黃燕紅，蔣 湘，盤(pán)正華，蘇海雁，蔣定之，梁飛燕

（廣西-東盟食品檢驗(yàn)檢測(cè)中心, 廣西南寧 530021）

豆芽又稱(chēng)芽苗菜，營(yíng)養(yǎng)全面，脆嫩可口，是老百姓餐桌上常見(jiàn)的蔬菜。但近年來(lái)，問(wèn)題豆芽事件頻發(fā)[1?2]，相關(guān)部門(mén)對(duì)豆芽食品安全的關(guān)注和監(jiān)管力度[3?4]也越來(lái)越大，在2020年的食品監(jiān)督抽查及風(fēng)險(xiǎn)篩查中發(fā)現(xiàn)豆芽在生產(chǎn)過(guò)程中存在非法使用植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物的現(xiàn)象[5?6]。植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑如赤霉素、4-氯苯氧乙酸、6-芐基腺嘌呤等，是一類(lèi)用于調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)發(fā)育的低毒農(nóng)藥，主要用于促進(jìn)芽的形成、抑制根的生產(chǎn)，進(jìn)而提高發(fā)芽率。恩諾沙星、諾氟沙星、環(huán)丙沙星等喹諾酮類(lèi)藥物主要用于殺菌消毒及防止根部腐爛，從而延長(zhǎng)保質(zhì)期。而植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物的濫用，可造成生殖障礙、性早熟、肝損害等[7]，會(huì)引起過(guò)敏反應(yīng)或誘導(dǎo)病原體產(chǎn)生耐藥性，進(jìn)而對(duì)人體健康構(gòu)成潛在威脅[8?9]。

目前，豆芽中植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物的檢測(cè)方法文獻(xiàn)均有報(bào)道[7?24]，國(guó)家食品藥品監(jiān)督管理局2017年第24號(hào)公告附件BJS 201703[25]采用QuEChERS凈化，高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜（HPLCMS/MS）法測(cè)定豆芽中11種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑，但是在實(shí)際應(yīng)用時(shí)，赤霉素、吲哚丁酸的基質(zhì)干擾較大，在目標(biāo)峰附近有一個(gè)較大的干擾峰[24]。國(guó)家市場(chǎng)監(jiān)督管理總局2019年第15號(hào)公告附件BJS 201909[26]采用HLB固相萃取柱凈化，高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定豆制品、火鍋、麻辣燙等食品中11種喹諾酮類(lèi)化合物。這些檢測(cè)方法均為單個(gè)或幾個(gè)組分單獨(dú)檢測(cè)，且前處理繁瑣、耗時(shí)長(zhǎng)、成本高，不能滿足日常監(jiān)管及食品安全突發(fā)事件中大批量的豆芽樣品檢測(cè)所需要的高效快速、多組分同時(shí)檢測(cè)的要求，因此選擇簡(jiǎn)便快速的前處理方法及分析手段對(duì)解決同時(shí)檢測(cè)多組分植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物殘留尤為重要。

根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)[7?24,27?33]及日常監(jiān)管檢測(cè)需求，本方法選擇了30種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物作為研究對(duì)象，使用超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法分析，在同一個(gè)色譜質(zhì)譜條件下同時(shí)測(cè)定豆芽中可能添加的30種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物，并對(duì)市售19批豆芽進(jìn)行快速篩查。以期滿足日常監(jiān)管和應(yīng)對(duì)突發(fā)事件大批量快速準(zhǔn)確檢測(cè)的要求，并為食品安全檢驗(yàn)檢測(cè)工作提供技術(shù)支持。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

黃豆芽、綠豆芽 抽樣于廣西本地市場(chǎng)，共19批，絞碎均質(zhì)后，?20 ℃冷凍保存，待測(cè)；空白樣品來(lái)自于實(shí)驗(yàn)室自發(fā)豆芽 參照DB65/T 4038-2017豆芽生產(chǎn)技術(shù)規(guī)范自培，綠豆（黃豆）經(jīng)過(guò)清洗和浸豆（大豆 20~25 ℃清水浸泡 6 h，綠豆先用75~80 ℃燙豆 3 min，冷卻后 20~25 ℃清水浸泡4 h）后進(jìn)行培育（溫度 20~26 ℃，4 h 噴淋一次），6~7 d后采集豆芽樣品；甲酸、乙腈、乙酸銨 色譜純，德國(guó)Merck公司；實(shí)驗(yàn)室用水 為超純水；Waters Oasis PRiME HLB 固相萃取小柱 (6 cc，500 mg) 、HLB 固相萃取小柱（6 cc，200 mg） Waters公司；QuEChERS凈化管（300 mg無(wú)水硫酸鎂和100 mg C18） Stan Quik公司；標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)：矮壯素（Chlormequat chloride）、多效唑（Paclobutrazol）、氟醚唑（Tetraconazole）、戊唑醇（Tebuconazole）、西瑪津（Simazine）、烯唑醇（Diniconazole）、吲哚丁酸（3-Indolebutyric acid）、吲哚乙酸（Indole-3-acetic acid）、莠去津（Atrazine）、諾氟沙星（Norfloxacin）、氧氟沙星（Ofloxacin）、洛美沙星（Lomefloxacin）、培氟沙星（Pefloxacin）、氟羅沙星（Fleroxacin）、沙拉沙星（Sarafloxacin）、雙氟沙星（Difloxacin）、司帕沙星（Sparfloxacin）、環(huán)丙沙星（Ciprofloxacin）、達(dá)氟沙星（Danofloxacin）、恩諾沙星（Enrofloxacin）、氟甲喹（Flumequine）、2,4-二氯苯氧乙酸（Sodium 2,4-dichlorophenoxyacetate） 、 4-氟 苯 氧 乙 酸 （4-Fluorophenoxyacetic acid） 、 4-氯 苯 氧 乙 酸 （4-Chlorophenoxyacetic acid） 、 6-芐 基 腺 嘌 呤 （6-Benzylaminopurine）、赤霉素（Gibberellic acid）、氯吡脲（Forchlorfenuron）、噻苯?。═hidiazuron）、三碘苯甲酸（2,3,5-Triiodobenzoic acid）、異戊烯腺嘌呤（N6-(delta 2-Isopentenyl)-adenine） 純度>98%，德國(guó)Dr.Ehrenstorfer GmbH公司。

4500 Q-TRAP三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀 美國(guó)AB公司；Agilent SB-Aq RRHD 色譜柱（2.1 mm×100 mm，1.8 μm） 安捷倫公司；Waters ACQUITY UPLC?BEH C18（十八烷基鍵合硅膠柱）色譜柱（1.7 μm, 2.1 mm×100 mm） 、 Waters ACQUITY UPLC HSS T3 色譜柱（1.8 μm, 2.1 mm×100 mm）Waters公司；Thermo Hypersil GOLD色譜柱（1.9 μm, 2.1 mm×100 mm）、高速冷凍離心機(jī)Thermo 公司；XSE205DU型電子天平 梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司；Milli-Q Advantage A10超純水機(jī) 德國(guó)Millipore公司；Multi Reax 型全自動(dòng)振蕩器 Heidolph公司；氮?dú)獍l(fā)生器 英國(guó)PEAK公司；TurboVap多功能全自動(dòng)樣品濃縮儀瑞典Biotage公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 樣品處理[16]稱(chēng)取均質(zhì)后的試樣2.50 g（精確到0.01 g）置于 50 mL聚丙烯離心管中，精密加入10 mL 90%乙腈水（含0.1%甲酸）溶液，渦旋振蕩10 min后，10000 r/min冷凍離心5 min。取上清液約6 mL，加入到PRiME HLB固相萃取柱內(nèi)，無(wú)需活化，保持一秒一滴，收集流出液，精密吸取4 mL于15 mL離心管中，40℃氮吹至近干，殘留液體用50%乙腈溶液定容至 1.00 mL，渦旋溶解，過(guò)0.22 μm濾膜后，待上機(jī)測(cè)定。

1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

1.2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液 分別稱(chēng)取30種標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)適量，用乙腈溶解定容至刻度，配制成質(zhì)量濃度均為1 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液，?20 ℃條件下保存，有效期六個(gè)月。

1.2.2.2 混合標(biāo)準(zhǔn)使用液 分別吸取1.00 mL標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液置于同一100 mL容量瓶中，用乙腈稀釋至刻度，制成 30種混合標(biāo)準(zhǔn)中間液（10 μg/mL）；精密量取30種混合標(biāo)準(zhǔn)中間液0.10、1.00 mL分別置于10 mL容量瓶中，用乙腈稀釋至刻度，混勻（質(zhì)量濃度分別為 100、1000 ng/mL），為混合標(biāo)準(zhǔn)使用液 1、2。

1.2.2.3 基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線溶液 稱(chēng)取2.50 g豆芽樣品空白基質(zhì)，分別加入混合標(biāo)準(zhǔn)使用液1、2按1.2.1方法處理樣品，制成質(zhì)量濃度分別為2、5、10、20、50、100、200、500 ng/mL的基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線溶液。

1.2.3 儀器條件

1.2.3.1 色譜條件 色譜柱：Agilent SB-Aq RRHD色譜柱（2.1 mm×100 mm，1.8 μm）；流動(dòng)相：A 為0.1% 甲酸水，B 為乙腈；進(jìn)樣體積：10 μL；流速：0.3 mL/min；柱溫：40 ℃。梯度洗脫程序：0~0.1 min，5%B；0.1~10 min，5%~90%B；10~12 min，90%~95%B；12~15 min，5%B。

1.2.3.2 質(zhì)譜條件 采用ESI源，正、負(fù)離子同時(shí)多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式（MRM）監(jiān)測(cè)；氣簾氣（CUR）流速35 L/min；離子源溫度（TEM）550 ℃；霧化氣（GS1）流速 55 L/min；輔助加熱氣（GS2）流速 55 L/min；正離子：電噴霧電壓（IS）4500V；射入電壓（EP）10 V；碰撞室出口電壓（CXP）6 V。負(fù)離子：電噴霧電壓（IS）-4500 V；射入電壓（EP）-10 V；碰撞室出口電壓（CXP）-14 V。

1.3 數(shù)據(jù)處理

采用MultiQuant 3.0.2和Excel 2010軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理與分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 質(zhì)譜條件優(yōu)化

在正負(fù)離子模式下分別對(duì)待測(cè)化合物標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行掃描找出母離子，在Q1 Multiple lons模式下優(yōu)化去簇電壓（DP），調(diào)節(jié)DP至適當(dāng)值，使母離子峰明顯顯現(xiàn)；再進(jìn)行子離子掃描，找出對(duì)應(yīng)的響應(yīng)強(qiáng)度大的特征離子，選取豐度較高的子離子作為定量和定性離子；在MRM模式優(yōu)化下優(yōu)化碰撞能量CE等參數(shù)，提取離子流色譜圖中拐點(diǎn)的數(shù)值為最優(yōu)參數(shù)。優(yōu)化后的質(zhì)譜條件見(jiàn)表1。

表1 30種化合物的質(zhì)譜參數(shù)Table 1 MS spectra parameters of 30 chemical compounds

2.2 色譜柱條件的優(yōu)化

2.2.1 色譜柱的選擇 本研究分別對(duì) Waters ACQUITY UPLC?BEH C18（ 1.7 μm, 2.1 mm×100 mm）、Waters ACQUITY UPLC HSS T3（1.8 μm,2.1 mm×100 mm）、Agilent RRHD SB-Aq（1.8 μm,2.1 mm×100 mm）、Thermo Hypersil GOLD（1.9 μm,2.1 mm×100 mm）4種不同型號(hào)的色譜柱在相同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行掃描分析，考察其分離效果與保留時(shí)間。結(jié)果發(fā)現(xiàn)：Waters ACQUITY UPLC? BEH C18對(duì)矮壯素基本無(wú)保留；Waters ACQUITY UPLC HSS T3多效唑峰與雜質(zhì)峰分不開(kāi)；Thermo Hypersil GOLD喹諾酮類(lèi)峰型不夠尖銳；Agilent RRHD SBAq分離效果最好，峰型更尖銳。因此采用Agilent RRHD SB-Aq作為本研究的色譜柱。

2.2.2 流動(dòng)相的選擇 在流動(dòng)相的選擇中，為了使分析物與干擾物達(dá)到分離，首先考察乙腈和甲醇，發(fā)現(xiàn)采用乙腈作為有機(jī)相時(shí)，質(zhì)譜響應(yīng)優(yōu)于甲醇，且基線噪音較低，應(yīng)該與乙腈在質(zhì)譜中更易離子化有關(guān)。在水相選擇時(shí)，分別對(duì)0.1%乙酸水溶液、0.1%甲酸水溶液、純水、10 mmol/L乙酸銨水溶液、10 mmol/L甲酸銨水溶液進(jìn)行考察。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，0.1%乙酸水溶液中赤霉素、4-氯苯氧乙酸、氯吡脲等負(fù)離子被抑制；0.1%甲酸水溶液中30種化合物均有較好的分離和響應(yīng)，峰型比較尖銳；純水中赤霉素峰分裂，喹諾酮類(lèi)響應(yīng)較低，且大部分化合物峰型拖尾；10 mmol/L乙酸銨水溶液中諾氟沙星等喹諾酮類(lèi)化合物峰型變差，響應(yīng)低，同時(shí)也降低了赤霉素、2,4-二氯苯氧乙酸等部分負(fù)離子化合物的響應(yīng)；10 mmol/L甲酸銨水溶液中，恩諾沙星、環(huán)丙沙星、6-芐基腺嘌呤等化合物峰型拖尾且分離度降低。因此采用乙腈-0.1%甲酸水溶液作為本次研究的流動(dòng)相。

2.3 樣品前處理方法的優(yōu)化

2.3.1 提取溶劑的選擇 本研究首先對(duì)提取溶劑進(jìn)行優(yōu)化，由于所分析的化合物均為極性物質(zhì)，且在酸性條件下比較穩(wěn)定，本方法以30種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物中比較典型或回收率比較差的赤霉素、諾氟沙星、恩諾沙星、4-氯苯氧乙酸、吲哚乙酸、6-芐基腺嘌呤等6種化合物為依據(jù)，樣品在相同加標(biāo)量50 μg/kg的情況下，分別考察含1%乙酸乙腈溶液、含1%甲酸乙腈溶液、90%乙腈水（含0.1%甲酸）溶液、80%乙腈水（含0.1%甲酸）溶液的提取效果，結(jié)果如圖1所示。采用90%乙腈水（含0.1%甲酸）溶液作為提取溶劑時(shí)，赤霉素、諾氟沙星、恩諾沙星、4-氯苯氧乙酸、吲哚乙酸、6-芐基腺嘌呤回收率穩(wěn)定，均為77%以上。

圖1 不同提取溶劑的回收率Fig.1 Recoveries of chemical compounds with different extraction solvents

2.3.2 凈化條件的選擇 本研究通過(guò)對(duì)QuEChERS凈化管（300 mg無(wú)水硫酸鎂和100 mg C18）、Waters HLB固相萃取小柱和Waters Oasis PRiME HLB固相萃取小柱三種凈化方式進(jìn)行加標(biāo)回收比較，結(jié)果發(fā)現(xiàn)，C18粉末能有效去除豆芽中的雜質(zhì)，但噻苯隆、諾氟沙星、沙拉沙星的回收率較低，僅達(dá)到52%~65%；而使用HLB固相萃取小柱過(guò)柱時(shí)易堵塞凈化柱，回收率偏低，為 58%~89%，且偏差大；PRiME HLB固相萃取小柱屬于過(guò)濾性去除雜質(zhì)固相小柱，能有效去除樣品溶劑中的磷脂類(lèi)干擾物，樣品溶劑無(wú)需轉(zhuǎn)換、活化柱子、淋洗等步驟，可大大提高樣品通量，對(duì)目標(biāo)物損失較少，回收率達(dá)到75%~113%。而豆芽基質(zhì)中主要雜質(zhì)為磷脂類(lèi)干擾物，本研究比較了未使用PRiME HLB凈化以及使用PRiME HLB凈化（圖2）后的樣品，在母離子質(zhì)荷比為 431 和子離子質(zhì)荷比為 184 條件下，對(duì)磷脂中的主要成分磷脂酰膽堿進(jìn)行檢測(cè)[34]，結(jié)果表明PRiME HLB 固相小柱能有效去除豆芽中的大部分磷脂。采用PRIME HLB前處理過(guò)程更快速、高效、靈敏，能滿足豆芽中30種藥物殘留的分析檢測(cè)要求，故選用PRIME HLB固相小柱進(jìn)行凈化。

圖2 使用PRiME HLB凈化與未凈化樣品的磷脂酰膽堿總離子流圖Fig.2 Ion chromatogram of the purified sample using PRiME HLB and the unpurified sample without PRiME HLB

2.3.3 標(biāo)準(zhǔn)工作曲線配制的選擇 根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)[12,18]，豆芽中植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物的標(biāo)準(zhǔn)工作曲線為空白基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線和基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)曲線，本研究分別采用這兩種曲線對(duì)30種化合物進(jìn)行加標(biāo)回收比較，樣品添加濃度為10 μg/kg，結(jié)果如圖3所示。采用空白基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算回收率時(shí)，喹諾酮類(lèi)藥物的回收率只有63%~78%，且相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（RSD）差距比較大，為3.6%~13%，而采用基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算回收率時(shí)，回收率為85%~112%，RSD為1.5%~7.4%，故本研究采用基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量。

圖3 不同標(biāo)準(zhǔn)曲線的回收率Fig.3 Recoveries of chemical compounds with different standard calibration

2.4 線性范圍、檢出限和定量限

按1.2.2.3配制的基質(zhì)加標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線溶液，在優(yōu)化好的色譜質(zhì)譜條件下進(jìn)行檢測(cè)。外標(biāo)法定量，以質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)（X，μg/L）、峰面積為縱坐標(biāo)（Y）繪制工作曲線，30種目標(biāo)化合物在2~500 μg/L的濃度范圍內(nèi)線性良好，相關(guān)系數(shù)r均大于0.99，結(jié)果見(jiàn)表2。在陰性樣品中添加已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液，以3倍信噪比（S/N）計(jì)算檢出限（LOD）、10倍信噪比（S/N）計(jì)算定量限（LOQ），結(jié)果見(jiàn)表2。30種目標(biāo)化合物的檢出限為 0.04~1.67 μg/kg，定量限為 0.1~5.6 μg/kg。與標(biāo)準(zhǔn)BJS 201703（植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的檢出限為 5 μg/kg，定量限為 10 μg/kg）和標(biāo)準(zhǔn) BJS 201909（喹諾酮類(lèi)的檢出限為 5~7.5 μg/kg，定量限為15~22.5 μg/kg）相比，本方法靈敏度更高。

表2 30種化合物線性范圍、相關(guān)系數(shù)、檢出限、定量限Table 2 Linear ranges, correlation coefficients, LODs and LOQs of 30 chemical compounds

2.5 回收率和精密度

國(guó)家食品藥品監(jiān)督管理總局、農(nóng)業(yè)部、國(guó)家衛(wèi)生和計(jì)劃生育委員會(huì)(2015年第 11 號(hào))關(guān)于豆芽生產(chǎn)過(guò)程中禁止使用6-芐基腺嘌呤等物質(zhì)的公告，豆芽中不允許檢出 6-芐基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸鈉、赤霉素等物質(zhì)，國(guó)家食品安全風(fēng)險(xiǎn)監(jiān)測(cè)豆芽中諾氟沙星、恩諾沙星、環(huán)丙沙星參考值為不得檢出，參考BJS 201703與BJS 201909兩個(gè)標(biāo)準(zhǔn)定量限，確定回收加標(biāo)水平為 10、50、100 μg/kg。

在優(yōu)化條件下采用陰性豆芽基質(zhì)進(jìn)行加標(biāo)回收率和精密度試驗(yàn)，添加水平分別為10、50、100 μg/kg，每個(gè)水平分別做6組平行試驗(yàn)，計(jì)算回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（RSD）（見(jiàn)圖4、表3）。30種化合物的回收率為74.0%~113.5%，RSD為0.6%~7.7%，符合多組分分析要求。圖5為50 μg/kg添加水平下，豆芽中目標(biāo)化合物的正、負(fù)總離子流圖。

圖4 30種化合物的加標(biāo)回收率Fig.4 Recoveries of 30 reference compounds

圖5 30種化合物的總離子流圖Fig.5 Total ion chromatograms of 30 reference compounds

表3 30種化合物的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（n=6）Table 3 Recoveries and RSD of 30 chemical compounds (n=6)

2.6 實(shí)際樣品的測(cè)定

采用本方法對(duì)19批樣品中30種藥物殘留進(jìn)行測(cè)定。檢出情況如下：4-氯苯氧乙酸鈉3批，6-芐基腺嘌呤1批，諾氟沙星2批，恩諾沙星2批，環(huán)丙沙星1批。其中，4-氯苯氧乙酸鈉、6-芐基腺嘌呤與豆芽中植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的測(cè)定(BJS 201703)方法進(jìn)行比較，諾氟沙星、恩諾沙星、環(huán)丙沙星與豆制品、火鍋、麻辣燙等食品中喹諾酮類(lèi)化合物的測(cè)定（BJS 201909）方法進(jìn)行比較，結(jié)果見(jiàn)表4，本方法前處理更簡(jiǎn)單，與標(biāo)準(zhǔn)方法測(cè)得結(jié)果基本一致，相對(duì)偏差為2.2%~9.0%，表明本方法數(shù)據(jù)準(zhǔn)確可靠。

表4 本方法與標(biāo)準(zhǔn)方法測(cè)定結(jié)果比較Table 4 Comparison of the results between this method and standard method

3 結(jié)論

本研究采用改進(jìn)的PRiME HLB固相萃取柱凈化的方法建立了LC-MS/MS同時(shí)測(cè)定豆芽中30種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物殘留的分析方法。本研究方法可以同時(shí)分析豆芽中植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物，前處理簡(jiǎn)單快速、節(jié)約成本、縮短檢驗(yàn)周期，將現(xiàn)行的檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)豆芽中植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的測(cè)定(BJS 201703)[25]與豆制品、火鍋、麻辣燙等食品中喹諾酮類(lèi)化合物的測(cè)定（BJS 201909）[26]有效整合，填補(bǔ)了標(biāo)準(zhǔn)分類(lèi)檢測(cè)的不足。該方法簡(jiǎn)便快速、基質(zhì)干擾少、靈敏度高、線性范圍廣，能夠滿足豆芽中植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑和喹諾酮類(lèi)藥物殘留的日常檢測(cè)需求。