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        一株菲降解細(xì)菌產(chǎn)生生物表面活性劑特性的研究

        2021-11-04 05:22:52閻潔余雪巍李鑒博顧海萍郭二輝
        關(guān)鍵詞:生物

        閻潔,余雪巍,李鑒博,顧海萍,郭二輝

        河南農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院,河南 鄭州 450002

        近年來,由于工業(yè)化的快速發(fā)展,多環(huán)芳烴(polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)成為水體、土壤等環(huán)境中最主要的持久性有機(jī)污染物之一(Seo et al.,2009)。PAHs是由兩個(gè)或兩個(gè)以上苯環(huán)以線狀、角狀、簇狀排列在一起的稠環(huán)形化合物,具有致癌、致畸、致突變效應(yīng)和難降解性,主要來源于化石燃料的不完全燃燒、采油等工業(yè)過程(顧海萍,2016)。由于PAHs本身具有高度親脂的特性,環(huán)境中低濃度的PAHs可通過食物鏈的生物放大作用威脅人體健康(Abd-Elsalam et al.,2009),PAHs污染的修復(fù)迫在眉睫。目前PAHs污染修復(fù)技術(shù)主要包括物理法、化學(xué)法和生物法3種,其中物理法有蒸汽抽提、熱脫附、超聲波、隔離法和換土法等,化學(xué)法有光催化法、濕式氧化法、電化學(xué)氧化法和化學(xué)淋洗法等,這些物理化學(xué)修復(fù)方法不僅成本高昂、修復(fù)不徹底還可能造成二次污染(錢翌等,2013)。生物修復(fù)是利用微生物自身的生長(zhǎng)代謝來降解有機(jī)污染物的一種經(jīng)濟(jì)有效的方法,它具有可持續(xù)性和環(huán)境友好性(Masakorala et al.,2013)。然而,PAHs在環(huán)境中難溶、生物可利用性低是限制微生物修復(fù)有機(jī)污染物的關(guān)鍵問題(Xia et al.,2014)。生物表面活性劑是微生物生長(zhǎng)代謝產(chǎn)生的一類同時(shí)含有親水基團(tuán)和疏水基團(tuán)的大分子化合物(Sun et al.,2019),因其能夠提高PAHs的生物可利用性而受到廣泛關(guān)注(Pacwa-Plociniczak et al.,2016)。但是生物表面活性劑產(chǎn)量低、純化難、生產(chǎn)成本高,使其在PAHs污染修復(fù)中推廣困難,促使直接篩選產(chǎn)生生物表面活性劑的PAHs降解菌株成為新的研究思路(Xu et al.,2020)。

        由3個(gè)稠合苯環(huán)組成的菲已被美國(guó)環(huán)境保護(hù)署(USEPA)列為優(yōu)先污染物,它具有PAHs的典型結(jié)構(gòu)——k區(qū)和灣區(qū),常被作為PAHs降解研究的模式化合物(Seo et al.,2009)。張俊葉等(2017)的研究顯示,與其他國(guó)家相比,我國(guó)表層土壤中USEPA優(yōu)先控制的16種PAHs以菲的含量最高,這嚴(yán)重威脅到我國(guó)的糧食安全和國(guó)民健康。因此,本研究選取菲作為目標(biāo)污染物,從河南省信陽市一處多年垃圾焚燒場(chǎng)地中篩選分離出一株既能降解菲又能產(chǎn)生生物表面活性劑的細(xì)菌 GHP1,評(píng)價(jià)了該菌株的菲降解能力,鑒定了菌株所產(chǎn)生的生物表面活性劑類型,探討了菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的最佳生長(zhǎng)條件,為PAHs污染微生物修復(fù)提供理論基礎(chǔ)和技術(shù)支撐。

        1 材料與方法

        1.1 供試土壤

        本實(shí)驗(yàn)篩選菌株的土壤采自河南省信陽市一處有 50年歷史的垃圾焚燒場(chǎng)地(32.241°N,114.499°E),采樣深度為0—15 cm的表層土壤,土樣自然風(fēng)干后過2 mm篩,并于4 ℃下保存。根據(jù)中國(guó)農(nóng)業(yè)化學(xué)委員會(huì)(1983)的方法分析該土壤的基本理化性質(zhì)如下:pH、有機(jī)物和陽離子交換容量分別為 6.5、14.1 g·kg?1和 26.4 cmol·kg?1,機(jī)械組成為49.1%的沙粒、14.2%的粉粒和36.7%的粘粒。

        1.2 主要試劑與培養(yǎng)基

        菲(純度>99%,Sigma-Aldrich,上海),4000 mg·L?1的菲母液(丙酮溶),實(shí)驗(yàn)中其他有機(jī)試劑均為色譜純,無機(jī)化學(xué)試劑均為分析純。

        LB培養(yǎng)基:10 g胰蛋白胨,5 g酵母提取物,10 g NaCl,1000 mL蒸餾水,pH 7.2,固體LB需添加 1.5%瓊脂。無機(jī)礦質(zhì)培養(yǎng)基(MSM):1 g KH2PO4,0.5 g NaNO3,0.2 g MgSO4,0.5 g(NH4)2SO4,0.02 g CaCl2,1 g NaH2PO4·H2O,1000 mL蒸餾水,pH 6.5,固體MSM需添加1.5%瓊脂。所有培養(yǎng)基用前均經(jīng)過 121 ℃高壓蒸汽滅菌處理15 min。

        1.3 菲降解和產(chǎn)生生物表面活性劑菌株的篩選

        吸取2.5 mL菲母液于250 mL的錐形瓶?jī)?nèi)并使丙酮揮發(fā)形成菲膜,再加入 100 mL滅菌的液體MSM,使菲的初始濃度為100 mg·L?1。稱取10 g土壤樣品于錐形瓶中,在 28 ℃、130 r·min?1的條件下震蕩培養(yǎng)一周,該過程為第一次馴化。然后,將10 mL瓶?jī)?nèi)溶液轉(zhuǎn)移到新的含菲膜的錐形瓶中,添加90 mL滅菌的液體MSM,繼續(xù)培養(yǎng)一周,相同的操作再循環(huán)一次。3次馴化完成后,移取第3次馴化培養(yǎng)的溶液于無菌管中,梯度稀釋至 10?3、10?4、10?5、10?6后分別吸取 500 μL 涂布到覆有菲膜的MSM瓊脂平板上,在28 ℃條件下避光培養(yǎng)。每日觀察,挑出菌落周圍有透明降解圈的單菌落在含菲膜的MSM瓊脂平板上多次劃線純化,得到的純菌即為菲降解菌(Wang et al.,2016)。采用試管斜面保藏菌種,置于4 ℃下留用。

        檢測(cè)菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的方式多樣,如血平板法、液滴坍塌法、表面張力法和排油圈法等(Kumar et al.,2016;Xu et al.,2020)。其中,一些菌株本身就含有溶血活性的毒力因子或者產(chǎn)生的生物表面活性劑擴(kuò)散性差、產(chǎn)量不高從而導(dǎo)致血平板法、液滴坍塌法判斷不準(zhǔn)確(Pacwa-Plociniczak et al.,2016)。而排油圈法直觀的反映菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的能力(畢思寧等,2009),培養(yǎng)液表面張力的降低則能進(jìn)一步驗(yàn)證菌株產(chǎn)生生物表面活性劑(Mouafo et al.,2018)。因此,本研究采取排油圈法和表面張力測(cè)定法篩選能夠產(chǎn)生生物表面活性劑的菌株。排油圈法:將50 mL去離子水加入到直徑為9 cm的培養(yǎng)皿中,并滴加1 mL已被蘇丹紅Ⅲ染色的液體石蠟,將20 μL已離心去除菌體的培養(yǎng)液滴加在油膜中心,油膜被向外擠壓從而形成一個(gè)圓圈即為排油圈,以不接種菌株的液體培養(yǎng)基為對(duì)照(畢思寧等,2009)。表面張力測(cè)定法:接種菌株于液體LB培養(yǎng)基中,在28 ℃,130 r·min?1條件下培養(yǎng) 72 h,然后 10000 r·min?1離心 20 min 去除菌體,用表面張力儀測(cè)定去除菌體后培養(yǎng)液的表面張力(Xu et al.,2020)。

        1.4 菌株鑒定

        1.4.1 菌株的形態(tài)特征

        本研究將篩選出來的目標(biāo)菌株命名為 GHP1,將該菌株單菌落接種于固體 LB平板上培養(yǎng) 72 h(28 ℃),觀察菌落生長(zhǎng)形態(tài)特征;與此同時(shí),挑取單菌落接種于液體LB中,并在28 ℃、130 r·min?1條件下培養(yǎng)48 h,觀察菌液生長(zhǎng)情況。菌體革蘭氏屬性采用革蘭氏染色法并在普通光學(xué)顯微鏡下觀察,細(xì)胞形態(tài)使用透射電子顯微鏡觀察。

        1.4.2 菌株的生理生化特征

        甲基紅反應(yīng)、過氧化氫酶活性、纖維素水解、淀粉水解等生理生化指標(biāo)參考相關(guān)文獻(xiàn)(東秀珠等,2001)進(jìn)行測(cè)定,運(yùn)動(dòng)性采用標(biāo)準(zhǔn)檢測(cè)方法驗(yàn)證(Rashid et al.,2000),菌體表面的疏水性用菌體與水之間的接觸角(θw)來表征(顧海萍,2016),V-P反應(yīng)、吲哚產(chǎn)生、H2S產(chǎn)生、明膠水解、檸檬酸利用、β-半乳糖苷酶、脲酶、精氨酸雙水解酶、色氨酸脫氨酶活性通過API20E分析,由北京麥克羅科技有限公司完成。

        1.4.3 16S rDNA序列鑒定

        用DNA抽提試劑盒提取GHP1菌株的DNA,選用16S rDNA通用引物27F(5′-AGAGTTTGATCC TGGCTCAG-3′)和 1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增(石金禮等,2016),PCR產(chǎn)物進(jìn)行 1.5%瓊脂糖凝膠電泳驗(yàn)證后交由派森諾基因生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序。將獲得的序列結(jié)果在 NCBI數(shù)據(jù)庫(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)中進(jìn)行 BLAST比對(duì),采用MEGA 7.0軟件進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析,通過Neighborjioning方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,Bootstrap進(jìn)行1000次重復(fù)檢驗(yàn)(Deng et al.,2020)。

        1.5 菌株對(duì)菲的降解

        接種GHP1菌株于LB液體培養(yǎng)基中,在28 ℃、130 r·min?1條件下培養(yǎng) 24 h,離心(8000 r·min?1,4 ℃)5 min后倒掉上清液,收集的菌體用液體MSM洗滌兩次并重新懸浮,然后采用紫外分光光度計(jì)調(diào)節(jié)菌懸液的OD600nm值為1.0,待用。

        在滅菌棕色玻璃管中加入適量的菲母液,待丙酮揮發(fā)完全,加入9 mL滅菌的液體MSM和1 mL已制備好的菌懸液,使體系中菲的理論初始濃度為100 mg·L?1。將棕色玻璃瓶在 28 ℃、130 r·min?1下培養(yǎng),每48 h在超凈工作臺(tái)中曝氣1 min。分別在0、12、24、48、72 h取樣,根據(jù)Wang et al.(2016)研究中的方法提取、測(cè)定體系中菲的殘余量。以未接菌的含菲液體MSM為對(duì)照,每個(gè)時(shí)間點(diǎn)設(shè)置3個(gè)重復(fù)。

        采用一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程 C=C0×e?kt擬合菲的降解數(shù)據(jù)。其中,t1/2為菲的半衰期,即菲濃度降到50%所耗費(fèi)的時(shí)間t1/2=ln(2)/k,C0是菲的初始質(zhì)量濃度,C是溶液中菲在培養(yǎng)t時(shí)間時(shí)的殘留質(zhì)量濃度,k是一級(jí)動(dòng)力學(xué)常數(shù)(Gu et al.,2021)。

        1.6 生物表面活性劑的提取及鑒定

        1.6.1 生物表面活性劑的提取及純化

        接種菌株GHP1于液體LB培養(yǎng)基中,在28 ℃、130 r·min?1條件下培養(yǎng) 72 h,離心(4 ℃,10000 r·min?1,20 min)獲得無細(xì)胞的上清液,然后用 6 mol·L?1鹽酸將上清液酸化至 pH 2.0,并在 4 ℃下儲(chǔ)存過夜。再次在相同條件下離心收集沉淀物,該沉淀物即為生物表面活性劑的粗產(chǎn)物(Xia et al.,2014)?;?Batool et al.(2017)和 He et al.(2017)的方法提純生物表面活性劑,將粗品溶于氯仿/甲醇(V∶V=2∶1)溶劑中,使得粗品與溶劑的比為 1∶30,超聲30 min后攪拌并過濾,棄掉過濾的殘?jiān)芤航?jīng)氮吹后再冷凍干燥,即得純品。

        1.6.2 薄層層析

        將0.01 g提取的生物表面活性劑溶解在1 mL的氯仿/甲醇(V∶V=8∶2)中,超聲10 min至完全溶解,點(diǎn)樣于硅膠60板(GF254)上進(jìn)行薄層層析,用氯仿/甲醇/水(V∶V∶V=4∶3∶2)作為流動(dòng)相展層(馬斌斌等,2017),展層完成后進(jìn)行顯色反應(yīng)。本研究使用的顯色劑為茚三酮試劑,由溶解在100 mL正丁醇中的1.5 g茚三酮和3.0 mL乙酸組成(Xu et al.,2020)。

        1.6.3 傅里葉變換紅外光譜

        取約 1.0 mg研磨過的冷凍干燥后的生物表面活性劑粉末與100 mg干燥的KBr粉末研磨均勻,用壓片機(jī)壓成幾乎呈透明狀原片后于 4000—500 cm?1光區(qū)進(jìn)行紅外光譜掃描(Habib et al.,2020)。

        1.7 不同培養(yǎng)條件對(duì)菌株產(chǎn)生生物表面活性劑能力的影響

        測(cè)定在不同培養(yǎng)時(shí)間、溫度、pH、碳源條件下菌株培養(yǎng)液乳化指數(shù)(E24)的大小,以探究不同培養(yǎng)條件對(duì)菌株產(chǎn)生表面活性劑能力的影響。所有實(shí)驗(yàn)均在50 mL的錐形瓶中進(jìn)行,液體培養(yǎng)基為20 mL,各處理設(shè)置3組重復(fù)。E24參照Sun et al.(2019)的方法進(jìn)行測(cè)定,即取已去除菌體的菌株培養(yǎng)液和液體石蠟各5 mL分別加入尖頭離心管中,漩渦震蕩2 min混合均勻,室溫靜置24 h后測(cè)量其乳化層高度,并按照下式計(jì)算E24:

        式中:

        he——乳化層高度(cm);

        h——液體總高度(cm)。

        1.7.1 培養(yǎng)時(shí)間

        將制備好的菌懸液按 1∶9(V∶V)接種以蔗糖(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%)為唯一碳源的液體MSM,pH為6.5,在28 ℃、130 r·min?1條件下振蕩培養(yǎng),分別在培養(yǎng)的24、72、120、168 h取樣,測(cè)定菌株培養(yǎng)液的E24。

        1.7.2 溫度

        將制備好的菌懸液按 1∶9(V∶V)接種以蔗糖(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%)為唯一碳源的液體MSM,pH為6.5,分別設(shè)置培養(yǎng)溫度為 20、28、37 ℃,在 130 r·min?1條件下培養(yǎng)72 h,取樣測(cè)定菌株培養(yǎng)液的E24。

        1.7.3 pH

        將制備好的菌懸液按1∶9(V∶V)接種以蔗糖(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%)為唯一碳源的液體MSM,分別設(shè)置培養(yǎng)基的初始pH為5.0、6.5、8.0、9.0、10.0,在28 ℃、130 r·min?1條件下培養(yǎng) 72 h,取樣測(cè)定菌株培養(yǎng)液的E24。

        1.7.4 碳源

        在pH為6.5的液體MSM培養(yǎng)基中加入8種碳源,其中蔗糖、玉米淀粉、柴油、菜籽油、潤(rùn)滑油、石蠟、甘油按照質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%添加;菲的添加量為100 mg·L?1(預(yù)實(shí)驗(yàn)表明GHP1菌株在此濃度下生長(zhǎng)最佳)。然后按1∶9(V∶V)接種制備好的菌懸液,在 28 ℃、130 r·min?1條件下培養(yǎng) 72 h,取樣測(cè)定菌株培養(yǎng)液的E24。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 降解菲和產(chǎn)生生物表面活性劑菌株的篩選

        在涂滿菲的MSM平板上,如果菌落周圍的菲膜消失不見并出現(xiàn)肉眼清晰可見的透明圈,說明污染物菲被菌株降解,此透明圈即為透明降解圈(羅小艷,2015)。透明降解圈反映了菌株具有利用菲的能力,常作為初步篩選菲降解菌的快速方法(Wang et al.,2016)。微生物對(duì)于污染物的降解需要一定的適應(yīng)期,產(chǎn)生透明降解圈的速度越快,說明菌株對(duì)污染物的適應(yīng)能力越強(qiáng),降解速度越快(羅小艷,2015)。在初步篩選階段,涂布到覆著菲膜的MSM平板上的菌懸液培養(yǎng)一周后出現(xiàn)清晰可見且形態(tài)不一的單菌落,挑取周圍有透明降解圈的單菌落轉(zhuǎn)接到新的覆有菲膜的MSM平板上,多次進(jìn)行分離純化,最后純化出8株細(xì)菌。其中,GHP1菌株產(chǎn)生透明降解圈(圖1)的速度最快,培養(yǎng)72 h即可將平板上的菲(0.4 mg)利用完全,這說明GHP1菌株能降解污染物菲,且降解能力突出。

        圖1 GHP1菌落在覆有菲的MSM平板上產(chǎn)生的透明降解圈

        產(chǎn)生排油圈說明菌株產(chǎn)生生物表面活性劑,排油圈的直徑與表面活性劑含量成正比(Hentati et al.,2021)。為確定GHP1菌株是否產(chǎn)生生物表面活性劑,本實(shí)驗(yàn)對(duì)去除GHP1菌體后的培養(yǎng)液進(jìn)行排油圈實(shí)驗(yàn),并以滅菌的液體LB培養(yǎng)基作為空白對(duì)照。結(jié)果顯示,相對(duì)于液體LB,去除GHP1菌體后的培養(yǎng)液排油圈清晰可見(圖2),這說明GHP1菌株能產(chǎn)生生物表面活性劑。

        圖2 液體LB培養(yǎng)基(A)、菌株GHP1培養(yǎng)液(B)的排油圈Fig. 2 Oil displacement circle of liquid LB medium (A) and strain GHP1 culture solution (B)

        表面活性劑是一種能降低表面張力的物質(zhì)(Mouafo et al.,2018)。據(jù)此,通過檢測(cè)菌株培養(yǎng)液的表面張力能篩選產(chǎn)生生物表面活性劑的菌株。在表面張力實(shí)驗(yàn)中,GHP1菌株在液體LB中培養(yǎng)72 h的培養(yǎng)液表面張力為53 mN·m?1,比對(duì)照液體LB的表面張力(74 mN·m?1)降低了28.38%,該結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了GHP1菌株能產(chǎn)生生物表面活性劑這一結(jié)論。

        綜上所述,GHP1菌株能夠降解菲且能產(chǎn)生生物表面活性劑,因此選取該菌株作為供試菌株進(jìn)一步研究。

        2.2 菌株鑒定

        2.2.1 菌株的形態(tài)特征

        GHP1菌株在液體 LB培養(yǎng)基中 28 ℃、130 r·min?1條件下振蕩培養(yǎng)逐漸變渾濁,30 h后呈現(xiàn)菌團(tuán)聚物(圖3A)。菌株在固體LB上生長(zhǎng)迅速,長(zhǎng)勢(shì)良好,48 h便可形成清晰可見的菌落,菌落呈黃色,不透明,表面狀態(tài)光滑有光澤,菌落隆起,邊緣結(jié)構(gòu)整齊,質(zhì)地粘稠(圖 3B)。GHP1菌株革蘭氏染色顯示為紅色,表明其為革蘭氏陰性菌(圖3C)。透射電子顯微鏡觀察結(jié)果顯示,GHP1菌體為桿狀,無芽孢,有單端鞭毛(圖3D),可能為運(yùn)動(dòng)型細(xì)菌(Bruzaud et al.,2015)。污染物的降解取決于降解微生物與污染物之間的有效接觸(Semple et al.,2003),鞭毛則可增加菌株對(duì)高疏水性物質(zhì)表面的粘附(Bruzaud et al.,2015)。Gu et al.(2017)的研究表明,有單端鞭毛的運(yùn)動(dòng)型PAHs降解細(xì)菌能夠增加其與PAHs的接觸機(jī)會(huì),提高PAHs的生物可利用性,從而增強(qiáng)PAHs的降解能力。本實(shí)驗(yàn)中,GHP1菌株具有單端鞭毛的特性有利于其對(duì) PAHs的降解。

        圖3 GHP1在液體(A)、固體(B)LB培養(yǎng)基中的菌體形態(tài)和光學(xué)顯微鏡下的革蘭氏染色(C)以及透射電子顯微鏡下的細(xì)胞形態(tài)(D)Fig. 3 Morphology of strain GHP1 in liquid (A), solid (B) LB medium, gram staining under light microscope (C)and cell morphology under transmission electron microscope (D)

        2.2.2 菌株的生理生化特征

        GHP1菌株的生理生化特征測(cè)定結(jié)果如表1所示。結(jié)果表明,GHP1是一株運(yùn)動(dòng)型細(xì)菌,這也與之前透射電鏡下該菌株具有單端鞭毛的結(jié)果(圖3D)相吻合。另外,過氧化氫酶實(shí)驗(yàn)反應(yīng)為陽性,說明GHP1菌株含有過氧化氫酶,許多研究指出能產(chǎn)生過氧化氫酶是微生物降解有機(jī)污染物的關(guān)鍵(李雪,2018)。此外,該菌株需氧,能水解淀粉;β-半乳糖苷酶實(shí)驗(yàn)反應(yīng)為陽性;V.P.實(shí)驗(yàn)為弱陽性;其他反應(yīng)則為陰性。

        表1 GHP1菌株的生理生化特征Table 1 Physiological and biochemical characteristics of strain GHP1

        根據(jù)GHP1菌株表面與水的接觸角(θw),可判斷該菌株表面呈中度親水性。PAHs是脂溶性有機(jī)污染物,若菌體表面高度親水,則不利于微生物對(duì)PAHs的攝取和降解(顏湘波等,2014)。本研究中,GHP1屬于中度親水性菌株,對(duì)PAHs的攝取和利用阻礙不大。

        2.2.3 菌株的分子學(xué)鑒定

        利用細(xì)菌16S rDNA的通用引物對(duì)菌株GHP1進(jìn)行擴(kuò)增,最終得到1366 bp的基因序列(GenBank登錄號(hào)為 MW345956)。將 16S rDNA基因序列在GenBank上進(jìn)行序列同源性比較,結(jié)果表明菌株GHP1的16S rDNA基因與Sphingobium abikonense MS64的16S rDNA基因相似度高達(dá)100%,與Sphingobium lactosutens DS20、Sphingobium abikonense NBRC 16140、Sphingobium soli THG-SQA7、Sphingobium abikonense IAM 12404、Sphingobium amiense NBRC 102518以及Sphingobium amiense Y的16S rDNA基因相似度均在97.81%以上。對(duì)其進(jìn)行發(fā)育樹的構(gòu)建如圖4所示,從結(jié)果可以看出菌株GHP1與菌株Sphingobium abikonense MS64聚于一類,親緣關(guān)系最近。

        圖4 基于菌株GHP1與相似菌株16S rDNA序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig. 4 Phylogenetic tree based on 16S rDNA sequences of strain GHP1 and related type strains

        綜合形態(tài)觀察、生理生化特征和分子學(xué)鑒定結(jié)果,GHP1菌株為 Sphingobium abikonense (S.abikonense)。近些年來,從環(huán)境中分離出一些能降解 PAHs的 Sphingobium屬菌株(Prakash et al.,2006;Dong et al.,2014)中并無 Sphingobium abikonense的相關(guān)研究。因此,進(jìn)一步研究 Sphingobium abikonense GHP1對(duì)菲的降解以及產(chǎn)生生物表面活性劑的特性具有非常重要的參考價(jià)值。

        2.3 菌株對(duì)菲的降解

        菌株GHP1作用下菲殘余率的動(dòng)態(tài)變化如圖5所示。菲的殘余率隨培養(yǎng)時(shí)間延長(zhǎng)而迅速降低,其中,培養(yǎng)24 h菲的殘余率為70.93%,培養(yǎng)結(jié)束時(shí)(72 h)菲的殘余率為 13.92%,該變化符合一階動(dòng)力學(xué)模型(R2=0.859),t1/2約為27.12 h,說明菲降解50%所需要的時(shí)間是27.12 h(表2)。目前已被報(bào)道的菲降解菌株及其菲降解能力如表3所示,從該表可知,不同屬的菌株對(duì)菲的降解能力有差異,其中Sphingobium屬菌株的降解能力最強(qiáng),本文的研究對(duì)象GHP1菌株隸屬于該屬。

        圖5 GHP1菌株對(duì)菲的降解動(dòng)態(tài)Fig. 5 Degradation dynamics of phenanthrene by strain GHP1

        表2 GHP1菌株對(duì)菲降解的一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程及半衰期Table 2 First-order kinetics equations and the corresponding half-life times of phenanthrene biodegradation by strain GHP1

        表3 菲降解菌株及其降解率統(tǒng)計(jì)表Table 3 Statistical table of phenanthrene degrading strains and their degradation rates

        顏湘波等(2014)認(rèn)為,疏水性是影響PAHs微生物降解效果的眾多因素之一。環(huán)境中存在一些中度親水的高效PAHs降解細(xì)菌,Wang et al.(2016)和本文的研究均證實(shí)了此觀點(diǎn)。另外,GHP1菌株具有運(yùn)動(dòng)性,能夠增強(qiáng)菲的生物可利用性,從而提高對(duì)菲的降解能力。綜上可知,GHP1菌株具有高效的菲降解能力,在菲污染的微生物修復(fù)中具有較大的應(yīng)用潛力。

        2.4 生物表面活性劑的鑒定

        2.4.1 薄層層析

        薄層層析是鑒定生物表面活性劑種類的重要方法(馬斌斌等,2017),GHP1菌株所產(chǎn)生的生物表面活性劑經(jīng)過薄層層析展層,噴灑茚三酮試劑在比移值Rf=0.7處顯示紅色斑點(diǎn)(圖6),這說明該生物表面活性劑是脂肽(Habib et al.,2020)。

        圖6 GHP1菌株產(chǎn)生的生物表面活性劑薄層層析Fig. 6 Thin layer chromatography of biosurfactants produced by strain GHP1

        2.4.2 傅里葉變換紅外光譜

        傅里葉變換紅外光譜能準(zhǔn)確鑒定生物表面活性劑的種類(馬斌斌等,2017),GHP1菌株產(chǎn)生的生物表面活性劑經(jīng)冷凍干燥后進(jìn)行傅里葉變換紅外光譜分析,結(jié)果如圖7所示。在3296.75 cm?1處有一較寬的峰,說明該物質(zhì)具有 N-H的伸縮振動(dòng)(馬斌斌等,2017);在2925.39 cm?1處出現(xiàn)一個(gè)尖銳而狹窄的峰,表明該物質(zhì)具有 C-H的伸縮振動(dòng)(Huang et al.,2020);在 1657.62 cm?1處出現(xiàn)一個(gè)強(qiáng)有力的峰,屬于C=O和C-N的伸縮振動(dòng),即酰胺I帶,這證實(shí)了生物表面活性劑分子中存在肽基(Habib et al.,2020);1535.25 cm?1處的峰意味著酰胺II帶的存在,是N-H彎曲和C-N伸縮振動(dòng)的組合吸收(Kumar et al.,2016);1226.27 cm?1處的小峰為C-H的伸縮振動(dòng)(曾超等,2020);1064.65 cm?1處的小峰為C-O-C的伸縮振動(dòng)(Padmavathi et al.,2014)。該結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了GHP1菌株產(chǎn)生的生物表面活性劑為脂肽類物質(zhì),親水基為肽鏈。

        圖7 GHP1菌株產(chǎn)生的表面活性劑紅外吸收光譜Fig. 7 Infrared absorption spectra of biosurfactants produced by strain GHP1

        目前,已報(bào)道的能產(chǎn)生生物表面活性劑的菌株以及產(chǎn)生的生物表面活性劑種類十分豐富。例如:Pseudomonas aeruginosa 147、Enterobacter sp. SF-4、Lactobacillus plantarum G88能產(chǎn)生糖脂類表面活性劑(Batool et al.,2017;Mouafo et al.,2018;石金禮等,2016);Serratia marcescens ZCF25、Bacillus siamensis ZCST-1、Staphylococcus sp. CO100能產(chǎn)生脂肽類表面活性劑(Huang et al.,2020;Hentati et al.,2021;曾超等,2020);Candida albicans 39A2、Bacillus cereus CECT 193、Bacillus licheniformis CECT 491能產(chǎn)生脂蛋白表面活性劑(Haba et al.,2000);Rhodococcus sp. 135、Pseudomonas sp. 25A3能產(chǎn)生脂肪酸類表面活性劑(Haba et al.,2000);Klebsiella pneumoniae H1、Bacillus sphaericus EN3、Bacillus azotoformans EN16能產(chǎn)生磷脂類表面活性劑(Adamu et al.,2015;黃楊等,2015);Candida antarctica T-34、Acinetobacter radioresistens KA53能產(chǎn)生聚合物表面活性劑(Kitamoto et al.,1990;Navon-Venezia et al.,1995)。但是尚未發(fā)現(xiàn)S. abikonense能夠產(chǎn)生生物表面活性劑的研究,這是首次關(guān)于S. abikonense產(chǎn)生脂肽類表面活性劑的報(bào)道。

        2.5 不同的培養(yǎng)條件對(duì)菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的影響

        生物表面活性劑作為細(xì)菌的一種次生代謝產(chǎn)物,其合成和分泌受環(huán)境條件影響較大(黃楊等,2015)。乳化指數(shù)(E24)與表面活性劑的濃度成正比,可采用 E24來表征菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的能力(Habib et al.,2020)。因此,有必要探討環(huán)境因子對(duì)GHP1菌株培養(yǎng)液E24的影響。

        培養(yǎng)時(shí)間對(duì)菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的影響如圖8A所示,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)菌株培養(yǎng)液E24分布在51.59%—59.11%之間,呈現(xiàn)出先增加后減小的趨勢(shì)。其中,培養(yǎng)72 h菌株培養(yǎng)液的E24最高,與120 h的E24(P=0.065)無顯著性差異,但顯著高于168 h的E24(P=0.013)。這與已有的一些研究結(jié)果類似,Kumar et al.(2016)研究表明 Bacillus licheniformis在96 h的E24達(dá)到最大,繼續(xù)培養(yǎng)至120 h菌株培養(yǎng)液的E24下降;Hentati et al.(2021)發(fā)現(xiàn)Staphylococcus sp. CO100菌株培養(yǎng)192 h后,生物表面活性劑的產(chǎn)量下降。這可能是因?yàn)榕囵B(yǎng)基中碳源減少,微生物利用生物表面活性劑作為細(xì)胞存活的底物導(dǎo)致的(Patowary et al.,2017)。

        溫度影響細(xì)菌體內(nèi)酶的分泌和活性進(jìn)而影響微生物生長(zhǎng)及其生物表面活性劑的合成(Habib et al.,2020)。根據(jù)圖8B可知,不同溫度培養(yǎng)下菌株培養(yǎng)液的E24在51.70%—59.11%之間,在28 ℃條件下菌株培養(yǎng)液的 E24(59.11%)顯著高于 20 ℃(P=0.010)和 37 ℃(P=0.020)時(shí)的 E24,這說明28 ℃為 GHP1菌株的最佳生長(zhǎng)溫度,該菌在此溫度下生長(zhǎng)代謝速度最快,產(chǎn)生生物表面活性劑最多。同時(shí)也表明,GHP1菌株在20—37 ℃范圍內(nèi)均能生長(zhǎng)良好并且產(chǎn)生生物表面活性劑。

        pH與菌株產(chǎn)生生物表面活性劑密切相關(guān)(Parthipan et al.,2017)。根據(jù)圖8C可知,不同pH條件下菌株培養(yǎng)液的E24在52.95%—59.11%之間,pH 6.5和pH 8.0條件下菌株培養(yǎng)液的E24(P=0.368)無顯著性差異,pH 6.5條件下菌株培養(yǎng)液的 E24(59.11%)顯著高于pH 5.0、9.0、10.0(P值分別為0.001、0.001、0.001)的E24,pH 8.0條件下菌株培養(yǎng)液的 E24(57.17%)顯著高于 pH 5.0、9.0、10.0(P值分別為0.013、0.016、0.009)的E24。由此可見,菌株產(chǎn)生生物表面活性劑受 pH影響較大,GHP1菌株在pH為6.5—8.0條件下產(chǎn)生生物表面活性劑的能力最強(qiáng),可能與該pH范圍更有利于生物表面活性劑的合成有關(guān)(石金禮等,2016)。其他菌株也有類似的結(jié)果,Achromobacter sp. A-8和Bacillus subtilis A1菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的最適pH 都為 7.0(Parthipan et al.,2017;Deng et al.,2020)。

        碳源提供細(xì)菌細(xì)胞生長(zhǎng)、代謝所需要的能量,是維持細(xì)菌生長(zhǎng)和產(chǎn)生生物表面活性劑的基礎(chǔ)。碳源及其溶解度影響生物表面活性劑的產(chǎn)生(Khajavi-Shojaei et al.,2020)。從圖 8D 可知,GHP1菌株可以分別利用蔗糖、菲、玉米淀粉、柴油、菜籽油、潤(rùn)滑油、石蠟、甘油8種碳源生長(zhǎng)并產(chǎn)生生物表面活性劑,其中,蔗糖和玉米淀粉屬于糖類;柴油、菜籽油、潤(rùn)滑油、石蠟和甘油屬于油烴類;菲是PAHs的一種。GHP1菌株在不同的底物體系中培養(yǎng)液的E24不同,這是由菌體內(nèi)的酶系決定的(Mouafo et al.,2018)。以蔗糖為唯一碳源時(shí),菌株培養(yǎng)液的E24最大(59.11%),顯著高于其他碳源培養(yǎng)液的E24(P=0.000);以菲為唯一碳源時(shí),E24最低(48.10%);其他6種碳源分別添加的情況下,菌株培養(yǎng)液的E24均在52.00%左右。由上述結(jié)果可知,在糖、油烴、PAH三類碳源中,GHP1菌株在以糖為碳源時(shí)更易產(chǎn)生表面活性劑。已有研究表明,一部分菌以疏水性底物為碳源更易分泌表面活性劑,如Deng et al.(2020)研究的Bacteria Achromobacter sp. A-8在以食用油和石蠟為碳源時(shí)產(chǎn)生表面活性劑的能力最強(qiáng);另一部分菌以水溶性底物為碳源更易分泌表面活性劑,如Parthipan et al.(2017)研究的 Bacillus subtilis A1在以蔗糖為碳源時(shí)產(chǎn)生表面活性劑的能力最強(qiáng)。GHP1菌株在以蔗糖為碳源時(shí)培養(yǎng)液的E24最高,可能是因?yàn)樵摼牦w內(nèi)分解蔗糖的酶占主導(dǎo)地位。

        圖8 不同培養(yǎng)條件對(duì)培養(yǎng)液乳化性指數(shù)(E24)的影響Fig. 8 The effects of different culture conditions on emulsification index (E24) of culture medium

        綜上所述,72 h、28 ℃、pH 6.5、蔗糖為碳源是 GHP1菌株產(chǎn)生生物表面活性劑的最適生長(zhǎng)條件,此時(shí)的E24為59.11%。GHP1菌株是從多年垃圾焚燒場(chǎng)地土壤中篩選出來的土著菌,在以各種類型的底物為碳源的培養(yǎng)基中都能生長(zhǎng)良好且產(chǎn)生生物表面活性劑(圖8),這說明該菌株對(duì)底物的接受范圍寬廣,菌株體內(nèi)酶系豐富,能吸收利用各種碳源。Basta et al.(2005)曾報(bào)道,Sphingomonad科菌株能夠利用多種類型的底物,適應(yīng)貧營(yíng)養(yǎng)環(huán)境。本實(shí)驗(yàn)的研究對(duì)象——S. abikonense GHP1隸屬于該科,該菌株對(duì)環(huán)境的適應(yīng)能力強(qiáng),易存活,在實(shí)際應(yīng)用中具有強(qiáng)大的競(jìng)爭(zhēng)力和明顯的優(yōu)越性。

        3 結(jié)論與展望

        本文從多年垃圾焚燒場(chǎng)地的土壤中篩選出一株菲高效降解細(xì)菌Sphingobium abikonense GHP1,該菌株能產(chǎn)生脂肽類生物表面活性劑,且在以蔗糖為唯一碳源、28 ℃、pH 6.5、培養(yǎng)72 h時(shí)其培養(yǎng)液的乳化指數(shù)最高。這是首次關(guān)于 Sphingobium abikonense菌株兼有降解菲和產(chǎn)生生物表面活性劑特性的報(bào)道。研究結(jié)果為環(huán)境中PAHs的污染修復(fù)和生物表面活性劑的生產(chǎn)提供新的菌源。

        本研究探討了菌株GHP1在實(shí)驗(yàn)室環(huán)境下對(duì)菲的降解以及產(chǎn)生生物表面活性劑的情況。在自然環(huán)境條件下,影響PAHs污染微生物修復(fù)效果的因素非常復(fù)雜,菌株適應(yīng)外界環(huán)境條件、成功定殖并成為優(yōu)勢(shì)菌種是PAHs降解的關(guān)鍵。采用包埋、制成菌劑、附著可降解載體等手段增強(qiáng)菌株GHP1的環(huán)境適應(yīng)性及競(jìng)爭(zhēng)力并將其應(yīng)用于PAHs實(shí)際污染的修復(fù)還有待進(jìn)一步探究。

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