孟凡花,李臻,王慶國(guó),劉煒
(1.山東師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山東 濟(jì)南 250014;2.山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院濕地農(nóng)業(yè)與生態(tài)研究所,山東 濟(jì)南 250100)
脂質(zhì)作為生物膜的主要組成成分,可通過(guò)形成疏水屏障將細(xì)胞與外界隔離,參與植物碳源和能量的儲(chǔ)存、保護(hù)組織的形成、信號(hào)傳導(dǎo)以及抵御病菌侵入等生理過(guò)程[1]。植物脂質(zhì)轉(zhuǎn)移蛋白(lipid transfer protein,LTP)是高等植物中大量存在的一種小型堿性蛋白,能夠在體外可逆地結(jié)合并轉(zhuǎn)運(yùn)脂肪酸、磷脂、糖脂等多種疏水分子。LTP家族在植物中普遍存在,在擬南芥、水稻、小麥、玉米、油菜等中均已鑒定到大量LTP編碼基因,其中在擬南芥和水稻全基因組中分別發(fā)現(xiàn)了79個(gè)和53個(gè)LTPs基因[2],在玉米和油菜中分別發(fā)現(xiàn)了77個(gè)和63個(gè)LTPs基因[3,4]。最初,根據(jù)蛋白分子量的大小,主要將植物中的LTP分為兩類:LTPⅠ型和LTPⅡ型[5]。LTPⅠ型蛋白分子量大約為8~10 kDa,LTPⅡ型蛋白分子量約為7 kDa[6]。隨著在植物中鑒定的LTP蛋白增多,已有的按蛋白分子量分類的方法已經(jīng)滿足不了區(qū)分不同種類LTP蛋白的需求。因此,Boutrot等[2]基于對(duì)水稻、小麥、擬南芥的全基因組分析,根據(jù)8個(gè)半胱氨酸序列的同源性將LTP蛋白分為9類(Ⅰ~Ⅸ)[2]。LTP成員具有多種生物學(xué)功能,主要涉及磷脂轉(zhuǎn)運(yùn)、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、植物生殖發(fā)育、病原菌防御和非生物脅迫反應(yīng)等多個(gè)生物學(xué)過(guò)程。已知在煙草中超表達(dá)小麥LTP3F1基因,轉(zhuǎn)基因植株抗真菌病害能力得到增強(qiáng)[7];在山新楊中超表達(dá)ThLTP,轉(zhuǎn)基因植株在逆境脅迫下相對(duì)野生株具有更強(qiáng)的抗脅迫能力[8,9]。表明LTP在植物適應(yīng)各種逆境脅迫中發(fā)揮著重要作用。
谷子(Setaria italicaL.)俗稱小米,又稱為粟,是起源于我國(guó)的傳統(tǒng)優(yōu)勢(shì)作物及糧飼兼用作物,在我國(guó)、印度、日本等廣泛種植[10]。在禾本科植物中,谷子具有發(fā)達(dá)的根系、水分利用率高、蒸騰系數(shù)小、適應(yīng)性強(qiáng)、抗旱抗鹽堿能力突出、化肥農(nóng)藥用量少,是典型的抗旱節(jié)水作物及環(huán)境友好型作物。隨著全球氣候變化和我國(guó)工業(yè)化進(jìn)程加快,我國(guó)水資源缺乏形勢(shì)日益嚴(yán)峻,土壤鹽漬化加重,鹽堿地面積日益擴(kuò)大。提高抗旱耐鹽作物的種植比例是節(jié)約水資源、高效利用耕地的有效途徑。而谷子作為一種節(jié)水耐旱耐鹽堿作物,其在節(jié)水農(nóng)業(yè)及可持續(xù)發(fā)展農(nóng)業(yè)中的優(yōu)勢(shì)一目了然,也必將在應(yīng)對(duì)世界水資源短缺中作為重要的戰(zhàn)略儲(chǔ)備作物發(fā)揮作用。
鑒于谷子LTP基因的功能研究還較少,本研究室前期通過(guò)TMT(tandem mass tags)蛋白定量方法解析了干旱脅迫下谷子的差異蛋白組,并鑒定到一個(gè)響應(yīng)干旱脅迫的脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(K3YAY4),干旱下其編碼基因表達(dá)明顯上調(diào),進(jìn)一步克隆到該基因并命名為SiLTP1(XM-004977323),并對(duì)SiLTP1進(jìn)行了生物信息學(xué)分析和不同脅迫下的表達(dá)特性檢測(cè),為深入研究谷子LTP的生物學(xué)功能提供依據(jù)。
挑選籽粒飽滿的“豫谷一號(hào)”種子播種于96孔培養(yǎng)盒中,28℃恒溫培養(yǎng)箱(光照16 h、黑暗8 h)水培兩周至三葉期,分別用15%PEG6000處理,于0、2、6、12 h取幼苗葉片迅速放入液氮中-80℃保存?zhèn)溆?;分別用200 mmol/L NaCl、50 μmol/L ABA、50μmol/L MeJA處理,于0、1、2、4、6、12、24 h取幼苗葉片迅速放入液氮中,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄 使用TransZol Plant試劑盒(北京全式金生物技術(shù)有限公司)提取幼苗葉片的RNA,單鏈cDNA合成根據(jù)Prime-ScriptⅡ1st Strand cDNA Synthesis Kit試劑盒(北京寶日醫(yī)生物技術(shù)有限公司)操作。
1.2.2 谷子SiLTP1基因的克隆 檢索NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)獲得SiLTP1核苷酸序列,使用Primer Premier 5設(shè)計(jì)基因特異引物SiLTP1-S1:5′-ACCAGCAAAGCAAAGCAC-3′和SiLTP1-A1:5′-GTATGTAGCGACGGTGGAG-3′,由青島擎科生物工程有限公司合成。以谷子單鏈cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR體系為:TransStart FastPfuDNA Polymerase 0.5μL,5×TransStart FastPfubuffer 4μL,dNTP 2μL,SiLTP1-S1 1μL,SiLTP1-A1 1μL,單鏈cDNA 1μL,ddH2O補(bǔ)齊到20μL。反應(yīng)程序:94℃5 min;94℃30 s,56℃30 s,72℃40 s,34個(gè)循環(huán);72℃10 min。
PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳檢測(cè)后,使用Easy-Pure Quick Gel Extraction Kit切膠回收目的基因片段,連接至pEASY?-Blunt3載體上,并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌Trans1-T1感受態(tài)細(xì)胞中,在含Amp(ampicillin,氨芐青霉素)抗性的LB平板上過(guò)夜培養(yǎng),挑取單個(gè)菌斑,進(jìn)行菌液PCR。將驗(yàn)證后的陽(yáng)性克隆送到青島擎科生物工程有限公司進(jìn)行測(cè)序。
1.2.3 生物信息學(xué)分析 使用ExPASy網(wǎng)站(http://www.expasy.org/#)計(jì)算SiLTP1蛋白的理論分子量、等電點(diǎn)等基本參數(shù),使用在線網(wǎng)站SMART(http://smart.embl-heidelberg.de/)對(duì)蛋白結(jié)構(gòu)域進(jìn)行預(yù)測(cè),使用在線工具SignalP 4.1(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)分析蛋白信號(hào)肽序列,通過(guò)TMHMM(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)對(duì)蛋白進(jìn)行跨膜結(jié)構(gòu)域分析,利用SOPMA(https://www.expasy.org/proteomics)預(yù)測(cè)蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu),運(yùn)用SWISS MODEL(https://swissmodel.expasy.org/interactive)在線預(yù)測(cè)蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu),利用DNAMAN軟件對(duì)來(lái)自不同植物的LTP氨基酸序列進(jìn)行同源比對(duì)分析,利用MEGA 7.0軟件中的Neighbor-Joining(鄰位相連法,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。
1.2.4 qRT-PCR檢測(cè)SiLTP1在不同處理下的表達(dá)模式 根據(jù)SiLTP1基因全長(zhǎng)序列,使用Beacon Designer 8設(shè)計(jì)熒光定量PCR引物SiLTP1-S2:5′-ATGGCTCGCGCTCAGGTGGTG-3′和SiLTP1-A2:5′-CACTTGGATGGGATGCTGGC-3′,以谷子持家基因SiActin(NCBI登錄號(hào):XM-004978702)為內(nèi)參,在ABI PRISM 7900HT(Applied Biosystems)熒光定量PCR儀上進(jìn)行目的片段擴(kuò)增。擴(kuò)增體系為20μL,包括:稀釋10倍的cDNA模板1μL,SiLTP1-S2 1μL,SiLTP1-A2 1μL,2×Rox 10μL,ddH2O 7μL。擴(kuò)增條件:95℃10 min;之后95℃15 s,60℃1 min,40個(gè)循環(huán);95℃15 s;60℃1 min;95℃15 s;60℃15 s。使用2-ΔΔCt算法計(jì)算SiLTP1基因在不同處理下的相對(duì)表達(dá)量。
以谷子單鏈cDNA為模板,以SiLTP1-S1、SiLTP1-A1為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到一條354 bp的條帶(圖1)。將目的條帶切膠回收后與克隆載體pEASY?-Blunt3連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌,通過(guò)菌液PCR驗(yàn)證,且測(cè)序結(jié)果正確,證明其為目的基因,并命名為SiLTP1。
圖1 SiLTP1 cDNA的PCR克隆
2.2.1 SiLTP1編碼蛋白的結(jié)構(gòu)分析 使用Ex-PASy網(wǎng)站對(duì)SiLTP1核苷酸序列進(jìn)行分析,結(jié)果顯示,該基因編碼117個(gè)氨基酸殘基,其編碼蛋白分子量為11.5 kDa,等電點(diǎn)為9.24,不穩(wěn)定指數(shù)33.94,推測(cè)SiLTP1蛋白屬于堿性穩(wěn)定蛋白。
使用在線網(wǎng)站SMART對(duì)SiLTP1基因編碼蛋白結(jié)構(gòu)域進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果(圖2)顯示,在第7~26個(gè)氨基酸之間含有一個(gè)跨膜螺旋區(qū)域。另外,在第28~113個(gè)氨基酸之間還有一個(gè)AAI結(jié)構(gòu)域,該結(jié)構(gòu)域存在于植物脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白、種子貯藏蛋白及α-淀粉酶抑制劑結(jié)構(gòu)域家族蛋白中。
圖2 SiLTP1蛋白結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)
2.2.2 SiLTP1蛋白信號(hào)肽和跨膜結(jié)構(gòu)域分析
通過(guò)SignalP 4.1對(duì)SiLTP1蛋白序列進(jìn)行信號(hào)肽分析,結(jié)果(圖3)顯示,第1~28個(gè)氨基酸殘基為信號(hào)肽序列,第29個(gè)和第30個(gè)氨基酸殘基之間為信號(hào)肽裂解點(diǎn)。通過(guò)TMHMM對(duì)SiLTP1蛋白序列進(jìn)行跨膜結(jié)構(gòu)域分析,結(jié)果顯示,在第7~26個(gè)氨基酸處存在一個(gè)螺旋跨膜區(qū)(圖4),N端位于膜內(nèi),C端位于膜外。
圖3 SiLTP1蛋白信號(hào)肽預(yù)測(cè)
圖4 SiLTP1蛋白跨膜結(jié)構(gòu)域分析
2.2.3 谷子SiLTP1蛋白的二級(jí)及三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)
采用SOPMA進(jìn)行SiLTP1蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)分析,結(jié)果(圖5)顯示其二級(jí)結(jié)構(gòu)主要由α-螺旋(alpha helix,55.56%)、無(wú)規(guī)則卷曲(random coil,34.19%)、延伸鏈(extended strand,8.55%)組成。利用SWISS-MODEL對(duì)SiLTP1蛋白進(jìn)行三維結(jié)構(gòu)建模,結(jié)果(圖6)顯示,SiLTP1蛋白主要由α-螺旋和無(wú)規(guī)則卷曲組成;螺旋結(jié)構(gòu)折疊形成一個(gè)中心疏水性裂隙,用于結(jié)合疏水性配體。
圖6 SiLTP1蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)
2.2.4 部分LTP蛋白的同源比對(duì)分析 利用DNAMAN對(duì)來(lái)自谷子、水稻(Oryza sativa,Os)、擬南芥(Arabidopsis thaliana,At)、臘梅(Chimonanthus praecox,Cp)、陸地棉(Gossypium hirsutum,Gh)的代表性LTP蛋白序列進(jìn)行同源比對(duì)。結(jié)果顯示,SiLTP1含有典型的8個(gè)高度保守的Cys位點(diǎn),其分布為28-C-38-C-53-C-54-C-74-C-76-C-99-C-113-C(其中C表示半胱氨酸,數(shù)字表示氨基酸殘基所在位置);并且具有LTP保守的T/S-X-X-D-R/K五肽結(jié)構(gòu)域(圖7),該結(jié)構(gòu)域與脂質(zhì)結(jié)合、轉(zhuǎn)運(yùn)有關(guān)。
圖7 部分LTP蛋白的同源比對(duì)分析
2.2.5 SiLTP1的進(jìn)化樹(shù)分析 利用MEGA 7.0對(duì)谷子中的SiLTP1蛋白與來(lái)自擬南芥、水稻的LTP蛋白構(gòu)建進(jìn)化樹(shù),結(jié)果(圖8)顯示,SiLTP1在進(jìn)化關(guān)系上與水稻的第一亞族LTP親緣關(guān)系較近,顯示SiLTP1屬于LTP家族中的TypeⅠ類。
2.3.1 鹽脅迫、PEG模擬干旱脅迫下SiLTP1表達(dá)模式分析 如圖9所示,在200 mmol/L NaCl處理下,SiLTP1的表達(dá)出現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì),且在鹽處理6 h基因表達(dá)量達(dá)到最高,其表達(dá)水平約為對(duì)照的160倍,之后其表達(dá)量隨處理時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸降低,但仍顯著高于對(duì)照。經(jīng)15%PEG6000模擬干旱處理后,SiLTP1表達(dá)量在處理6 h后顯著升高,表達(dá)量約是未處理的17倍,之后隨干旱處理時(shí)間的延長(zhǎng),基因表達(dá)量有所下降。
圖9 SiLTP1在不同脅迫處理下的表達(dá)模式分析
2.3.2 各激素處理下SiLTP1表達(dá)模式分析 如圖10所示,在不同激素處理下,SiLTP1具有不同的響應(yīng)模式。經(jīng)ABA處理24 h,SiLTP1表達(dá)表現(xiàn)為先上調(diào)后下降的趨勢(shì),處理8 h,基因表達(dá)量達(dá)到最高,約為對(duì)照的33倍。MeJA處理4 h,SiLTP1表達(dá)量達(dá)到最大值,約為處理前的13倍,之后基因表達(dá)量逐漸降低。
圖10 SiLTP1在不同激素處理下的表達(dá)模式分析
研究表明,植物脂質(zhì)轉(zhuǎn)移蛋白是一類由多拷貝基因家族編碼的堿性小分子蛋白,能夠在體外可逆地結(jié)合并轉(zhuǎn)運(yùn)脂肪酸、磷脂、糖脂等多種疏水分子[11]。植物L(fēng)TP的分子量較小,通常為6.5~10.5 kDa,等電點(diǎn)一般在8.5~12.0,其在植物中含量豐富,約占可溶性蛋白總量的4%[12-18]。LTP具有相似的結(jié)構(gòu)特征,包括N端由21~27個(gè)氨基酸殘基組成、能夠引導(dǎo)蛋白分泌到細(xì)胞外參與細(xì)胞外親脂性物質(zhì)(如角質(zhì))沉積的信號(hào)肽,以及由8個(gè)高度保守的半胱氨酸組成的4個(gè)二硫鍵,其結(jié)構(gòu)模型為Cys1-Xn-Cys2-Xh-Cys3Cys4-Xn-Cys5-Cys6-Xn-Cys7-Xn-Cys8;同時(shí)在C端有一非螺旋區(qū)用來(lái)結(jié)合并穩(wěn)定脂質(zhì)[19,20]。
本研究通過(guò)對(duì)克隆獲得的SiLTP1基因進(jìn)行生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn),SiLTP1基因編碼117個(gè)氨基酸,蛋白分子量為11.5 kDa,等電點(diǎn)為9.24。將谷子與不同植物中的LTP蛋白構(gòu)建進(jìn)化樹(shù),發(fā)現(xiàn)SiLTP1屬于LTP家族中的TypeⅠ類。SiLTP1具有脂質(zhì)轉(zhuǎn)移蛋白家族典型的8 CM結(jié)構(gòu)、堿性等電點(diǎn)、N端信號(hào)肽序列、跨膜結(jié)構(gòu)域等,具備4個(gè)α-螺旋和無(wú)規(guī)卷曲組成的三級(jí)結(jié)構(gòu)。綜上所述,SiLTP1基因編碼蛋白符合LTP蛋白的結(jié)構(gòu)特征。
早期研究報(bào)道,植物脂質(zhì)轉(zhuǎn)移蛋白在植物抵抗生物脅迫和非生物脅迫過(guò)程中有著重要的作用,已知重金屬處理、冷脅迫、干旱脅迫、鹽脅迫、激素(如ABA)以及病原物侵染都會(huì)誘導(dǎo)LTP基因的表達(dá)[21]。對(duì)于生物脅迫,早在1997年,Molina等[22]通過(guò)將大麥LTP2基因轉(zhuǎn)入煙草,發(fā)現(xiàn)可以明顯抑制煙草丁香假單胞桿菌的生長(zhǎng);Patkar等[23]研究表明,在玉米中過(guò)表達(dá)LTP基因能夠提高受體材料對(duì)稻瘟病、白葉枯病等的抗病性;Choi等[24]研究表明,過(guò)表達(dá)NtLTP1的轉(zhuǎn)基因煙草顯示出蚜蟲(chóng)抗性。對(duì)于非生物脅迫,近年來(lái),劉勇[25]研究發(fā)現(xiàn)通過(guò)在玉米中過(guò)表達(dá)ZmLTPL63可以提高植株抗氧化能力,從而提高植株對(duì)干旱和鹽脅迫的耐受性。徐揚(yáng)[26]研究發(fā)現(xiàn)NtLTP4基因可以作為正調(diào)控因子參與植物的非生物脅迫響應(yīng)。小麥TdLTP4基因在擬南芥中過(guò)表達(dá)能夠提高其抗旱和抗鹽能力[27]。超表達(dá)脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白AZI能夠增強(qiáng)植物對(duì)鹽的耐受性,體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)證明,AZI可通過(guò)與有絲分裂原活化的蛋白激酶MPK3結(jié)合發(fā)揮作用[28]。鑒于LTP家族在植物逆境脅迫信號(hào)的響應(yīng)過(guò)程中的重要作用,推測(cè)同屬該家族的SiLTP1基因在谷子抗逆過(guò)程中也具有相似的生物學(xué)功能。
為了進(jìn)一步明確SiLTP1在各種環(huán)境脅迫下的表達(dá)特性,通過(guò)qRT-PCR方法分析了SiLTP1基因在干旱、高鹽、ABA以及MeJA處理下的表達(dá)情況。其中,鹽處理后,基因表達(dá)量顯著升高,說(shuō)明SiLTP1可響應(yīng)鹽脅迫,且在鹽處理6 h時(shí)其表達(dá)量約為未處理時(shí)的160倍,響應(yīng)程度較高,顯示該基因可能在谷子鹽脅迫響應(yīng)過(guò)程中發(fā)揮重要作用。PEG模擬干旱處理也可誘導(dǎo)基因的表達(dá),且在處理6 h時(shí)基因表達(dá)量出現(xiàn)明顯上調(diào),顯示該基因可能參與了谷子的干旱脅迫響應(yīng)。激素處理?xiàng)l件下,谷子幼苗經(jīng)ABA處理后,SiLTP1基因的表達(dá)量在8 h時(shí)達(dá)到未處理時(shí)的33倍,表明SiLTP1的表達(dá)受ABA的影響,推測(cè)該基因可能參與ABA依賴信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。經(jīng)MeJA處理后基因表達(dá)量也有明顯升高,已知MeJA是植物抗病防御過(guò)程中的重要信號(hào)分子,表明SiLTP1基因可能參與致病菌的防御過(guò)程。綜合分析該基因在各處理下響應(yīng)程度的不同,推測(cè)谷子SiLTP1基因作為L(zhǎng)TP家族成員,可能在谷子抗逆、抗病等過(guò)程中發(fā)揮作用,并主要參與鹽脅迫的響應(yīng)和應(yīng)答途徑及ABA調(diào)控的相關(guān)途徑。但其具體的生物學(xué)功能及作用機(jī)制還需要進(jìn)一步研究。