)基、孟加拉紅培養(yǎng)基(酵母菌和霉菌),廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂培養(yǎng)基,上海致化化學科技有限公司;活性炭,國藥集團化學試劑科技有限公司;葡萄糖,天津風船;硫酸銅,天津市永大化學試劑有限公司;硫酸鉀,天津市北方天醫(yī)化學試劑廠;色譜柱BEHC18(2.1×100 mm,1.7μm),waters Waters公司;可變波長檢測器(VWD);UV-1700分光光度計;自動化凱氏定氮儀,上海晟聲自動化分析儀器有限公司。
試驗設置5組分別為:①空白對照組;②添加IMAU80162組;③添加IMAU10585組;④添加IMAU20013組;⑤IMAU80162、IMAU10585和IMAU20013等比例添加組。將L.plantarum以1×105cfu/g的接種總量噴灑至全株玉米小塊,混合均勻后以每袋200 g分裝在錫箔紙袋并進行真空塑封,25℃發(fā)酵貯藏。貯藏0、3、42天時隨機取3袋樣品測定相應指標,第42d將剩余樣品進行有氧暴露,并置于25℃培養(yǎng)箱,檢測青貯溫度變化,升高2℃時取樣測定相應指標。
將20 g玉米青貯加到含有80 g無菌生理鹽水的三角瓶中,搖床150 rmp/min搖動30 min,取0.5 mL上清液,稀釋到適合的梯度對乳酸菌、酵母菌,霉菌和大腸桿菌活菌計數(shù),對應的培養(yǎng)基分別為MRS固體培養(yǎng)基、孟加拉紅培養(yǎng)基(酵母菌和霉菌)和結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂培養(yǎng)基。之后將樣品放置到攪拌機中,高速攪拌30 s,然后4層紗布過濾得勻漿,留樣備用。
1.5.1 干物質(zhì)
本實驗采用的是微波爐法[9]。稱取10 g玉米青貯放置于微波爐的塑料盤中,在高功率(600 W)條件下加熱1.5 min,稱重,重復上述操作直至前后兩次稱重相差小于0.01 g。
1.5.2 pH值及有機酸
取1.3中青貯勻漿10 mL,測定其pH值。之后將勻漿12 000 g離心15 min取上清液,過0.22μ濾膜,上機測試。
標準溶液的配制:準確稱取乳酸、乙酸對照品各3.0000 g,先在燒杯中溶解后,轉(zhuǎn)移到100 mL棕色容量瓶中,加超純水定量至刻度,分別得到30 mg/mL的儲備液。根據(jù)需要稀釋成系列標準溶液。
HPLC分析條件[10]:色譜柱:BEH C18(2.1×100 mm,1.7μm.;檢測器:可變波長檢測器(VWD);流速:0.4 mL/min;柱溫:45℃;進樣量:4μL;流動相A:水(millipore)+0.1%甲酸,流動相B:乙腈(fisher,optimicalLCMS級別,F(xiàn)isher公司)+0.1%甲酸;梯度洗脫(B%):0 min(20%)-2 min(50%)-2.1 min(95%)-3 min(95%)-3.1 min(20%)-5 min(20%)。
1.5.3 可溶性碳水化合物
本實驗采用的是蒽酮硫酸法[11]。取含有4 mL的蒽酮溶液的試管(15×2.5 cm),冰上預冷10 min,將經(jīng)活性炭脫色后的提取液1 mL快速加到上述試管中,振蕩10 s,再放置到冰上;所有反應液加完后,將反應試管置于沸水浴10 min,隨后在冰上靜置5 min;分光光度計(UV-1700)測定分光光度值,配制濃度分別為0.1、0.075、0.05、0.025和0 mg/mL的葡萄糖溶液重復上述操作,做標準曲線。
1.5.4 粗蛋白含量及氨態(tài)氮
準確稱取玉米青貯1±0.0002 g,送至蒸餾瓶底部,加入0.2 g硫酸銅,3.5 g硫酸鉀,10 mL濃硫酸和2顆玻璃珠,放入消化爐,240℃加熱60 min之后,升溫到400℃繼續(xù)加熱至液體呈透明藍綠色,最后用自動化凱氏定氮儀進行蒸餾、滴定[12]。
采用SPSS18.0和Excel軟件對試驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。
青貯前檢測原料中的乳酸菌、酵母菌、霉菌、大腸桿菌、干物質(zhì)、粗蛋白、氨態(tài)氮、可溶性碳水化合物、pH值和有機酸。結(jié)果見表1,玉米原料微生物菌群豐富,可溶性碳水化合物和粗蛋白的含量適中,pH值為4.85,適合各種有益、有害菌的生長。
表1 青貯前全株玉米的化學成分
由表2可以看出,青貯第3天,乳酸菌的數(shù)量急劇增長。其中,IMAU10585和混菌處理組的乳酸菌活菌數(shù)達到(4.05±0.31)×108cfu/g和(3.98±0.86)×108cfu/g,明顯高于對照組(P<0.05)。此后,乳酸菌數(shù)量逐漸減少。酵母菌、大腸桿菌的數(shù)量在此時未檢出,而所有處理組的霉菌數(shù)明顯低于對照組(P<0.05)。
乳酸菌生長繁殖,代謝旺盛,產(chǎn)生了大量的乳酸,所有處理組乳酸含量均顯著大于對照組(P<0.05)。隨著青貯的發(fā)酵,乳酸含量逐漸積累增多。IMAU80162與對照組乙酸含量差異不顯著(P>0.05),顯著高于其他實驗組(P<0.05)。青貯飼料pH值的變化主要與有機酸的變化相關。青貯第3天時所有組的pH值均降到4.0以下,除IMAU80162外,其他組的pH值均顯著低于對照組(P<0.05)。3 d之后pH值一直保持相對穩(wěn)定,IMAU10585組pH值下降最快、最低。
第42天,對照組、IMAU80162組、混菌處理組的乳酸菌活菌數(shù)比IMAU10585和IMAU20013組高,達到105數(shù)量級,如表2所示。IMAU10585、IMAU20013和混菌組的酵母菌活菌數(shù)顯著高于(P<0.05)對照組,這可能是由于耐酸酵母菌在低pH和高酸度的情況下生長繁殖造成的。發(fā)酵后期仍未檢出大腸桿菌和霉菌,證明乳酸菌的生長代謝形成的高酸環(huán)境及其產(chǎn)物能長時間抑制有害菌的生長。
表2 添加乳酸菌對玉米青貯發(fā)酵參數(shù)及微生物組成的影響
整個青貯期間,干物質(zhì)的變化都不大,可能是由于整個發(fā)酵過程在密封的鋁箔袋中進行,水分不散失或散失較少。類似地,粗蛋白的變化在各組間不存在顯著性差異(P>0.05),整體含量略有增長,但反應蛋白質(zhì)質(zhì)量水平的氨態(tài)氮指標數(shù)值出現(xiàn)了差異性(P<0.05),說明L.plantarum的添加對蛋白質(zhì)起到了一定的保護作用。可溶性碳水化合物作為乳酸菌產(chǎn)乳酸的原料,其含量到青貯第3天已經(jīng)迅速下降,之后緩慢較少,其消耗的程度與乳酸菌活菌數(shù)的變化是一致的。
如表3所示,有氧暴露期間,乳酸菌數(shù)減少,混菌處理組,IMAU800162組的活菌數(shù)明顯高于對照組(P<0.05)。接觸空氣后,各實驗組酵母菌急劇增長,對照組、IMAU800162組、混菌處理組差異不顯著(P>0.05),未檢測出大腸桿菌和霉菌。
表3 添加乳酸菌對有氧暴露期的玉米青貯發(fā)酵參數(shù)及微生物組成的影響
各組pH值均有所升高,但各組間無顯著性差異(P>0.05)。乳酸含量相較于發(fā)酵前期出現(xiàn)了一定程度的下降,但對照組的乳酸含量、乙酸含量顯著高于其他實驗組(P<0.05)。干物質(zhì)、可溶性碳水化合物、粗蛋白的含量呈不同水平地降低,但IMAU20013組干物質(zhì)和可溶性碳水化合物含量明顯高于其它組(P<0.05),分別達到32.95%和4.23 mg/mL。各組氨態(tài)氮比例增加,其中,除IMAU10585組外,其他處理組氨態(tài)氮比例明顯低于對照組(P<0.05)。
在作物表面附生著大量的微生物,一部分是對青貯有利的,比如乳酸菌;另外一部分是有害的,比如腐敗菌、酵母菌和霉菌等[13]。實驗中的全株玉米干物質(zhì)、粗蛋白含量、可溶性碳水化合物適中,pH值適合各類微生物生長繁殖,這些可能與玉米的收割季節(jié)以及種類有關[14]。
全株玉米是包括玉米果實的完整株玉米,是青貯的主要原材料,含糖量較高,有利于發(fā)酵的進行。在青貯初期,添加乳酸菌的各處理組乳酸菌總數(shù)顯著高于對照組,而酵母菌、霉菌和大腸桿菌的數(shù)量均顯著地降低了,各處理組的乳酸含量均顯著高于對照組,pH值也迅速降低至4.00以下,說明添加的各乳酸菌均能很好的定植和繁殖,并抑制有害菌的增殖。
在青貯后期,對照組和實驗組的所有樣品仍保持著低pH值環(huán)境,未檢出大腸桿菌和霉菌。但在乳酸菌、酵母菌總數(shù)方面,對照組與某些處理組差異不顯著。Hu[15]和Pedroso[16]的實驗中同樣出現(xiàn)了類似情況。這可能因為添加乳酸菌的總數(shù)為105cfu/g,僅為青貯前全株玉米乳酸菌數(shù)的1/50,隨著青貯原有乳酸菌的生長繁殖,添加的乳酸菌在后期并不占優(yōu)勢。有學者指出,添加乳酸菌達到原料乳酸菌的2~10倍才能使添加的菌群在青貯中占據(jù)優(yōu)勢地位[17-18]。
青貯研究中,乳酸與乙酸含量的比值間接反映了青貯中同型和異型發(fā)酵乳酸菌的比重[1]。如圖1所示,5組青貯飼料中,對照組和IMAU80162的比值相對較小,也就是能產(chǎn)生乙酸的乙酸菌、異型發(fā)酵乳酸菌相對較多。乙酸能對酵母菌產(chǎn)生一定抑制作用[19],這與本實驗酵母數(shù)變化是一致的。雖然酵母菌活動強烈不利于青貯飼料的發(fā)酵,但有研究[20]表明酵母菌能夠提高奶牛干物質(zhì)采食量、產(chǎn)奶量以及消化粗蛋白和酸性洗滌纖維的能力,同時生成乙醇等,使青貯飼料具有酒香味。
圖1 乳酸與乙酸在青貯期間的含量比值變化
青貯過程中青貯飼料營養(yǎng)成分的變化情況,是指包括干物質(zhì)、可溶性碳水化合物和粗蛋白等的變化。干物質(zhì)代表著飼料的潛在可利用潛能,研究指出要獲得較好的青貯品質(zhì)需要干物質(zhì)濃度大于200 g/kg,干物質(zhì)含量高(300~350 g/kg)的青貯玉米可以在一定程度上控制發(fā)酵造成的損失,另外牛對干物質(zhì)含量低于300 g/kg的青貯玉米的消化吸收率會大量減少[21]。本實驗的各組間干物質(zhì)含量變化并不顯著,且隨青貯時間的變化規(guī)律也不明顯。
可溶性碳水化合物和粗蛋白含量也是衡量谷物類青貯品質(zhì)的兩大重要指標[22]??扇苄蕴妓衔锸侨樗峋纬扇樗岬脑?,只有足夠數(shù)量的可溶性碳水化合物,才有可能使乳酸菌生成足夠的乳酸,造成低pH環(huán)境,抑制或殺死有害微生物,達到形成和保存青貯飼料的目的[13]。本實驗中,雖然IMAU100585和IMAU20013組相較于其他組可溶性碳水化合物含量明顯高,但可能與這兩組乳酸菌總數(shù)偏少有關如圖2所示,而混菌處理組在保證乳酸菌數(shù)量的基礎上,可溶性碳水化合物含量仍然高于對照組和IMAU80162處理組,說明乳酸菌的添加一定程度上可以提高青貯飼料的品質(zhì)。
圖2 青貯期間飼料中葡萄糖含量變化
另外,評價玉米飼料的營養(yǎng)品質(zhì)還需看其蛋白質(zhì)含量和蛋白質(zhì)品質(zhì)。在青貯過程中蛋白質(zhì)會降解成非蛋白氮,造成氨態(tài)氮的比例增加[23]。該實驗中的蛋白質(zhì)含量和氨態(tài)氮比例在青貯期并沒有顯著變化,在有氧暴露期,由圖3可見,IMAU80162組、混菌組的氨態(tài)氮明顯低于其他組,說明乳酸菌的添加可以在一定程度上保護蛋白質(zhì)不被消耗。
圖3 玉米青貯中氨態(tài)氮的變化情況
本研究中L.plantarum的添加有助于增加飼料厭氧發(fā)酵和有氧暴露后乳酸菌的數(shù)量,降低pH,減少大腸桿菌、酵母菌和霉菌等有害菌的數(shù)量,提高青貯飼料品質(zhì)和有氧穩(wěn)定性。其中單株IMAU80162抑制霉菌和酵母菌的效果最為顯著,它與IMAU100585,IMAU20013混合使用能有效維持青貯飼料的營養(yǎng)品質(zhì)。但是,不同的L.plantarum及配比能否改善青貯飼料的微生物菌群及營養(yǎng)成分,還需要進一步的探究。