潘靜,孟凱,秦曉冰
(1.青島農業(yè)大學動物醫(yī)學院/山東省預防獸醫(yī)學重點實驗室,山東 青島 266109;2.山東省農業(yè)科學院家禽研究所,山東 濟南 250100)
2015年7月以來,以包涵體肝炎和心包內出現淡黃色透明液體為主要臨床癥狀的“雞心包積水綜合癥”(hydropericardium-hepatitis syndrome,HHS)在中國大面積暴發(fā)流行,該病是由禽腺病毒4型(fowl avianadenovirus serotype 4,FAdV-4)引起的急性傳染病,對我國家禽綠色健康養(yǎng)殖構成巨大的威脅和挑戰(zhàn)[1]。被FAdV-4感染的家禽出現急性死亡,死亡高峰集中在1周之內,死亡家禽出現典型的心包積液以及包涵體肝炎癥狀。此外,FAdV-4感染能夠導致宿主的免疫抑制,由此導致的免疫失敗、繼發(fā)感染、混合感染進一步加劇了HHS的危害[2]。目前亟待有效檢測該病毒的商業(yè)產品。FAdV-4包括3種主要結構蛋白,分別為纖突蛋白Fiber、六鄰體蛋白Hexon和五鄰體基座Penton[3]。其中FAdV-4的基因組中有2個Fiber基因開放閱讀框,能夠編碼2個Fiber蛋白——Fiber-1和Fiber-2[4]。纖突蛋白Fiber-2和六鄰體蛋白Hexon可作為免疫原性蛋白起到一定的保護作用,通過比較其保護效率發(fā)現Fiber-2蛋白的免疫原性和保護原性最好[5]。
血清學診斷技術已被用于家禽FAdV感染的檢測,其進展主要集中在ELISA檢測技術的改進上。早期間接ELISA采用全病毒作為包被抗原,但病毒抗原的制作繁瑣、低效且靈敏度和特異性低。而基于重組蛋白的ELISA方法更靈敏、特異和準確,易形成標準化并適于大規(guī)模運用[6]。
本研究以從山東省某肉雞場分離到的一株FAdV-4毒株(命名為FAdV-4 SDJN0105株,于2021年1月29日保藏于武漢大學菌種保藏中心,保藏號為CCTCC No:V202114)為模板擴增Fiber-2基因,通過原核表達Fiber-2蛋白作為包被抗原,優(yōu)化反應條件,建立了FAdV-4間接ELISA抗體檢測方法,豐富了當前檢測FAdV-4的方法,為定量測定免疫雞體內抗體水平提供了參考依據。
禽腺病毒4型毒株SDJN0105株由本實驗室分離;FAdV-4陽性血清和陰性血清由本實驗室利用SPF雞制備和保存;雞傳染性法氏囊病病毒(IBDV)、雞傳染性支氣管炎病毒(IBV)、雞新城疫病毒(NDV)、禽白血病病毒(ALV)、H5和H9亞型禽流感病毒陽性血清由本實驗室保存;FAdV-8b陽性血清由濟南飛智生物技術有限公司惠贈;表達載體pET-30a(+)購自上海捷瑞生物工程有限公司;大腸桿菌BL21(DE3)購自北京全式金生物技術有限公司;SPF雞購自濟南斯派福瑞禽業(yè)科技有限公司。
DL5000 DNA Marker、DL2000 DNA Marker、限制性內切酶NdeⅠ和Hin dⅢ、Taq DNA聚合酶購自寶日醫(yī)生物技術(北京)有限公司;質粒小提試劑盒、DNA膠回收純化試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;Bradford蛋白濃度測定試劑盒、SDS-PAGE電泳液、5×蛋白上樣緩沖液、SDS-PAGE凝膠快速配制試劑盒、脫脂奶粉、BSA、一抗稀釋液購自碧云天生物技術有限公司;明膠購自Sigma-Aldrich(上海)貿易有限公司;ECL發(fā)光液購自環(huán)亞生物科技有限公司;蛋白Marker購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司;無縫克隆試劑盒購自北京全式金生物技術有限公司;HRP標記的兔抗雞二抗購自Proteintech中國公司。
1.3.1 SDJN0315株FAdV-4基因組提取 將病變雞的肝組織剪碎研磨,離心過濾后,稀釋1 000倍接種LMH細胞,72 h凍融細胞3次,接種下一代細胞,如此盲傳3代,收集細胞上清,用病毒基因組提取試劑盒提取FAdV-4基因組DNA,于-80℃保存。
1.3.2 Fiber-2基因克隆與優(yōu)化 根據NCBI上Fiber-2基因保守區(qū)序列設計一對Fiber-2全長擴增引物,上游引物:5′-ATGCTCCGGGCCCCTAAAAGAAGACATTC-3′,下游引物:5′-TTACGGGAGGGAGGCCGCTGGACAGC-3′。以FAdV-4基因組DNA為模板,PCR克隆Fiber-2基因。利用密碼子優(yōu)化軟件MaxCodonTMOptimization Program(V13)對Fiber-2核苷酸序列進行優(yōu)化,使之更易在大腸桿菌中表達。由生工生物工程(上海)股份有限公司合成含目的基因的pUC57-Fiber-2質粒,并用無縫克隆引物擴增優(yōu)化后的Fiber-2基因,無縫克隆上、下游引物,分別為5′-TGGTGCTCGAGTGCGGCCGCAAGCTTATGCTCCG GGCCCCTAAAAGA-3′和5′-GGCCATGGCTGAT ATCGGATCCAATTCTTACGGGAGGGAGGCCGCTG GACAG-3′。本試驗所用引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
1.3.3 pET-30a(+)-Fiber-2重組質粒的構建 將pET-30a(+)質粒經限制性內切酶NdeⅠ和Hin dⅢ酶切,經核酸電泳鑒定正確后用DNA膠回收純化試劑盒回收線性載體質粒。將線性載體質粒pET-30a(+)、目的基因Fiber-2用無縫克隆試劑盒連接,轉化到DH5α感受態(tài)細胞,挑取單克隆菌落搖菌提質粒,經PCR、瓊脂糖凝膠電泳鑒定后,送北京六合華大基因科技有限公司測序。
1.3.4 Fiber-2蛋白表達純化與鑒定 將測序正確的重組質粒pET-30a(+)-Fiber-2轉化到BL21(DE3)感受態(tài)細胞,挑取單克隆菌落培養(yǎng),測序鑒定陽性后對其進行誘導表達。當菌液OD600值達到0.8時,加入IPTG,使之終濃度為0.2 mmol/L,15℃誘導16 h,離心收集菌體。超聲裂解,4℃離心3 min,分別取上清和沉淀,沉淀用等量PBS重懸,分別取出80μL,加蛋白上樣緩沖液煮沸后進行SDS-PAGE電泳,分析蛋白的表達方式。將表達產物通過Ni-IDA親和層析柱進行純化,用BCA蛋白濃度測定試劑盒測定目的蛋白濃度。純化后的蛋白用Western-Blot試驗鑒定其免疫原性,一抗用鼠源His單克隆抗體孵育,二抗用羊抗鼠抗體孵育。
采用方陣法優(yōu)化抗原最佳包被量和血清稀釋梯度。用pH 9.6、0.05 mol/L PBS作包被液稀釋Fiber-2蛋白,使其濃度分別為1、2、4、8、10 μg/mL,包被96孔酶標板,每個濃度包被3個孔,100μL/孔,37℃放置1 h后4℃包被過夜。次日棄去孔內液體,用PBST洗滌,200μL/孔,靜置1 min后棄去拍干,重復5次。用1%BSA作封閉液,100μL/孔,37℃封閉1 h,洗滌,同上。將FAdV-4陰性血清、陽性血清分別按1∶100、1∶200、1∶400、1∶800、1∶1600、1∶3200、1∶6400、1∶12800稀釋加入96孔板中,100μL/孔,每個梯度3個重復,混勻,37℃溫育30 min。洗滌拍干加入1∶10000稀釋的HRP標記的兔抗雞二抗,100 μL/孔,37℃溫育30 min。洗滌拍干加入TMB底物顯色液,37℃避光反應10 min。加入2 mol/L濃硫酸終止液,50μL/孔,15 min內讀取OD450值,并計算陽性與陰性OD450的比值(P/N值)。陽性OD450值接近1.0,陰性OD450小于0.2,且P/N值最大時為最佳抗原包被量和血清稀釋梯度。
最適抗原濃度包被96孔板后,從不同包被方式(37℃包被1 h、37℃包被3 h、4℃包被過夜)中確定最佳包被方式。以同樣的方法確定最佳封閉液(0.5%BSA、1%BSA、5%脫脂奶粉、1%明膠),最佳封閉時間(30 min、1、2 h),待檢血清和二抗最佳孵育時間(30 min、1、2 h),最佳底物顯色時間(5、10、15 min)。
采取50只SPF雞的陰性血清,根據建立的ELISA方法對50份血清進行OD450值檢測,計算平均值)和標準方差(SD),陰陽性臨界值的判定為:大于等于+3SD)為陽性,小于為陰性[7]。
利用建立的ELISA方法,以FAdV-4陽性血清為陽性對照,陰性血清為陰性對照,PBS為空白對照,以檢測陽性(經試劑盒鑒定)的NDV、IBV、IBDV、H5、H9、ALV、FAdV-8b血清為試驗組,均設3個重復孔,驗證該方法的特異性。
批內重復性檢測:用制備的同一批次ELISA試劑盒檢測5份FAdV-4陽性血清和2份FAdV-4陰性血清,每個樣品3次重復,計算同一份血清樣品OD450值得變異系數,確定間接ELISA方法的批內重復性。
批間重復性檢測:對上述7份血清用不同批次的ELISA試劑盒進行檢測,每個樣品3次重復,計算同一份血清樣品OD450值得變異系數,確定間接ELISA方法的批間重復性。
利用建立的間接ELISA方法以陽性血清為陽性對照,以陰性血清為陰性對照,對30份疑似感染禽腺病毒4型雞的血清進行檢測,測定OD450值,同時利用PCR方法檢測相應肝臟組織,比較這兩種方法對FAdV-4感染的檢出率,間接判斷建立的間接ELISA方法的準確性。
將同一批次試劑盒4℃保存,分別在6、12、18個月后再次鑒定新鮮的血清樣品,檢測結果同PCR方法檢測相應肝臟組織比較,確定該試劑盒的保質期。
以優(yōu)化的含目的基因的pUC57-Fiber-2為模板,用無縫克隆引物擴增Fiber-2基因,經核酸電泳檢測得到1 440 bp的條帶(圖1),膠回收得到純化的目的片段。用無縫克隆試劑盒將目的片段和線性載體連接轉化到表達菌,挑取5個菌落搖菌提質粒測序后與優(yōu)化的Fiber-2序列進行比對,同源性為100%。將含重組質粒的BL21(DE3)菌液進行誘導表達后超聲破碎,制備上清與沉淀兩個樣品做SDS-PAGE電泳,結果(圖2)顯示在上清與沉淀中均有重組蛋白的表達,蛋白分子量為60 kDa??紤]蛋白降解、變性、復性困難等因素,只將上清中表達的蛋白做純化處理,蛋白純度為90%,濃度為0.24 mg/mL。Western-Blot試驗結果(圖3)顯示其免疫原性良好。
圖1 優(yōu)化的Fiber-2基因克隆結果
圖2 SDS-PAGE分析重組蛋白上清純化結果
圖3 Western-Blot分析重組蛋白免疫原性
通過方陣優(yōu)化法確定Fiber-2抗原最佳包被量為4μg/mL;最適宜包被條件為37℃包被1 h;最佳封閉液和封閉時間為0.5%BSA封閉1 h;待檢血清最佳稀釋度為1∶400,孵育時間為30 min;HRP標記的兔抗雞二抗最佳孵育時間為30 min;最佳顯色時間為10 min。
50份FAdV-4抗體陰性血清樣品OD450值的平均值()為0.206,標準方差(SD)為0.038,根據公式得出陰陽性的臨界值為0.320。因此,當待檢血清樣品OD450值≥0.320即可判為陽性。
如表1所示,間接ELISA方法測定的NDV、IBV、IBDV、H5、H9、ALV、FAdV-8b血清OD450值均小于0.32,為陰性,說明本試驗建立的間接ELISA方法具有很好的特異性。
表1 特異性試驗結果
結果如表2所示,陽性血清按1∶6400稀釋后結果仍為陽性,說明本試驗建立的間接ELISA方法具有很好的敏感性。
表2 敏感性試驗結果
用建立的ELISA方法對5份FAdV-4陽性血清和2份FAdV-4陰性血清進行檢測,結果(表3)表明,批內和批間變異系數均小于5%,表明本試驗建立的間接ELISA方法具有很好的重復性。
表3 重復性試驗結果
用建立的間接ELISA方法對30份疑似感染FAdV-4雞的血清進行檢測,結果顯示28份血清陽性,2份血清陰性,與PCR鑒定結果完全一致,說明本試劑盒準確性高,結果可靠。
在與PCR結果100%符合的條件下,4℃保存12個月的試劑盒結果仍可靠,證明其穩(wěn)定性好,保質期長。
新型FAdV-4自2015年在我國暴發(fā)以來,給禽養(yǎng)殖業(yè)帶來了嚴重的危害,病雞主要表現為心包內有積液,肝臟出血,虎斑腎。目前預防該疾病的疫苗是FAdV-4滅活苗,但是免疫效果不明顯,還需要開發(fā)新型有效、成本低廉的疫苗[9]。檢測雞體內特異性抗體水平是評估疫苗免疫有效性的一個重要指標,酶聯免疫吸附試驗具有通量大、操作簡便、結果易于判定的優(yōu)點,并且高效的ELISA試劑盒可快速診斷疾病,凈化種群。研制出準確度高的ELISA試劑盒是當前養(yǎng)雞業(yè)和科學研究領域的迫切需求[10,11]。
桿狀病毒表達系統(tǒng)表達的蛋白雖然具有最接近病毒的天然蛋白結構的優(yōu)點,但操作程序繁瑣,成本也較高[12]。大腸桿菌表達系統(tǒng)表達周期短、易于培養(yǎng)和操作,為了降低ELISA試劑盒的成本,需要用便宜、產量高的大腸桿菌表達系統(tǒng)表達目的蛋白[13,14]。
ELISA一般以全病毒或病毒相關蛋白、病原特異性抗體作為包被抗原或抗體,對血清抗體及抗原進行檢測[15]。有文章指出,可用FAdV-4病毒作為包被抗原建立間接ELISA方法,但用全病毒包被增加了散毒的危險,不利于生物安全[16]。謝泉[17]利用Hexon蛋白作為包被抗原建立了間接ELISA方法,但陽性血清檢出率不高,可能是Hexon蛋白對機體刺激性不夠,未能產生相應抗原[18]。FAdV-4的短纖維蛋白是一種保護性抗原,具有誘導機體產生中和抗體的能力[19]。唐秋霞[5]比較了腺病毒4種免疫原蛋白的免疫原性,表明Fiber-2蛋白的免疫原性更高,和劉建勛等[20]的研究結果一致。
TMB作為底物與HPR作用后顯藍色,對人體安全,對光照條件的要求不高,故選TMB作為本方法的顯色底物[21]。間接法ELISA檢測方法使得信號放大,靈敏度高,而且對試劑要求小。本研究以原核表達的Fiber-2蛋白為包被抗原,建立了檢測抗體的間接ELISA方法。該方法特異性強,可重復性好,保質期長,具有良好的穩(wěn)定性和準確性,可用作商品化ELISA試劑盒應用于臨床檢測、診斷和科研中。