任玉鵬，納 吉，向 華，向 萌，王一丹

（西南民族大學畜牧獸醫(yī)學院，四川 成都 610041）

豬偽狂犬病是由豬偽狂犬病病毒（Pseudorabies Virus, PRV）引起的豬的一種急性接觸性傳染病。除豬外，犬、貓和其他多種家畜均為其易感動物。PRV對各年齡豬只均可引起發(fā)病，以引起呼吸困難、神經(jīng)癥狀和繁殖障礙為特征，特別是導(dǎo)致母豬流產(chǎn)，仔豬感染死亡率可達100%，危害極為嚴重[1]。我國長期通過免疫接種、抗體監(jiān)測等手段持續(xù)對PRV進行防控和凈化，這使得豬偽狂犬病疫情在一定程度上得到控制。但是，近年來我國PRV免疫失敗的案例層出不窮，具體表現(xiàn)為免疫PRV Bartha-k61基因缺失疫苗的豬群再次出現(xiàn)感染，并且其發(fā)病率和死亡率呈現(xiàn)明顯上升趨勢，給我國PRV的防控帶來新的挑戰(zhàn)[2]。

對當前流行的PRV毒株分子特征研究結(jié)果表明，流行株基因組出現(xiàn)了不同程度的遺傳變異，特別是自2011年后，PRV變異株的出現(xiàn)導(dǎo)致其在國內(nèi)流行趨勢逐步上升。近年來，在四川、河南、湖北和廣東等多地均有PRV流行的報道[3]。對PRV變異株主要毒力基因測序分析發(fā)現(xiàn)，變異株與經(jīng)典毒株處于不同的分支，經(jīng)典毒株屬于基因1型，變異株多為基因2型，在gB、gC、gD和gE基因均存在一定程度的遺傳變異[4-5]。如gB基因的遺傳變異多分布于其重要抗原表位（59～279氨基酸）區(qū)域，這可能是導(dǎo)致毒株部分抗原性改變的重要原因[6-7]。此外，高映雪等[8]對2013—2018年國內(nèi)流行的64個毒株測序分析發(fā)現(xiàn)，所有毒株與經(jīng)典株相比在gE基因均出現(xiàn)不同程度的變異，特別是第48位氨基酸處均存在1個天冬氨酸（D）插入。由于gE基因是PRV重要的毒力基因，上述氨基酸變異是否對病毒毒力產(chǎn)生影響值得進一步研究。同時，gE基因作為PRV重要分子檢測靶點，是野毒株與基因缺失疫苗株的重要鑒別基因，該基因的核苷酸變化可能會導(dǎo)致部分已有檢測方法的靈敏性下降[9]。所以，新的PRV分子檢測方法有必要建立。

本研究擬建立一種基于TaqMan熒光定量PCR技術(shù)的PRV分子檢測方法，以PRV的gE基因作為靶向基因設(shè)計特異性引物和探針，達到有針對性檢測PRV野毒株的目的。同時對該方法的反應(yīng)體系及條件進行優(yōu)化，評估其敏感性、特異性和穩(wěn)定性，并比較其與商品化試劑盒檢測符合率，以期為PRV野毒株的快速檢測提供可靠手段。

1 材料與方法

1.1 菌毒株及樣本

試驗于2020年7—12月在西南民族大學畜牧獸醫(yī)學院動物醫(yī)學實驗室進行。PRV Bartha-k61疫苗株購自某實業(yè)股份有限公司；豬流行性腹瀉病毒（PEDV）、豬細小病毒（PPV）、豬A群輪狀病毒（PoRV）、豬德爾塔冠狀病毒（PDCoV）、豬傳染性胃腸炎病毒（TGEV）、豬鏈球菌（S.suis）、豬源大腸桿菌（E.coli）、豬源巴氏桿菌（P.multocida）、豬霍亂沙門氏菌（S.choleraesuis）和葡萄球菌（S.aureus）等用于特異性檢驗的菌毒株及核酸樣本信息見表1；用于符合率檢測的50份PRV已知陽性樣本核酸及40份已知陰性樣本核酸由西南民族大學動物醫(yī)學實驗室保存。

表1 菌毒株信息及來源

1.2 主要試劑

TIANamp Virus DNA/RNA kit和TIANamp Bacteria DNA kit購自天根生物科技（北京）有限公司；豬偽狂犬病病毒（gE基因）實時熒光PCR檢測試劑盒購自北京世紀元亨動物防控技術(shù)有限公司；Premix Ex TaqTM（Probe qPCR）、BEST Agarose Gel DNA Extraction Kit Ver 4.0購自寶生物工程（大連）有限公司。

1.3 引物及探針的設(shè)計

用Maga 7.0對NCBI上登錄的多個PRV毒株gE基因序列（KJ789182.1、MN240565.1、MK622299.1、MH507059.1、KU962917和KX170935.1）進行比較，通過對比分析找到gE基因的保守區(qū)域，采用Primer 5.0設(shè)計PRV gE基因長片段（562 bp）擴增引物（P1/P2）用于構(gòu)建質(zhì)粒標準品；進一步在該區(qū)域內(nèi)用Beacon Designer 8設(shè)計用于檢測方法建立的特異性引物（P3/P4）及探針（表2）。上述引物序列均由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。

表2 PRV擴增引物

1.4 核酸提取

將病毒液和菌液各取200 μL，按照TIA Namp Virus DNA/RNA kit和TIANamp Bacteria DNA kit的操作指南，對包括PRV SC-5株（Vero細胞毒）在內(nèi)的所有毒株菌核酸進行提取，并將抽取的樣品放置在-80 ℃下保存。

1.5 質(zhì)粒標準品的構(gòu)建

分別對PRV SC-5株核酸進行PCR擴增，反應(yīng)總體系為50 μL，Premix Ex TaqTM25 μL、上下游引物（P1/P2）均為1 μL、模板2 μL，dd水補足至50 μL。反應(yīng)條件：94 ℃ 2 min，（94 ℃ 30 s，57 ℃30 s，72 ℃ 35 s）循環(huán)30次，72 ℃ 10 min。將擴增產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳。

根據(jù)Mini BEST Agarose Gel DNA Extraction Kit Ver 4.0試劑盒說明書對目的片段進行回收純化，然后根據(jù)pMD19-T載體說明書進行產(chǎn)物連接并轉(zhuǎn)化至E.coliDH5α感受態(tài)細胞中。將重組菌涂布接種于含有Amp的LB平板，取陽性克隆進行測序鑒定，將其命名為：pGEM-T-PRV。利用NanoDrop 2000測定質(zhì)粒標準品的濃度并根據(jù)公式拷貝數(shù)（copies/μL）=6.02×1023（copies/mol）×濃度（ng/μL）/MW（g/mol），MW為平均分子量，計算核酸標準品的拷貝數(shù)。

1.6 反應(yīng)條件的優(yōu)化

以步驟1.5中所獲得的度為104copies/μL的pGEM-T-PRV標準品為模板，按照單一變量原則，進行熒光定量RT-PCR反應(yīng)條件和體系的優(yōu)化。在反應(yīng)體系中加入引物P3/P4，使其終濃度分別為0.2、0.4、0.6、1 μmoL/L；加入探針使其終濃度分別為0.05、0.1、0.15、0.2、0.5 μmoL/L，根據(jù)擴增曲線和熒光強度值進行引物和探針濃度的優(yōu)化。采用最佳引物和探針濃度，在退火溫度分別為56、58、60、62 ℃下進行反應(yīng)，最終確定最優(yōu)體系和條件。

1.7 反應(yīng)條件的優(yōu)化

將pGEM-T-PRV標準品進行101～107倍的稀釋，并分別作為模板進行TaqMan熒光定量RT-PCR檢測，分別以各稀釋度質(zhì)粒標準品拷貝數(shù)的Log值和CT值作為標準曲線的X軸和Y軸以繪制標準曲線，確定線性關(guān)系。

1.8 特異性試驗

分別用PRV Bartha-k61株、PEDV、TGEV、PoRV、PPV、PDCoV、S.suis、E.coli、P.multocida、S.choleraesuis和S.aureus等菌毒株核酸作為模板，以無菌水為空白對照，進行TaqMan熒光定量PCR反應(yīng)評估檢測方法的特異性。

1.9 敏感性試驗

將已知濃度的pGEM-T-PRV標準品進行10倍梯度倍比稀釋，以各稀釋度標準品混合液為模板，按照最佳反應(yīng)條件進行一步法多重TaqMan熒光定量RT-PCR反應(yīng)，以評價該方法的靈敏性。

1.10 重復(fù)性試驗

以步驟1.9中稀釋至103、105和107拷貝數(shù)的pGEM-T-PRV為模版，進行3次TaqMan熒光定量RT-PCR反應(yīng)，每次試驗設(shè)置3次重復(fù)，以評價該方法組內(nèi)和組間的重復(fù)性，并將試驗結(jié)果進行統(tǒng)計學分析。

1.11 與商品化檢測試劑盒比較檢測符合率

用本研究建立的方法與PRV實時熒光PCR檢測試劑盒進行比較。同時檢測50份已知PRV野毒感染陽性樣本和40份PRV陰性進行檢測，通過2×2列聯(lián)表法進行統(tǒng)計學分析計算符合率和Kappa值，評價該方法檢測結(jié)果與商品化檢測試劑盒的一致性。

2 結(jié)果

2.1 質(zhì)粒標準品的鑒定

對pGEM-T-PRV重組質(zhì)粒進行PCR鑒定，經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后，出現(xiàn)與預(yù)期大小相符的、大小約560 bp的目的條帶（圖1）。對重組質(zhì)粒的測序并經(jīng)Blast比對分析，結(jié)果與已登錄參考PRV毒株gE基因序列同源性為100%，表明質(zhì)粒標準品構(gòu)建成功。

圖1 PCR產(chǎn)物電泳結(jié)果

2.2 反應(yīng)條件的優(yōu)化

經(jīng)優(yōu)化結(jié)果表明，在PRV上下游引物濃度均為0.2 μmol/L，探針濃度為0.05 μmol/L、退火溫度為58 ℃時，擴增曲線為S型光滑曲線，表明此為最佳反應(yīng)體系和條件（圖2）。

圖2 優(yōu)化后的熒光定量PCR檢測結(jié)果

2.3 標準曲線的建立

以10倍倍比稀釋的標準品濃度的Log值為X軸，以CT的值為Y軸繪制標準曲線（圖3）。結(jié)果表明，該方法對標準品的擴增呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系，其線性關(guān)系表達式分別為：y=-3.481 8 x+36.699，R2=0.995 5。

圖3 熒光定量PCR的標準曲線

2.4 TaqMan熒光定量PCR的特異性

用本試驗建立的PRV（gE）熒光定量PCR檢測方法對PRV疫苗株、PEDV、TGEV、PDCoV、PoRV、PPV、S.suis、E.coli、P.multocida、S.choleraesuis和S.aureus進行檢測，其CT值均≥38或無熒光信號，表明該方法具有良好的特異性。

2.5 TaqMan熒光定量PCR的檢測下限

將PRV質(zhì)粒標準品進行1 0倍梯度稀釋（101～1011），然后進行TaqMan熒光定量PCR進行檢測，結(jié)果顯示PRV最低檢測下限為3.92 copies/μL（圖4），表明該方法具有良好的敏感性。

圖4 熒光定量PCR法對10倍梯度稀釋質(zhì)粒的檢測結(jié)果

2.6 重復(fù)性檢測

重復(fù)性評估結(jié)果表明，無論是組內(nèi)重復(fù)試驗還是組間重復(fù)試驗的變異系數(shù)（CV）均≤2%，表明該方法重復(fù)性和穩(wěn)定性良好（表3）。

表3 PRV的重復(fù)性檢測結(jié)果

2.7 符合率比較

用商品化的PRV（gE）熒光定量檢測試劑盒與本研究構(gòu)建TaqMan熒光定量PCR同時對50份PRV已知陽性樣本核酸及40份已知陰性樣本進行檢測。結(jié)果表明，兩種方法對所有樣本的檢測符合率為100% （k=1）。

3 討論

傳染病病原精準快速診斷對疫病監(jiān)測預(yù)警和在早期防控過程中制定有針對性的政策措施具有重要意義。分子生物學診斷技術(shù)是實驗室診斷中最常見和可靠的技術(shù)手段。其中PCR、熒光定量PCR和巢式PCR技術(shù)是世界動物衛(wèi)生組織（OIE）推薦的非洲豬瘟、藍耳病、豬瘟、偽狂犬病等豬重大疫病病原檢測的常用技術(shù)[10]。而在所有的分子生物學檢測技術(shù)中，熒光定量PCR具有高效、特異、靈敏、可定量、高通量、操作簡便和無污染等一系列優(yōu)點，在病原學檢測中得以廣泛應(yīng)用。尤其是特異性TaqMan探針在熒光定量PCR中的應(yīng)用，進一步提高了檢測的特異性和靈敏度，適用于低拷貝數(shù)的臨床樣本檢測[11]。因此，本研究采用探針法熒光定量PCR技術(shù)建立針對PRV野毒株的快速檢測方法是其具有良好靈敏性和特異性前提和保證。此外，目前PRV基因結(jié)構(gòu)約有近95% 已被定位和測序。PRV基因組編碼近100種蛋白質(zhì)。其中編碼gE蛋白的基因是病毒復(fù)制的非必須毒力基因，其編碼的囊膜蛋白質(zhì)可促進感染細胞和臨近感染細胞的膜融合，從而促進病毒的擴散，gE基因的缺失會導(dǎo)致病毒的嗜神經(jīng)性毒力降低[12]。當前對PRV基因缺失疫苗的研究中，多采用確實gE、TK、gB等毒力基因的策略進行缺失株的構(gòu)建。因此，對gE基因的檢測可以實現(xiàn)只針對PRV野毒株的檢測，而不對基因缺失疫苗株進行檢出，可達到防止假陽性結(jié)果的目的。

本研究對PRV gE基因片段保守區(qū)域設(shè)計一對特異性的引物和探針，對反應(yīng)體系和條件進行了充分優(yōu)化，建立了一種檢測PRV野毒株的TaqMan熒光定量PCR方法。結(jié)果表明，在上下游引物濃度分別為0.2 μmol/L、探針濃度為0.05 μmol/L、退火溫度為58 ℃時擴增效果最佳，該方法檢測下限可達到3.92 copies/μL，具有較高的敏感性。對包括PRV基因缺失疫苗在內(nèi)的11種豬病相關(guān)的細菌和病毒株均無非特異性擴增，特異性良好。同時，該方法與商品化試劑盒同時檢測已知陽性和陰性樣本，結(jié)果符合率為100%，表明該方法檢測結(jié)果可靠，可以初步用于臨床樣本的檢測。本研究建立的PRV TaqMan熒光定量PCR方法可以為豬偽狂犬病的快速診斷和流行病學調(diào)查提供可供選擇的工具。