王新悅 朱成磊 楊克彬 李廣柱 李 真 袁婷婷 高志民
(國(guó)際竹藤中心竹藤資源基因科學(xué)與基因產(chǎn)業(yè)化研究所,國(guó)家林業(yè)和草原局/北京市共建竹藤科學(xué)與技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100102)
纖維素是植物細(xì)胞壁的主要成分,是十分重要的可再生資源[1]。纖維素合成酶(cellulosesynthase, CesA)對(duì)纖維素合成起關(guān)鍵性作用,通常以CesA復(fù)合體(cellulose synthase complex, CSC)的形式發(fā)揮功能,該復(fù)合體由6個(gè)三聚體形成,而三聚體由多個(gè)CesA組成[2],CSC在植物的纖維素合成與沉積過(guò)程中發(fā)揮重要作用[3]。研究表明,CesA包含多個(gè)保守區(qū)域,其中D、DxD、D和QxxRW是該家族的特征結(jié)構(gòu)域[4-5]。不同物種中CSC發(fā)揮功能需要多個(gè)CesA[6],自第一個(gè)CesA基因在棉花(Gossypiumspp.)中被確定后[7],已在擬南芥(Arabidopsisthaliana)[8]、水稻(Oryzasativa)[4]和二穗短柄草(Brachypodiumdistachyon)[9]中分別鑒定出10、11和10個(gè)CesA基因。研究發(fā)現(xiàn),擬南芥中AtCesA1/3/6與初生細(xì)胞壁合成相關(guān)[10],AtCesA4/7/8與次生細(xì)胞壁相關(guān)[11];水稻中OsCesA1/3/6與初生壁相關(guān),OsCesA4/7/9與次生壁相關(guān)[4],而且發(fā)現(xiàn)赤霉素可以通過(guò)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)與NAC29/31 結(jié)合調(diào)控OsMYB61轉(zhuǎn)錄因子,OsMYB61與OsCesA4/7/9上游啟動(dòng)子結(jié)合,進(jìn)而聯(lián)級(jí)調(diào)控次生壁纖維素的合成[12]。
竹子具有生長(zhǎng)快、材性好等特點(diǎn),在緩解我國(guó)木材供給壓力方面發(fā)揮著重要作用。纖維素是竹材的主要成分,CesA基因的表達(dá)水平直接影響到纖維素的含量和品質(zhì),從而影響竹材材性[13]。因此,研究CesA基因的分子特征及其表達(dá)調(diào)控對(duì)竹子的開(kāi)發(fā)利用具有重要價(jià)值。初步研究表明,毛竹(Phyllostachysedulis)各組織纖維素的含量與CesA基因表達(dá)量有一定的關(guān)聯(lián)[14],筍中纖維素含量隨基因表達(dá)量上升而增加[15],并預(yù)測(cè)PeCesA6/9/13對(duì)初生壁和次生壁的形成均起到重要作用,而PeCesA1/2/3/4/5主要參與次生壁的合成[16]。另有研究發(fā)現(xiàn)巨龍竹(Dendrocalamussinicus)中2個(gè)CesA基因與初生壁纖維素生物合成有關(guān)[17]。雖然在毛竹基因組草圖中鑒定了19個(gè)PeCesAs[18],并對(duì)其中16個(gè)進(jìn)行了定量分析[19],但其功能尚未被深入研究,尤其在表達(dá)調(diào)控方面更是空白。染色體水平毛竹基因組的發(fā)布[20]為更全面研究其中的CesA提供了組學(xué)數(shù)據(jù)。本研究在對(duì)毛竹CesA基因家族成員全基因組鑒定的基礎(chǔ)上,通過(guò)基因表達(dá)模式篩選出與次生壁纖維素合成相關(guān)的CesA基因及MYB轉(zhuǎn)錄因子,并用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)和酵母單雜交技術(shù)進(jìn)行驗(yàn)證,以期為揭示竹子纖維素生物合成與調(diào)控分子機(jī)制提供理論參考。
以江西省林科院實(shí)驗(yàn)林場(chǎng)的毛竹為對(duì)象,采集不同高度筍(0.5、1.0、2.0、4.0、6.0和8.0 m)的代表性節(jié)間(第15節(jié)),每種樣品平均隨機(jī)取3株,液氮速凍后存于-80℃冰箱,用于研究CesA與MYB在不同高度筍中的表達(dá)模式。
1.2.1 毛竹CesA基因家族成員鑒定及理化性質(zhì)分析 通過(guò)PLAZA數(shù)據(jù)庫(kù)(https://bioinformatics.psb.ugent.be/plaza/)下載水稻、二穗短柄草和擬南芥的CesA氨基酸序列,利用TBtools基于毛竹基因組數(shù)據(jù)[21]查找CesA同源序列,在Pfam(http://pfam.xfam.org/)網(wǎng)站利用CesA蛋白查找保守結(jié)構(gòu)域[22],再運(yùn)用Smart BLAST(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/smartblast/?LINK_LOC=BlastHomeLink#)進(jìn)一步對(duì)候選基因進(jìn)行逐條比對(duì)分析,保留保守結(jié)構(gòu)域完整的基因,根據(jù)上述基因在Scaffold上的位置順序進(jìn)行命名。采用在線(xiàn)工具Softberry(http://linux1.softberry.com/all.htm)分析CesA的基本理化性質(zhì)。
1.2.2 毛竹CesA基因的生物信息學(xué)分析 通過(guò)TBtools中BLASTP程序?qū)γ癜被嵝蛄羞M(jìn)行雙向比對(duì),閾值E<10-5,獲得共線(xiàn)性基因?qū)23],通過(guò)TBtools內(nèi)置的MCScanX程序?qū)γ襁M(jìn)行物種內(nèi)的CesA共線(xiàn)性結(jié)果進(jìn)行可視化展示[24]。并計(jì)算基因?qū)χg的同義(Ks)和非同義(Ka)核苷酸替換率[25]。用TBtools軟件分析毛竹CesA的基因結(jié)構(gòu);用在線(xiàn)軟件MEME(http://meme.nbcr.-net/meme/intro.html)分析毛竹CesA的蛋白保守基序,利用Plant-mPLoc(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/plant-multi/#)在線(xiàn)軟件預(yù)測(cè)毛竹CesA的亞細(xì)胞定位。利用MEGA7.0內(nèi)置的MUSCLE程序?qū)γ?、水稻、擬南芥和二穗短柄草的CesA氨基酸序列進(jìn)行多序列比對(duì),并采用鄰接法(neighbor-joining, NJ)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)(使用系統(tǒng)默認(rèn)值,其中校驗(yàn)參數(shù)Bootstrap值設(shè)置為重復(fù)1 000 次)[26],模型為Poisson model[27],序列中缺失位點(diǎn)選擇完全刪除,根據(jù)擬南芥[10-11]與水稻[4]中報(bào)道次生壁與初生壁相關(guān)的基因?qū)M(jìn)化樹(shù)的分支進(jìn)行分類(lèi)。
1.2.3 毛竹CesA基因表達(dá)模式分析 利用NCBI下載的毛竹26個(gè)組織/發(fā)育階段(鞭、筍、根、葉片、葉鞘和筍芽)的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)(登錄號(hào):SRX2408703~SRX2408728)[20],篩選其中CesA基因的FPKM值,并取對(duì)數(shù)Log2(FPKM+1)作為基因的表達(dá)量,利用TBtools軟件中最長(zhǎng)距離法與層次聚類(lèi)法繪制表達(dá)譜熱圖,并利用基迪奧生物網(wǎng)站(https://www.omicshare.com/tools/) spearman系數(shù)繪制相關(guān)性分析圖。利用BambooNET數(shù)據(jù)庫(kù)(http://bioinformatics.cau.edu.cn/bamboo/)中Mutual rank與Pearson correlation coefficient(PCC)系數(shù)查找與毛竹CesA基因具有共表達(dá)關(guān)系的基因,于基迪奧生物網(wǎng)站繪制共表達(dá)網(wǎng)絡(luò)圖。
1.2.4 毛竹CesA基因在不同高度筍中的表達(dá)模式分析 根據(jù)毛竹CesA基因序列設(shè)計(jì)的特異性定量引物,由北京博邁德基因技術(shù)有限公司合成(表1)。采用TRIzol法(Promega, 美國(guó), Z3101)提取毛竹各樣品的總RNA,用DNase Ⅰ (TaKaRa, 日本, 2270A)除去基因組DNA后,使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Promega, 美國(guó), A5003)合成cDNA。使用qTOWER熒光定量PCR儀(Analytikjena, 德國(guó), qTOWER 2.2),體系參照Roche Light Cycler?480 SYBR Green 1 Master kit試劑盒(Roche, 中國(guó), 4707516001),程序:95℃預(yù)變性6 min;95℃變性10 s,62℃退火10 s,45個(gè)循環(huán)[28]。以PeTIP41為內(nèi)參基因[29],3次生物學(xué)重復(fù),采用2-ΔΔCT法[30]分析基因的相對(duì)表達(dá)量,利用IBM SPSS 26.0對(duì)3個(gè)技術(shù)重復(fù)的均值和標(biāo)準(zhǔn)差進(jìn)行繪圖。
1.2.5 酵母單雜交分析 根據(jù)PeMYB35(PH02Gene26889)的蛋白質(zhì)編碼區(qū)(coding sequence, CDS)序列和PeCesA1啟動(dòng)子的PeCesA1pro序列,設(shè)計(jì)添加載體構(gòu)建所需酶切位點(diǎn)的引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)體系(20 μL)如下:PCR Buffer 2.0 μL,5′寡核苷酸 9.0 μL,3′寡核苷酸 9.0 μL。反應(yīng)條件:95℃ 30 s,72℃ 2 min,37℃ 2 min,25℃ 2 min,1個(gè)循環(huán)。分別使用SmaI酶、EcoRI酶和SacI酶進(jìn)行酶切,將PeMYB35的CDS序列和PeCesA1pro分別連接到表達(dá)載體pGADT7-Rec2 和pHis2的多克隆位點(diǎn),將測(cè)序正確的質(zhì)粒分別命名為pGADT7-Rec2-MYB35和pHis2-PeCesA1pro。另外,根據(jù)PeCesA1pro中3個(gè)GAMYB元件(CAACCTAC、CAACCCAA和CAACCAAC)分別設(shè)計(jì)引物進(jìn)行擴(kuò)增;同時(shí)利用EcoRI和SacI酶對(duì)pHis2載體進(jìn)行酶切,對(duì)PCR產(chǎn)物與膠回收產(chǎn)物進(jìn)行連接。連接體系:10×T4 Ligase 1.0 μL,T4 DNA連接酶 1.0 μL,pHis2 4.0 μL,元件PCR產(chǎn)物 4.0 μL,16℃過(guò)夜連接。將測(cè)序正確的質(zhì)粒分別命名為pHis2-Y1、pHis2-Y2和pHis2-Y3。
將構(gòu)建好的pHis2-PeCesA1pro、pHis2-Y1、pHis2-Y2 和pHis2-Y3質(zhì)粒分別與pGADT7-Rec2-MYB35共轉(zhuǎn)化到酵母感受態(tài)細(xì)胞(Y187)中,同時(shí)設(shè)置陽(yáng)性(p53His2+pGADT7-Rec2-53)和陰性(p53His2+pGADT7-Rec2-MYB35)對(duì)照,將共轉(zhuǎn)化質(zhì)粒的酵母菌液分別涂布在DDO (-Leu/-Trp)篩選培養(yǎng)基上培養(yǎng),篩選后在含有3-AT (20 mmol·L-1)的TDO (-His/-Leu/-Trp) 平板培養(yǎng)2~3 d[31]。
利用擬南芥和水稻的同源基因序列,在毛竹基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行BLAST分析,共鑒定獲得21個(gè)CesA基因,分布在11個(gè)基本骨架(Scaffold)上,其中Scaffold14上有4個(gè)基因,Scaffold4和Scaffold10上有3個(gè)基因,其他Scaffold上有1~2個(gè)基因,根據(jù)其在Scaffold上順序分別命名為PeCesA1~PeCesA21(圖1)。PeCesAs編碼蛋白氨基酸長(zhǎng)度為904~1 093 aa,預(yù)測(cè)分子量為101.10~123.63 kDa之間,理論等電點(diǎn)在5.95~8.60之間,大多數(shù)呈中性或堿性蛋白;亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)結(jié)果表明,21個(gè)PeCesAs均定位于質(zhì)膜(表2),說(shuō)明PeCesAs可能在質(zhì)膜上行使功能。
圖1 PeCesAs的Scaffold定位和共線(xiàn)性分析Fig.1 The scaffold location and collinearity analysis of PeCesAs
共線(xiàn)性分析發(fā)現(xiàn),有19個(gè)PeCesAs之間存在共線(xiàn)性關(guān)系,且所有基因?qū)Φ姆峭x對(duì)同義取代比(Ka/Ks)均小于1.0,說(shuō)明PeCesAs基因在進(jìn)化過(guò)程中可能經(jīng)歷了較強(qiáng)的純化選擇[32-33]。利用毛竹、水稻、擬南芥和二穗短柄草的52個(gè)CesA的氨基酸序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)表明,所有CesAs被聚類(lèi)在7個(gè)分支,在各分支中多數(shù)PeCesAs與二穗短柄草及水稻的CesA聚類(lèi)在一起,與擬南芥的CesA較遠(yuǎn)(圖2)。另外,研究發(fā)現(xiàn)水稻中OsCesA4/7/9以及擬南芥中AtCesA4/7/8主要參與次生細(xì)胞壁纖維素的合成,PeCesA1/5/10/11/17與OsCesA4/7/9和AtCesA4/7/8聚類(lèi)在較近的分支,因此推測(cè)上述編碼蛋白在毛竹次生細(xì)胞壁纖維素合成中可能具有相似的功能。
注:Pe、Os、At和Bd分別代表毛竹、水稻、擬南芥和二穗短柄草。Note: Pe, Os, At and Bd indicate Phyllostachys edulis, Oryza sativa, Arabidopsis thaliana and Brachypodium distachyon, respectively.圖2 基于不同植物CesA家族成員構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.2 Phylogenetic tree constructed on the base of CesA family members in different plant species
基因結(jié)構(gòu)分析表明,21個(gè)PeCesAs具有8~14個(gè)內(nèi)含子(圖3),9~15個(gè)外顯子,其中具有14個(gè)外顯子的基因有11個(gè),13個(gè)外顯子的基因有5個(gè),15與9個(gè)外顯子的基因分別有2個(gè),12個(gè)外顯子的基因只有1個(gè)(PeCesA1),PeCesA18比PeCesA14多1個(gè)外顯子與1個(gè)內(nèi)含子。各基因之間的差異除了外顯子的數(shù)量外,還表現(xiàn)在內(nèi)含子的位置差異,由此推測(cè)這些差異可能會(huì)導(dǎo)致基因功能不同。
圖3 PeCesAs基因結(jié)構(gòu)分析Fig.3 Gene structure analysis of PeCesAs
蛋白保守基序分析表明,在PeCesAs中共鑒定出20個(gè)保守基序,其中4個(gè)纖維素合成酶家族特征性保守結(jié)構(gòu)域(DD、DCD、ED和QVLRW)分別分布在Motif 6、Motif 10、Motif 13和Motif 14中[34]。Motif 1、Motif 2~Motif 15為所有成員共有的保守基序;Motif 20為PeCesA1/4/6/7/14/15/18/19/21共同缺失的保守基序;此外,PeCesA7/14還缺少M(fèi)otif 16~Motif 20;PeCesA16缺少M(fèi)otif 19 (圖4)。
圖4 PeCesAs保守基序分析Fig.4 Conserved motif analysis of PeCesAs
基于毛竹26個(gè)組織的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析表明,21個(gè)PeCesAs在毛竹不同組織以及同一組織不同生長(zhǎng)時(shí)期的表達(dá)模式均存在著一定差異(圖5)。所有PeCesAs在各個(gè)組織中均檢測(cè)到表達(dá),每個(gè)組織中各成員的表達(dá)量各不相同,說(shuō)明其可能不同程度地參與毛竹不同組織的纖維素合成。表達(dá)量相似的基因被聚類(lèi)在同一分支,如PeCesA3/6/7/8/9/19在毛竹根和筍的中部和基部表達(dá)量均較高,在葉片和筍的尖部表達(dá)量極低;而PeCesA12/13在所有組織中表達(dá)量均極低;PeCesA2/14/16/18/20在大部分組織中均表達(dá),其中5個(gè)PeCesAs (PeCesA1/5/10/11/17)在筍的中部和基部的表達(dá)量隨著筍高度增加而上升,在3.0 m筍中的相對(duì)表達(dá)量顯著高于其他高度的筍。因此,推測(cè)這些PeCesAs在毛竹筍的纖維素合成過(guò)程中發(fā)揮著更為重要的作用。
圖5 PeCesAs在不同組織中的表達(dá)分析Fig.5 Expression analysis of PeCesAs in different tissues
通過(guò)共表達(dá)網(wǎng)絡(luò)預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn),PeMYB35 (PH02Gene26889)和PeMYB37 (PH02Gene12586)與5個(gè)PeCesAs (PeCesA1/5/10/11/17)存在較強(qiáng)的共表達(dá)關(guān)系(圖6-A)。利用毛竹不同高度筍轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析PeMYBs與PeCesAs表達(dá)量的相關(guān)性,發(fā)現(xiàn)2個(gè)PeMYBs與5個(gè)PeCesAs均具有極強(qiáng)相關(guān)性(PCC>0.8) (圖6-B),其中PeMYB35較PeMYB37與PeCesAs的相關(guān)性更強(qiáng)。對(duì)PeCesAs的上游啟動(dòng)子分析發(fā)現(xiàn),PeCesA1/5/10/11/17的啟動(dòng)子中均包含GAMYB (CAACCNNN)元件(圖6-C)。在水稻中已證明MYB轉(zhuǎn)錄因子能夠與GAMYB結(jié)合,調(diào)控CesA的表達(dá)[12]。因此,推測(cè)PeMYB35和PeMYB37可能通過(guò)與PeCesA1/5/10/11/17啟動(dòng)子中的GAMYB結(jié)合來(lái)調(diào)控毛竹纖維素的合成。
注:A:PeCesAs與PeMYB35共表達(dá)網(wǎng)絡(luò)預(yù)測(cè);B:PeCesAs與PeMYB35在不同高度筍中表達(dá)量相關(guān)性分析;C:PeCesAs啟動(dòng)子中的GAMYB元件分析。Note: A: Co-expression network prediction of PeCesAs and PeMYB35. B: Correlation analysis of PeCesAs and PeMYB35 expression in different height shoots. C: GAMYB in the promoters of PeCesAs.圖6 PeCesAs與PeMYB35關(guān)系圖Fig.6 The relationship diagram of PeCesAs and PeMYB35
為驗(yàn)證PeMYB35與5個(gè)PeCesAs的調(diào)控關(guān)系,采用qRT-PCR方法檢測(cè)PeMYB35和PeCesA1/5/10/11/17在不同高度筍中的表達(dá)模式。圖7結(jié)果顯示,隨著筍高度的增加,PeMYB35和5個(gè)PeCesAs基本呈現(xiàn)相似表達(dá)趨勢(shì),即不同程度地先下降后上升再下降,該趨勢(shì)與圖5相似,在圖7-A中均在6.0 m高筍中的表達(dá)量達(dá)到最高值,之后有所下降。另外,酵母單雜交結(jié)果表明,陽(yáng)性對(duì)照(p53His2+pGADT7-Rec2-53)和pHis2-PeCesA1pro+pGADT7-Rec2-MYB35、pHis2-Y1+pGADT7-Rec2-MYB35、pHis2-Y2+pGADT7-Rec2-MYB35和pHis2-Y3+pGADT7-Rec2-MYB35能夠在TDO/3-AT培養(yǎng)基上正常生長(zhǎng),而陰性對(duì)照(p53His2+pGADT7-Rec2-MYB35)不能正常生長(zhǎng)(圖7-B)。由此說(shuō)明,PeMYB35能夠與PeCesA1啟動(dòng)子中3個(gè)不同的GAMYB相結(jié)合,進(jìn)而調(diào)控基因的表達(dá)。
注:A:筍中PeMYB35和PeCesAs的表達(dá)定量分析;*和**分別表示其他高度筍中基因相對(duì)表達(dá)量與0.5 m筍中的差異顯著性水平為P<0.05和P<0.01。B:PeMYB35與PeCesA1pro共轉(zhuǎn)化酵母。Note: A: Expression analysis of PeMYB35 and PeCesAs in shoots with different heights. *, ** indicate significant differences at 0.05 and 0.01 level respectively between the relative expression in higher shoots and that in 0.5 m shoots. B: Co-transformation of yeast with PeMYB35 and PeCesA1pro.圖7 PeMYB35與PeCesAs調(diào)控關(guān)系驗(yàn)證Fig.7 Verification of the regulatory relationship between PeMYB35 and PeCesAs
纖維素含量嚴(yán)重影響著竹子的生長(zhǎng)與竹材材性,且影響采后竹筍的品質(zhì)[35]。CesA的表達(dá)是影響纖維素生物合成的關(guān)鍵因素。隨著越來(lái)越多物種中CesA基因家族的結(jié)構(gòu)特征、基因功能驗(yàn)證及轉(zhuǎn)錄調(diào)控被研究報(bào)道,竹子中CesA的研究倍受重視[36]。對(duì)毛竹中CesA基因的結(jié)構(gòu)特征、表達(dá)模式,以及轉(zhuǎn)錄調(diào)控進(jìn)行分析,對(duì)于揭示CesA基因在竹材形成過(guò)程中的作用具有重要的參考價(jià)值。本研究從毛竹中鑒定出21個(gè)CesA家族成員,與Peng等[18]的鑒定結(jié)果相似,其具有的保守結(jié)構(gòu)域是纖維素合成的催化位點(diǎn)[37]。CesA家族基因的數(shù)量是擬南芥、水稻等二倍體物種的2倍左右,這可能與毛竹為異源四倍體有關(guān)[38]。本研究系統(tǒng)進(jìn)化分析發(fā)現(xiàn),PeCesAs聚類(lèi)在7個(gè)分支上,與共線(xiàn)性分析結(jié)果相一致,呈現(xiàn)共線(xiàn)性的蛋白被聚類(lèi)在同一個(gè)分支上,多數(shù)PeCesAs與水稻和二穗短柄草的CesA聚類(lèi)到較近的分支,這與毛竹、水稻和二穗短柄草親緣關(guān)系較近的前人研究結(jié)果相一致[28]。
纖維素是細(xì)胞壁的重要組成部分,21個(gè)PeCesAs在毛竹26個(gè)不同組織中均檢測(cè)到表達(dá),在筍和根中表達(dá)量較高,該結(jié)果與前人研究結(jié)果一致[18],但本研究在芽和鞭中也檢測(cè)到了表達(dá),這可能是取樣與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的差異造成的。此外CesA基因的表達(dá)具有傾向性,如白花泡桐中PfCesA4在莖中的表達(dá)量最高[39],CiCesA3則在中間錦雞兒的葉中表達(dá)量最高[40],毛白楊的PtoCesA4/7/8/17/18在木質(zhì)部中高豐度表達(dá)[41]。不同的PeCesAs在不同組織中的表達(dá)豐度差異明顯,表明各基因成員的功能存在一定的差異。除了PeCesA12和PeCesA13在所有組織中表達(dá)較低外,其他多數(shù)PeCesAs均在次生壁木質(zhì)化程度較高的鞭、根和筍(1.5、3.0和6.0 m)中表達(dá)豐度較高,表明這些PeCesAs的表達(dá)與毛竹細(xì)胞次生壁形成相關(guān),與前人研究結(jié)果一致[4]。RNA-Seq數(shù)據(jù)分析結(jié)合qRT-PCR 發(fā)現(xiàn)PeCesA1/5/10/11/17主要在1.5、3.0和6.0 m筍中表達(dá),且分別是OsCesA4/7/9[4]和AtCesA4/7/8[11]的同源基因,推測(cè)該基因可能在毛竹筍纖維素合成過(guò)程中發(fā)揮著重要作用,其具體生物學(xué)功能尚需開(kāi)展深入研究。
纖維素的生物合成調(diào)控是一個(gè)復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò),涉及多種轉(zhuǎn)錄因子,其中MYB轉(zhuǎn)錄因子在調(diào)控次生壁纖維素合成中發(fā)揮著重要作用。在擬南芥中,AtMYB46通過(guò)與AtCesA4/7/8的啟動(dòng)子中的M46RE元件結(jié)合,激活A(yù)tCesA4/7/8的表達(dá),從而使纖維素含量升高[42]。在水稻中OsMYB58/63能與OsCesA7啟動(dòng)子中AC-II 和SMRE3元件結(jié)合,上調(diào)基因的表達(dá)[43],而NAC29/31 則通過(guò)調(diào)控MYB61,MYB61再與OsCesA4/7/9 中上游啟動(dòng)子的GAMYB元件結(jié)合調(diào)控CesA的表達(dá),從而實(shí)現(xiàn)對(duì)纖維素生物合成的調(diào)控,而SLR1和NAC29/31相互作用則會(huì)阻斷這條調(diào)控途徑[12]。在毛竹中PeMYB35和PeMYB37分別與擬南芥和水稻中的AtMYB46與OsMYB61為同源基因[44]。本研究發(fā)現(xiàn)并證明PeMYB35和PeMYB37均與5個(gè)PeCesAs (PeCesA1/5/10/11/17)之間存在共表達(dá)關(guān)系,在筍中的表達(dá)趨勢(shì)相似,表達(dá)量具有較強(qiáng)的相關(guān)性;酵母單雜交結(jié)果證實(shí)轉(zhuǎn)錄因子PeMYB35能夠與PeCesA1的上游啟動(dòng)子中的MYB元件結(jié)合發(fā)生相互作用。由此推測(cè),PeMYB35和PeMYB37可能通過(guò)調(diào)控PeCesAs (PeCesA1/5/10/11/17)的表達(dá)來(lái)參與毛竹纖維素的生物合成,但具體的調(diào)控分子機(jī)制以及對(duì)纖維素含量的影響尚需要通過(guò)進(jìn)一步研究驗(yàn)證。
本研究從毛竹中鑒定了21個(gè)CesA基因家族成員(PeCesA1~PeCesA21),轉(zhuǎn)錄組表達(dá)譜分析揭示出不同PeCesAs在毛竹不同組織與筍的不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)存在明顯差異,表明上述基因功能具有一定的差異性。不同高度筍的轉(zhuǎn)錄組表達(dá)譜和qRT-PCR結(jié)果均證實(shí)PeMYB35與PeCesA1/5/10/11/17呈現(xiàn)相似的表達(dá)趨勢(shì),相關(guān)性極強(qiáng)(PCC>0.8),且發(fā)現(xiàn)PeCesA1/5/10/11/17的上游啟動(dòng)子均含有MYB結(jié)合位點(diǎn)GAMYB,表明MYB可能通過(guò)與PeCesAs啟動(dòng)子的結(jié)合來(lái)調(diào)控其表達(dá),PeMYB35與PeCesA1pro共轉(zhuǎn)化酵母的結(jié)果證明了這一推測(cè)。