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        紅肉蜜柚果實采后貯藏過程中果皮與汁胞能量代謝的差異

        2022-04-01 07:55:10汪永紅溫佳藝劉順枝胡位榮
        食品科學(xué) 2022年5期

        汪永紅,溫佳藝,劉順枝,胡位榮

        (廣州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,廣東 廣州 510000)

        紅肉蜜柚(Citrus grandisvar. Red-fleshed sweet pomelo)是從琯溪蜜柚(C. grandis)優(yōu)良芽變異單株中選育而成的新品種[1]。柚果的果皮分為3 層,外果皮由子房外壁發(fā)育而成,布滿油胞,含芳香油、臘質(zhì)等物質(zhì);中果皮由子房的中壁發(fā)育而成,即白皮層;內(nèi)果皮由內(nèi)心壁發(fā)育而成,即瓤囊,是柚類果實的食用部分,內(nèi)含汁胞和種子[2];柚果皮適度失水后富有彈性,可阻隔果實內(nèi)外氣體的交換,因此柚類果實采后腐爛率相對較低,但是在貯藏過程中常見汁胞枯水變硬,造成其口感下降,出現(xiàn)“敗絮其中,金玉其外”的現(xiàn)象,影響其經(jīng)濟(jì)價值[3]。近年來研究發(fā)現(xiàn),園藝作物采后衰老與能量合成下降造成的細(xì)胞能量虧損有關(guān)[4-6],Wang Hui等[7]在研究荔枝的過程中發(fā)現(xiàn),荔枝采后衰老過程中,ATP含量顯著下降;Ge Yonghong等[8]發(fā)現(xiàn)用磷酸鈉浸漬處理蘋果能保持蘋果的能量相關(guān)物質(zhì)含量和酶活性,延長蘋果的貯藏保鮮期。因此,探索紅肉蜜柚在衰老過程中外果皮、白皮層和汁胞的相關(guān)能量物質(zhì)含量與相關(guān)酶活性變化的趨勢,是紅肉蜜柚采后貯藏保鮮領(lǐng)域亟待解決的問題。

        果實采收后,由于失去植株的水分和養(yǎng)料的供給,呼吸作用成為生命活動的中心活動。呼吸作用通過把組織中復(fù)雜的有機(jī)物質(zhì)逐步分解成簡單的物質(zhì),最后變成二氧化碳和水,釋放出能量。呼吸作用產(chǎn)生的能量是采摘后的果實進(jìn)行其他生命活動的能量來源,而冷藏是果實采后保鮮的常用手段,可利用合適的低溫降低果實采后的呼吸速率,延長果實的貯藏保鮮期[9-10]。為了揭示紅肉蜜柚果實衰老過程中外果皮、白皮層和汁胞的能量相關(guān)物質(zhì)含量和相關(guān)酶活性的變化規(guī)律,本實驗以8 ℃對紅肉蜜柚進(jìn)行冷藏,并以室溫貯藏為對照,測定分析不同貯藏時間的果實汁胞、白皮層和外果皮的能量代謝相關(guān)指標(biāo),以期從能量代謝的角度闡明紅肉蜜柚衰老過程中出現(xiàn)汁胞枯水而外果皮無明顯變化的原因,為紅肉蜜柚的采后貯藏保鮮提供理論參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        本實驗所用的紅肉蜜柚果實采自廣東省梅州市商業(yè)性生產(chǎn)柚園。挑選大小一致、無病蟲害、無機(jī)械損傷的果實,立即運(yùn)回實驗室。

        施保功(咪鮮胺錳鹽) 美國富美實公司;考馬斯亮藍(lán) 廣州市齊云生物技術(shù)有限公司;甲醇 天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;琥珀酸鈉、ATP 北京索萊寶科技公司;乙二胺四乙酸、磷酸二氫鉀 廣州化學(xué)試劑廠;磷酸氫二鉀 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;氫氧化鈉 天津市永大化學(xué)試劑有限公司;木質(zhì)素含量檢測試劑盒 上海碧云天生物科技有限公司;2,6-二氯靛酚鈉 生工生物工程(上海)股份有限公司;ATP酶測試盒 南京建成生物工程研究所;細(xì)胞色素c 上海源葉生物公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        1260-6460型液相色譜三重串聯(lián)四極桿質(zhì)譜聯(lián)用儀美國Agilent公司;5810R冷凍高速離心機(jī) 德國Eppendorf公司;UV-1800PC型紫外分光光度計 上海美譜達(dá)儀器有限公司;RXZ-430D型智能工氣候培養(yǎng)箱寧波東南儀器有限公司;SZ-93型自動雙重純水蒸餾器上海亞榮生化儀器廠;DW-86L388J型醫(yī)用超低溫保存箱青島海爾特種電器有限公司;WP-RO-208型實驗室超純水機(jī) 四川沃特爾水處理設(shè)備有限公司;301P-01N型臺式pH計 美國Thermo orion公司。

        1.3 方法

        1.3.1 原料處理

        用施保功溶液(施保功與水的體積比為1∶1 500)浸泡整個果實1 min滅菌,取出晾干,先放置室溫預(yù)貯48 h,再用保鮮袋包裝并封口,隨機(jī)分成2 組,分別置于25 ℃(對照)和8 ℃(冷藏)的人工氣候培養(yǎng)箱貯藏,相對濕度為80%~90%[2]。貯藏90 d,每10 d分別取3 個果實,取果實赤道部位,分離外果皮、白皮層和汁胞,分類取樣各1 g,立即將樣品置于-80 ℃超低溫冰箱中速凍貯存?zhèn)溆?。除可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)和木質(zhì)素含量測定的對象僅為汁胞外,其他指標(biāo)測定對象均為外果皮、白皮層和汁胞3 個部分。

        1.3.2 可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)、木質(zhì)素含量及水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定

        可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)采用手持式折光儀測定;木質(zhì)素含量采用木質(zhì)素含量檢測試劑盒測定,結(jié)果以鮮質(zhì)量計。水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)采用烘干后稱質(zhì)量法測定。

        1.3.3 丙二醛含量的測定

        丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量的測定參照J(rèn)annatizadeh等[11]的方法,略作修改。取1 g樣品,加入聚乙烯吡咯烷酮、0.05 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.8)手動勻漿,4 ℃、10 000 r/min離心15 min。取1 mL上清液,加入3 mL 0.5 g/100 mL硫代巴比妥酸,反應(yīng)30 min后離心15 min,取上清液分別測定532 nm和600 nm波長處的吸光度并計算丙二醛含量,單位為μmol/g,結(jié)果以鮮質(zhì)量計。

        1.3.4 能量代謝相關(guān)酶活力測定

        線粒體的提取參照Liang Wusheng等[12]的方法,略作修改。取10 g冷凍樣品,液氮研磨,加入20 mL提取液(50 mmol/L pH 7.5 Tris-HC1、0.25 mol/L蔗糖、0.3 mol/L甘露醇、0.5 g/100 mL聚乙烯吡咯烷酮)冰浴勻漿,4 層紗布過濾至離心管,4 ℃、4 000 r/min離心10 min;取上清液12 000 r/min離心25 min,去上清液,將沉淀用10 mL洗滌液(含10 mmol/L pH 7.2 Tris-HCl、0.25 mol/L蔗糖、1 mmol/L乙二胺四乙酸)洗滌,4 ℃、4 000 r/min離心10 min,取上清液于4 ℃、12 000 r/min下離心25 min,得到的沉淀即為線粒體,用1.5 mL懸浮液(含有10 mmol/L pH 7.2的Tris-HCl、0.25 mol/L蔗糖、1 mmol/L乙二胺四乙酸)懸浮即為粗酶液。粗酶液蛋白質(zhì)含量測定參照Bradford[13]的方法,以牛血清白蛋白為參照標(biāo)準(zhǔn)。

        琥珀酸脫氫酶(succinate dehydrogenase,SDH)活力的測定參照Ackrell等[14]的方法;細(xì)胞色素氧化酶(cytochrome oxidase,CCO)活力參照J(rèn)in Peng等[15]的方法測定,以每毫克蛋白質(zhì)每分鐘吸光度變化0.01為一個SDH或CCO活力單位(U);H+-ATPase和Ca2+-ATPase活力測定采用相應(yīng)試劑盒,以每小時每毫克蛋白分解ATP產(chǎn)生1 μmol無機(jī)磷的量為一個ATP酶活力單位(U)。以上酶活力單位均為U/mg,結(jié)果均以蛋白質(zhì)量計。

        1.3.5 ATP、ADP、AMP含量及能荷的測定

        ATP、腺苷二磷酸(adenosine diphosphate,ADP)、腺苷一磷酸(adenosine monophosphate,AMP)含量及能荷的測定參考Li Peiyan等[16]的方法,略作修改。稱取2 g樣品,液氮研磨,加入6 mL 0.6 mol/L的HClO4,勻漿,4 ℃、12 000 r/min離心30 min,迅速取3 mL上清液用1 mol/L KOH溶液調(diào)pH值至6.5~6.8,隨后用超純水定容至4 mL,過0.22 μm水系濾膜后進(jìn)行高效液相色譜分析。色譜條件:C18反相柱(250 mm×4.6 mm),檢測波長254 nm。流動相A為甲醇,流動相B為0.1 mol/L磷酸鉀緩沖液(pH 7.0)。線性梯度洗脫,進(jìn)樣量為20 μL。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品的保留時間對樣品作定性分析,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品的峰面積進(jìn)行定量分析,ATP、ADP、AMP含量均以原料鮮質(zhì)量計。能荷(energy charge,EC)按下式計算。

        式中:CATP、CADP、CAMP分別表示ATP、ADP和AMP的含量/(μg/g)。

        1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

        結(jié)果均為測定重復(fù)3 次的平均值。實驗得到的數(shù)據(jù)采用Excel 2010軟件進(jìn)行圖表繪制,利用SPSS Statistics 21軟件對結(jié)果進(jìn)行皮爾遜相關(guān)性分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 果實貯藏過程中果皮與汁胞品質(zhì)指標(biāo)的變化

        2.1.1 紅肉蜜柚冷藏過程中汁胞可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)和木質(zhì)素含量的變化

        汁胞中可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)是評價果實品質(zhì)的重要指標(biāo)之一。對照組汁胞的可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)在前20 d直線上升,20 d后波動變化,冷藏果實貯藏20 d后汁胞可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)低于對照組(圖1A),貯藏80 d時,冷藏組和對照組汁胞可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)比采摘時分別增加了8.9%和16.54%,這可能與果實貯藏后期含水量下降有關(guān)。

        果實汁胞木質(zhì)素含量增加是汁胞枯水的表現(xiàn)[17]。由圖1B可知,在整個貯藏過程中,汁胞木質(zhì)素含量整體呈上升趨勢,與佘文琴等[18]的研究結(jié)果一致,對照組果實貯藏至40 d時汁胞木質(zhì)素含量急劇上升至8.2 mg/g,冷藏果實汁胞木質(zhì)素含量驟增時間較對照組延后10 d,貯藏至50 d上升至7.3 mg/g,且整個貯藏過程中,冷藏果實汁胞木質(zhì)素含量均低于相同貯藏時間的對照組,表明冷藏能降低果實汁胞的粒化程度。

        圖1 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)(A)、木質(zhì)素含量(B)的變化Fig. 1 Changes in TSS (A) and lignin (B) contents in juice sacs of redfleshed sweet pomelo during storage

        2.1.2 紅肉蜜柚冷藏過程中水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)的變化

        汁胞枯水的發(fā)生被認(rèn)為與水分在果實果皮、囊瓣和汁胞之間的流動有關(guān)[19]。柚果在貯藏過程中,外果皮、白皮層和汁胞的水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)都呈波動下降趨勢。如圖2A所示,貯藏前30 d,對照組汁胞水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)高于冷藏果實汁胞,貯藏60 d時,冷藏果實汁胞水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)更高,比對照組高0.2%,貯藏至70 d時,冷藏組與對照組比采摘時分別減少了1.11%和1.25%。冷藏組和對照組白皮層的水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)在40 d時差異最大,此時冷藏果實白皮層水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)比對照組高3.4%,貯藏至70 d時,冷藏組和對照組水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)比采摘時分別下降了3.53%和5.83%(圖2B)。冷藏果實外果皮水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)在貯藏至20 d后高于對照組,貯藏至70 d時差異最大,比對照組高4.18%,比采摘時分別下降了0.88%和5.07%(圖2C)。結(jié)果表明,在貯藏至70 d時,對照組白皮層的水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)下降最多,冷藏外果皮下降最少。

        圖2 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞(A)、白皮層(B)和外果皮(C)水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)的變化Fig. 2 Changes in relative water contents in juice sacs (A), white cortex (B)and peel (C) of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.1.3 紅肉蜜柚冷藏過程中MDA含量的變化

        MDA是膜脂過氧化的產(chǎn)物,其含量是評價細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)損傷程度的指標(biāo)之一[20]。冷藏果實汁胞MDA含量前50 d均低于對照組(圖3A),結(jié)合外觀觀察,對照組果實汁胞在貯藏至50 d時,汁胞枯水明顯。果實白皮層的MDA含量在貯藏過程中波動下降,冷藏70 d時MDA含量高于對照組(圖3B)。冷藏果實外果皮的MDA含量始終高于對照組,貯藏80 d后,冷藏果實外果皮MDA含量是對照組的2.6 倍(圖3C),說明冷藏果實的外果皮細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)損傷大于對照組。結(jié)果表明,與對照組相比,冷藏能減少汁胞貯藏前期MDA的積累,但會促進(jìn)外果皮的MDA積累,可能是因為貯藏溫度的降低,導(dǎo)致外果皮的蛋白質(zhì)、核苷酸和糖類等多種非脂類生物分子降解以抵抗生理逆境,從而產(chǎn)生MDA[21]。

        圖3 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞(A)、白皮層(B)和外果皮(C)MDA含量的變化Fig. 3 Changes in MDA contents in juice sacs (A), white cortex (B) and peel (C) of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.2 果實貯藏過程中果皮與汁胞能量代謝相關(guān)酶活力的變化

        2.2.1 紅肉蜜柚冷藏過程中SDH活力的變化

        SDH在三羧酸循環(huán)過程中催化琥珀酸轉(zhuǎn)化成延胡索酸,同時產(chǎn)生H+,最后生成ATP,因此SDH活性會影響ATP的生成[22]。冷藏果實汁胞的SDH活力在50 d時比對照組低6.4 U/mg(圖4A),在貯藏至90 d時明顯升高,表明冷藏能維持果實汁胞貯藏后期較高的SDH活力。冷藏果實白皮層的SDH活力高峰在60 d時出現(xiàn),此時冷藏組的SDH活力比對照組高16.6 U/mg,且在貯藏后期高于對照組(圖4B)。果實貯藏至80 d時,冷藏果實外果皮的SDH活力出現(xiàn)高峰,是此時對照組的2.2 倍(圖4C)。

        圖4 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞(A)、白皮層(B)和外果皮(C)的SDH活力的變化Fig. 4 Changes in SDH activity in juice sacs (A), white cortex (B) and peel (C) of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.2.2 紅肉蜜柚冷藏過程中CCO活力的變化

        CCO主要通過氧化磷酸化過程為細(xì)胞提供能量,是線粒體呼吸鏈上氧化磷酸化過程中的關(guān)鍵酶,CCO活性的降低會導(dǎo)致氧化磷酸化效率降低,ATP生成受阻[23]。由圖5A可知,冷藏果實汁胞的CCO活力在貯藏40 d時比對照組高2.7 U/mg,貯藏至80 d時,冷藏果實、對照組汁胞CCO活力與采摘時相比均降低。

        由圖5B可知,冷藏果實和對照組白皮層在貯藏至60 d時同時出現(xiàn)CCO活力高峰,冷藏果實白皮層CCO活力比對照組高49%,隨后都呈現(xiàn)下降趨勢,貯藏至80 d時,冷藏果實、對照組白皮層CCO活力比采摘時分別下降了0.63 U/mg和2.33 U/mg。

        由圖5C可知,在貯藏的前10 d,果實外果皮的CCO活力急劇下降,且冷藏果實外果皮的CCO活力低于對照組。冷藏果實和對照組在貯藏至40 d時外果皮都出現(xiàn)CCO活力較低值,與采摘時的CCO活力相比,分別降低了24.21 U/mg和38.6 U/mg,貯藏至50 d時出現(xiàn)CCO活力高峰,且冷藏果實外果皮CCO活力比此時對照組高18 U/mg;貯藏至80 d時,與采摘時相比,冷藏組和對照組外果皮CCO活力分別下降了11.55 U/mg和11.85 U/mg。結(jié)果表明,與采摘時相比,貯藏至80 d時,果實的3 個部位中外果皮的CCO活力下降最多。

        圖5 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞(A)、白皮層(B)和外果皮(C)的CCO活力的變化Fig. 5 Changes in CCO activity in juice sacs (A), white cortex (B) and peel (C) of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.2.3 紅肉蜜柚冷藏過程中H+-ATPase活力的變化

        H+-ATPase的主要作用是使細(xì)胞膜兩側(cè)產(chǎn)生H+電化學(xué)梯度,通過跨膜質(zhì)子推動力催化合成ATP,維持細(xì)胞質(zhì)相對穩(wěn)定的pH值[24]。由圖6A可知,貯藏10 d時冷藏果實汁胞的H+-ATPase活力低于對照組。貯藏至80 d時,冷藏組和對照組的汁胞H+-ATPase活力與采摘時相比分別下降了0.09 U/mg和0.35 U/mg。由圖6B可知,冷藏果實白皮層的H+-ATPase活力在貯藏80 d時比對照組高2.89 U/mg。由圖6C可知,冷藏果實外果皮的H+-ATPase活力在貯藏10 d內(nèi)下降至最低,這可能是因為果實的外果皮直接接觸到外界環(huán)境,而貯藏溫度的下降降低了外果皮H+-ATPase的活力,冷藏果實外果皮的H+-ATPase活力在30~70 d均低于對照組。

        圖6 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞(A)、白皮層(B)和外果皮(C)H+-ATPase活力的變化Fig. 6 Changes in H+-ATPase activity in juice sacs (A), white cortex (B)and peel (C) of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.2.4 紅肉蜜柚冷藏過程中Ca2+-ATPase活力的變化

        Ca2+-ATPase是細(xì)胞器膜上的鈣離子泵,線粒體通過Ca2+-ATPase將鈣離子從細(xì)胞質(zhì)運(yùn)輸?shù)骄€粒體內(nèi)參與各種調(diào)節(jié),是維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的重要機(jī)制之一,當(dāng)其活性降低時,線粒體內(nèi)鈣離子濃度降低,細(xì)胞 升高,可導(dǎo)致線粒體受損[25]。

        由圖7A可知,冷藏組汁胞Ca2+-ATPase活力在前20 d先上升后下降。冷藏果實汁胞的Ca2+-ATPase活力在貯藏50 d時比對照組高1.96 倍,貯藏至80 d時,冷藏組和對照組汁胞Ca2+-ATPase活力比采摘時分別降低了42.34%和49.47%。

        由圖7B可知,兩組果實的白皮層Ca2+-ATPase活力在整個貯藏過程中變化趨勢相差較大,冷藏組白皮層Ca2+-ATPase活力在整個貯藏過程中高于對照組,可能是因為貯藏溫度低抑制了外果皮的Ca2+-ATPase活力,其中貯藏至30 d時兩組Ca2+-ATPase活力差值最大,達(dá)到23.26 U/mg。貯藏至80 d時,冷藏果實和對照組白皮層Ca2+-ATPase活力比采摘時分別上升了7.24 U/mg和下降5.98 U/mg。

        由圖7C可知,果實貯藏至60 d時外果皮出現(xiàn)Ca2+-ATPase活力高峰,此時冷藏外果皮Ca2+-ATPase活力比對照組低1.03 U/mg,貯藏至80 d時,冷藏果實和對照組外果皮Ca2+-ATPase活力比采摘時分別下降了0.35、0.25 U/mg。

        圖7 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞(A)、白皮層(B)、外果皮(C)Ca2+-ATPase活力的變化Fig. 7 Changes in Ca2+-ATPase activity in juice sacs (A), white cortex(B) and peel (C) of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.3 果實貯藏過程中果皮與汁胞能量水平的變化

        2.3.1 紅肉蜜柚冷藏過程中汁胞能量水平的變化

        能量是生物體生命活動的基礎(chǔ),果實衰老過程中會出現(xiàn)線粒體功能絮亂、能量水平下降的現(xiàn)象[26-27]。如圖8A所示,紅肉蜜柚果實汁胞ATP含量在貯藏過程中呈波動下降趨勢,貯藏80 d時冷藏組汁胞的ATP含量是對照組的1.13 倍;貯藏50 d時,冷藏組汁胞的ADP含量是對照組的3.65 倍(圖8B);汁胞的AMP含量變化呈現(xiàn)波動上升趨勢,果實貯藏50 d后,冷藏果實汁胞的AMP含量低于對照組,貯藏至80 d時,冷藏組汁胞AMP含量比對照組低14.76%(圖8C)。由圖8D可知,隨著果實貯藏時間的延長,汁胞EC呈下降趨勢,冷藏至10 d時冷藏組汁胞EC快速下降,但是在貯藏20 d后冷藏組汁胞的EC高于對照組。結(jié)果表明,冷藏能通過保持果實汁胞較高的ATP、ADP含量,抑制汁胞中AMP含量的上升,維持果實汁胞較高的EC。

        圖8 紅肉蜜柚貯藏過程中汁胞ATP(A)、ADP(B)、AMP(C)含量和EC(D)的變化Fig. 8 Changes in ATP (A), ADP (B), and AMP (C) contents and EC (D)in juice sacs of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.3.2 紅肉蜜柚冷藏過程中白皮層能量水平的變化

        如圖9A所示,冷藏組白皮層的ATP含量在貯藏的前10 d上升,貯藏至70 d時,冷藏組白皮層ATP含量是對照組的1.34 倍。貯藏至80 d后,冷藏組白皮層ADP含量比對照組高1.138 μg/g(圖9B)。冷藏組白皮層的AMP含量低于對照組,貯藏10 d時冷藏組白皮層AMP含量比對照組低0.41 μg/g,隨著貯藏時間的延長,AMP逐漸積累,貯藏至80 d時,冷藏組白皮層的AMP含量低于對照組(圖9C)。由圖9D可知,白皮層的EC總體呈下降趨勢,整個貯藏過程中,冷藏組白皮層的EC高于對照組。結(jié)果表明,冷藏能保持較高的ADP的含量,抑制AMP含量的上升,維持果實白皮層較高的EC,延緩果實白皮層的衰老。

        圖9 紅肉蜜柚貯藏過程中白皮層ATP(A)、ADP(B)、AMP(C)含量和EC(D)的變化Fig. 9 Changes in ATP (A), ADP (B), and AMP (C) contents and EC (D)in white cortex of red-fleshed sweet pomelo during storage

        2.3.3 紅肉蜜柚冷藏過程中外果皮能量水平的變化

        如圖10A所示,冷藏組果實外果皮的ATP含量在前10 d含量上升,在第10天時是對照組的1.42 倍,50 d時降至最低,貯藏至80 d時,冷藏組外果皮的ATP含量比對照組多0.2 μg/g。冷藏組外果皮的ADP含量在30 d出現(xiàn)最高值,比此時對照組高5.53 μg/g(圖10B)。對照組外果皮的AMP含量在貯藏過程中逐漸增加,冷藏組外果皮的AMP含量在貯藏10 d時高于對照組,貯藏時間超過20 d后,冷藏組外果皮的AMP含量低于對照組,貯藏80 d時比對照組低1.87 μg/g(圖10C)。外果皮EC水平呈降低趨勢,貯藏至80 d時,冷藏外果皮的EC水平高于對照組(圖10D)。結(jié)果表明,冷藏組果實外果皮貯藏至10 d時,ATP含量增加,ADP含量下降,AMP含量急劇增加,EC下降至低于對照組,可能是外果皮直接接觸環(huán)境,貯藏溫度下降導(dǎo)致的。因此,低溫能通過保持果實外果皮在貯藏后期較高的ATP、ADP含量和EC水平,較低的AMP含量,延緩柚果的外果皮的衰老進(jìn)程。

        圖10 紅肉蜜柚貯藏過程中外果皮ATP(A)、ADP(B)、AMP(C)含量和EC(D)的變化Fig. 10 Changes in ATP (A), ADP (B), and AMP (C) contents and EC (D)in peel of red-fleshed sweet pomelo during storage

        3 討 論

        紅肉蜜柚果實汁胞發(fā)生?;枪麑嵥ダ系谋憩F(xiàn)之一,汁胞木質(zhì)素含量上升是汁胞粒化的顯著表現(xiàn)。本實驗結(jié)果表明,隨著貯藏時間的延長,對照組汁胞的木質(zhì)素含量和可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)呈上升趨勢,經(jīng)相關(guān)性分析可得,汁胞木質(zhì)素含量與可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)呈顯著正相關(guān)(r=0.642,P<0.05),與汁胞、白皮層和外果皮的水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)呈負(fù)相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為-0.513、-0.674和-0.752;表明果實汁胞發(fā)生枯水可能跟果實的水分含量有關(guān)。與對照組相比,冷藏能延緩汁胞木質(zhì)素的積累和可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的上升,保持汁胞、白皮層和外果皮的水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

        能量水平與H+-ATPase、Ca2+-ATPase、SDH和CCO的活性密切相關(guān),H+-ATPase通過在細(xì)胞膜兩側(cè)建立H+電化學(xué)梯度,產(chǎn)生跨膜質(zhì)子推動力催化合成ATP;Ca2+-ATPase是細(xì)胞器膜上的鈣離子泵,將鈣離子從細(xì)胞質(zhì)運(yùn)輸?shù)骄€粒體內(nèi)調(diào)節(jié)各種反應(yīng);SDH在三羧酸循環(huán)中催化琥珀酸轉(zhuǎn)化成延胡索酸,同時產(chǎn)生H+,最后生成ATP;CCO主要通過氧化磷酸化過程為細(xì)胞提供能量,是線粒體呼吸鏈上氧化磷酸化過程中的關(guān)鍵酶[22-25]。本實驗研究發(fā)現(xiàn),汁胞木質(zhì)素含量與汁胞的能量代謝相關(guān)酶ATPase-H+、ATPase-Ca2+、SDH、CCO的活力呈負(fù)相關(guān),表明汁胞發(fā)生粒化與能量代謝有關(guān)。冷藏能通過保持果實貯藏后期汁胞和白皮層的CCO、H+-ATPase、Ca2+-ATPase以及SDH活性,保證三羧酸循環(huán)的順利進(jìn)行,保持果實較好的品質(zhì),延長果實的貯藏保鮮期;外果皮的SDH和CCO活力大于白皮層和汁胞,這可能是由于外果皮是果實直接接觸外部環(huán)境的部位,需要提供更多的能量保持外果皮細(xì)胞的完整性從而抵抗外部不良因素;紅肉蜜柚各部位中,H+-ATPase活力由高到低為白皮層>外果皮>汁胞,Ca2+-ATPase活力由高到低為汁胞>白皮層>外果皮,具體原因有待進(jìn)一步研究。

        荔枝采后經(jīng)過外源ATP處理能維持果皮組織內(nèi)較高的ATP含量和EC水平,延緩果實衰老進(jìn)程[28]。用茉莉酸甲酯處理采后枇杷果實,能在貯藏期間維持其較高的EC水平和ATP含量,從而減輕了炭疽病害,延緩枇杷果實的衰老[29],本實驗發(fā)現(xiàn),汁胞木質(zhì)素含量與汁胞、白皮層和外果皮的能量物質(zhì)ATP、ADP和EC水平呈負(fù)相關(guān),與汁胞、白皮層和外果皮的AMP含量呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.657、0.869和0.847,其中與白皮層和外果皮的AMP含量呈顯著正相關(guān)(P<0.05),表明汁胞粒化的發(fā)生與果實內(nèi)的能量物質(zhì)和能荷水平有關(guān)。

        在貯藏過程中,果實不同部位的能量相關(guān)物質(zhì)含量和EC水平變化差異較大,對照組果實貯藏至80 d時,與剛采摘時相比,汁胞、白皮層和外果皮的ATP含量分別下降了52.83%、17.5%和30.85%,ADP含量分別下降了69.6%、22.64%%和44.97%,AMP含量分別增加了49.94%、53.67%和60.40%,EC水平分別下降了25.73%、21.98%和50.88%,可見,果實汁胞的ATP和ADP含量下降程度均大于外果皮和白皮層,外果皮的AMP含量的增加程度和EC水平的下降程度大于汁胞和白皮層,猜測可能在柚果內(nèi)部的不同部位之間存在能量互通,導(dǎo)致柚果在貯藏過程中出現(xiàn)汁胞發(fā)生枯水而外果皮無明顯病變的現(xiàn)象。

        4 結(jié) 論

        采摘后的紅肉蜜柚果實隨著貯藏時間的延長逐漸衰老,汁胞的木質(zhì)素含量逐漸增加,果實汁胞、白皮層和外果皮的ATP、ADP和EC水平下降,AMP含量增加,表明果實汁胞?;c能量代謝有關(guān);與對照組相比,冷藏能通過維持果實貯藏后期汁胞、白皮層的SDH、CCO、H+-ATPase、Ca2+-ATPase活力,保持ATP、ADP和EC水平,抑制AMP含量上升,保持汁胞、白皮層的水分,抑制紅肉蜜柚果實中汁胞木質(zhì)素的積累和可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的上升,從而保持較好的果實品質(zhì),延長果實的貯藏保鮮期。

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