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        LR12 肽通過調(diào)控TLR-4/ NF-κB 信號通路對壞死性小腸結腸炎新生小鼠腸道損傷的影響

        2022-02-18 03:02:06占彩霞廖鎮(zhèn)宇黃瑞文劉銀芝
        中國醫(yī)藥導報 2022年1期
        關鍵詞:信號模型

        占彩霞 廖鎮(zhèn)宇 黃瑞文 劉銀芝 楊 慧

        湖南省兒童醫(yī)院新生兒科,湖南長沙 410007

        壞死性小腸結腸炎(necrotic enterocolitis,NEC)是以腸道炎癥為特點的消化系統(tǒng)疾病,常發(fā)生于早產(chǎn)兒,由于復雜的發(fā)病因素,臨床上缺乏有效治療手段,死亡率約為30%[1]。NEC 病情進展較快,目前尚未完全闡明其發(fā)病機制,但認為腸黏膜屏障結構和功能的改變及腸道炎性損傷是其發(fā)病基礎[2]。髓細胞觸發(fā)受體1(triggering receptor expressed on myeloid cells-1,TREM-1)是一種炎癥激發(fā)受體,能通過激活TLR-4/NF-κB 信號通路放大炎癥級聯(lián)反應,其在膿毒癥、結腸炎等炎癥疾病中發(fā)揮重要作用[3-5]。作為一種TREM1特異性抑制肽,LR12 肽能夠捕獲TREM1 配體,阻斷TREM1 介導的炎癥反應,具有顯著的抗炎作用[6],目前已被美國食品藥品監(jiān)督管理局批準為治療膿毒性休克的藥物。但目前還未知曉LR12 肽對NEC 是否有治療效果,為此,本研究通過構建幼鼠NEC 模型,并進行LR12 肽干預,探討LR12 肽對NEC 的影響及作用機制。

        1 材料與方法

        1.1 實驗動物

        SPF 級C57BL/6 小鼠18 只(雌性6 只,雄性12 只),8 周齡,體重16~23 g,由成都達碩實驗動物有限公司提供,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(川)2019-031,動物合格證號:No.1103241911007575。實驗遵循國家實驗動物倫理規(guī)范。

        1.2 主要試劑

        LR12 肽(LQEEDTGEYGCV)及其無效肽LR12 scramble(YQMGELCAGEED)由北京賽百盛基因技術有限公司合成并提供;脂多糖(lipopolysaccharide,LPS,貨號:SMB00704)、異硫氰酸熒光素-葡聚糖(FITCDextran,貨號:46944)購自美國Sigma-Aldrich 公司;鼠白細胞介素(interleukin,IL)-1β(貨號:CSB-E08054m)、IL-6(貨號:CSB-E04639m)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α,貨號:CSB-E04741m)酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒購自武漢華美生物有限公司;TREM1(11791-1-AP)購自武漢三鷹生物技術有限公司;TLR-4(貨號:14358S)、MyD88(貨號:4283S)、NF-κB p65(貨號:6956S)、IκBα(貨號:4814S)、GAPDH(貨號:51332S)抗體購自美國CST 公司;ECL 顯影試劑盒購自美國密理博公司。

        1.3 方法

        1.3.1 分組、造模及給藥 將雌鼠和雄鼠按照1∶2 合籠受孕,孕鼠共計產(chǎn)仔60 只。采用隨機數(shù)字表法將幼鼠分為四組(n=15):對照組、模型組、LR12-scr 組(作為陰性對照)和LR12 組。將2 日齡幼鼠置于保育箱,喂養(yǎng)方式采用人工喂養(yǎng),代乳品及喂養(yǎng)劑量參考文獻[7]配制。對照組不做任何操作,其余三組采用缺氧冷刺激+LPS 干預法[8]構建NEC 模型:將幼鼠放入90%氮氣中缺氧90 s,然后置于4℃冰箱進行冷刺激10 min,再腹腔注射7 mg/kg LPS,連續(xù)操作3 d。造模結束后,若幼鼠NEC 臨床癥狀評分≥8 分視為模型成功[9]。模型成功且無死亡。LR12-scr 組腹腔注射5 mg/kg LR12 scramble,LR12 組腹腔注射等劑量LR12 肽,對照組和模型組給予等量溶劑,1 次/d,連續(xù)3 d。

        1.3.2 幼鼠臨床癥狀評分 記錄所有幼鼠實驗前后的體重,并于實驗結束時參考文獻[10]進行臨床癥狀評分。見表1。

        表1 NEC 臨床癥狀評分標準

        1.3.3 檢測腸黏膜通透性 所有幼鼠灌胃40 mg/g 的FTTC-Dextran 溶液,4 h 后眼眶取血,3500 r/min 離心10 min,離心半徑為15 cm。采用酶標儀測定血漿熒光強度,制作標準曲線并計算其濃度。

        1.3.4 蘇木精-伊紅(hematoxylineosin,HE)染色所有幼鼠取回盲部腸組織固定24 h 后取出,石蠟包埋后切片5 μm,行HE 染色。參考Nadler 標準[9]進行雙盲評分,評分≥3 分者視為NEC 樣腸損傷。見表2。

        表2 Nadler 評分標準

        1.3.5 檢測腸組織中炎癥因子水平 取所有幼鼠腸組織制備組織勻漿,在4℃,3000 r/min 離心15 min,離心半徑為15 cm,取上清,按照試劑盒說明書的步驟檢測TNF-α、IL-1β 和IL-6 的表達水平。

        1.3.6 檢測相關蛋白表達 取所有幼鼠腸組織裂解成組織勻漿,12 000 r/min 離心20 min,離心半徑為15 cm,取上清,按照BCA 法進行蛋白定量。取25 μg 蛋白,經(jīng)SDS 凝膠電泳,轉膜,加入TREM(1∶1000)、TLR-4(1∶1000)、MyD88(1∶1000)、NF-κB p65(1∶500)、IκBα(1∶500)和GAPDH(1∶1000)孵育,TBST 清洗,加入相應屬性二抗(1∶10 000),膜滴加ECL 試劑后,采用全自動化學發(fā)光分析儀進行顯影。

        1.4 統(tǒng)計學方法

        采用SPSS 19.0 軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料用均數(shù)±標準差()表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t 檢驗。以P <0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結果

        2.1 各組幼鼠實驗前后體重變化、臨床癥狀積分比較

        各組實驗前體重比較,差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05),實驗后模型組體重低于對照組,而LR12 組體重高于模型組,差異均有統(tǒng)計學意義(P <0.05);模型組臨床癥狀積分高于對照組,LR12 組積分低于模型組,差異均有統(tǒng)計學意義(P <0.05),而LR12-scr 組積分與模型組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05)。見表3。

        表3 各組幼鼠實驗前后體重變化、臨床癥狀積分比較()

        表3 各組幼鼠實驗前后體重變化、臨床癥狀積分比較()

        注 與對照組比較,aP <0.05;與模型組比較,bP <0.05

        2.2 各組幼鼠腸組織病理學及腸黏膜通透性比較

        對照組腸組織病理結構正常。模型組和LR12-scr 組腸組織絨毛雜亂,部分絨毛脫落甚至缺失,肌層變薄。LR12 組腸組織結構較清晰,絨毛壞死或脫落現(xiàn)象減少。見圖1。模型組腸組織病理學評分和血清FITC-Dextran 含量高于對照組,LR12 組病理評分和血清FITC-Dextran 含量低于模型組,差異均有統(tǒng)計學意義(P <0.05),而LR12-scr 組以上數(shù)據(jù)與模型組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05)。見表4。

        表4 各組幼鼠腸組織病理學評分及血清FITC-Dextran 含量比較()

        表4 各組幼鼠腸組織病理學評分及血清FITC-Dextran 含量比較()

        注 與對照組比較,aP <0.05;與模型組比較,bP <0.05

        圖1 HE 染色觀察腸組織病理學變化

        2.3 各組幼鼠腸組織炎癥因子水平比較

        模型組TNF-α、IL-1β 和IL-6 水平高于對照組,LR12 組TNF-α、IL-1β 和IL-6 水平低于模型組,差異均有統(tǒng)計學意義(P <0.05),而LR12-scr 組以上指標與模型組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05)。見表5。

        表5 各組幼鼠腸組織中TNF-α、IL-1β 和IL-6 水平比較(ng/L,)

        表5 各組幼鼠腸組織中TNF-α、IL-1β 和IL-6 水平比較(ng/L,)

        注 與對照組比較,aP <0.05;與模型組比較,bP <0.05。TNF-α:腫瘤壞死因子-α;IL-6:白細胞介素-6

        2.4 各組幼鼠腸組織中TREM1 蛋白及TLR-4/NF-κB信號通路相關蛋白表達變化

        與對照組比較,模型組腸組織中TREM1、TLR-4、MyD88 和NF-κB p65 蛋白水平升高,IκBα 蛋白水平降低,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05);與模型組比較,LR12 組TREM1、TLR-4、MyD88 和NF-κB p65 蛋白水平降低,IκBα 蛋白水平增加,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05);而LR12-scr 組以上指標與模型組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P >0.05)。見圖2。

        圖2 各組幼鼠腸組織中相關蛋白表達水平(n=15)

        3 討論

        LPS+低氧刺激是反應人類NEC 最成功的建模方法[11]。本研究結果顯示,模型組幼鼠表現(xiàn)出明顯的NEC癥狀,并出現(xiàn)嚴重的腸損傷、腸黏膜屏障受損,炎癥加重等變化,說明NEC 模型成功。然而,本研究采用LR12 肽干預后,幼鼠NEC 癥狀有所緩解,腸道損傷減輕,腸黏膜通透性改善,炎癥水平降低,并且顯著抑制TREM1 表達和TLR-4/NF-κB 信號通路的活化。提示,LR12 肽對NEC 具有改善作用。

        TREM1 是一種新型炎癥激發(fā)受體,其可激活并放大TLR-4/NF-κB 信號通路,促進促炎因子的釋放[12-14]。Shen 等[15]研究顯示,潰瘍性結腸炎疾病的嚴重程度和活動度與TREM1 顯著相關。相關研究[16-17]報道,下調(diào)TREM1 表達可抑制小鼠結腸炎炎癥反應及相關腫瘤的發(fā)生。作為TREM1 特異性抑制肽,LR12 肽常應用于TREM1 介導的炎癥反應的相關研究中,并已成為一種治療膿毒癥休克的臨床用藥[18]。然而,LR12 肽對NEC 的影響尚不清楚。本研究結果顯示,采用LR12肽干預后,NEC 幼鼠臨床癥狀有所改善,并且腸組織損傷減輕,腸黏膜通透性及腸組織中TNF-α、IL-1β 和IL-6 水平均降低,提示LR12 肽對NEC 具有一定的改善作用。本研究進一步顯示,NEC 幼鼠腸組織中TREM1蛋白表達水平顯著增加,而LR12 肽干預可抑制NEC幼鼠腸組織中TREM1 蛋白表達,提示LR12 肽對NEC的改善作用可能與抑制TREM1 表達有關。

        TLR-4/NF-κB 信號通路是調(diào)控炎癥反應的主要通路之一,且TREM1 介導的炎癥反應均由該信號通路發(fā)揮作用。TLR-4 激活后會通過MyD88 觸發(fā)信號,降解IκBα 和釋放NF-κB p65,從而激活NF-κB[19-20]。而NF-κB 作為核轉錄因子,可誘導TNF-α、IL-1β、IL-6等炎癥因子的表達[21]。腸道免疫系統(tǒng)異常激活導致的炎癥“瀑布”效應是NEC 發(fā)病的關鍵因素[22-23]。眾多研究[24-25]顯示,抑制TLR-4/NF-κB 信號通路活化可改善NEC 腸損傷,降低炎癥反應。Shi 等[26]研究顯示,LR12肽通過降低TREM 1 的表達,抑制NF-κB 信號通路的激活來緩解LPS 誘導的急性肺損傷。本研究結果顯示,NEC 幼鼠腸組織中TLR-4/NF-κB 炎癥信號通路異?;罨?。采用LR12 肽干預后,NEC 幼鼠腸組織中TLR-4/NF-κB 炎癥信號通路受到抑制。因此,LR12肽可能通過下調(diào)TREM1,進而抑制TLR-4/NF-κB 炎癥信號通路活化,最終降低炎癥反應及腸黏膜通透性,改善NEC 腸道損傷。

        綜上所述,LR12 肽能夠改善腸黏膜通透性,抑制腸組織炎癥反應,從而減輕腸組織損傷,其機制可能與抑制TLR-4/NF-κB 信號通路活化有關,本研究可為NEC 疾病的預治療提供了新的方向。

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