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        氣相色譜質(zhì)譜法測(cè)定土壤中5種苯并咪唑類的殘留

        2021-10-23 07:10:30郭延萍劉永玲
        中國測(cè)試 2021年9期
        關(guān)鍵詞:方法

        郭延萍,劉永玲

        (海東市生態(tài)環(huán)境局,青海 海東 810600)

        0 引 言

        苯并咪唑類殺菌劑,是指含有殺菌活性的咪唑環(huán)類的有機(jī)化合物,如噻菌靈、咪鮮胺等,在農(nóng)業(yè)、林業(yè)等廣泛應(yīng)用,確保農(nóng)作物、林作物等高產(chǎn)、穩(wěn)定[1-3]。該類殺菌劑屬于內(nèi)吸性殺菌劑,通過與病原真菌的微管蛋白結(jié)合,抑制病菌細(xì)胞的有絲分裂,起到殺菌、抑菌的作用[4]。苯并咪唑類殺菌劑常用于水稻類紋枯病、稻瘟病,小麥類黑穗病、赤霉病,瓜果類白粉病、灰霉病等,該類殺菌劑毒性低,且能夠抑制病菌生長,在殺菌劑市場占據(jù)著關(guān)鍵的地位,隨著對(duì)具有抗菌活性的咪唑類殺菌劑和分子生物學(xué)的研究,該類殺菌劑的應(yīng)用也越來越廣[5]。據(jù)統(tǒng)計(jì),殺菌劑在噴灑、施用時(shí),約20%起到殺菌、抑菌作用,大部分的殺菌劑隨著空氣流通、雨水沖刷等進(jìn)入到土壤中,對(duì)土壤環(huán)境造成不可逆的損傷,嚴(yán)重影響土壤微生物、動(dòng)物等生態(tài)系統(tǒng)[6]。因此,加強(qiáng)對(duì)典型土壤中苯并咪唑類殺菌劑殘留的監(jiān)測(cè),具有重要的意義。

        常用于土壤前處理的提取方法主要有:固液萃取提取法、超聲提取法和加速溶劑提取法等;凈化的主要方法有:凝膠凈化色譜法、QuEChERS (Quick、Easy、Cheap、Effective、Rugged、Safe)凈化法和固相萃取凈化法等方法[7-9]。提取方法中,加速溶劑萃取是在高溫、高壓條件下進(jìn)行多次提取,提取效率相對(duì)最佳;凈化方法中,QuEChERS 凈化法相對(duì)其他方法,具有試劑用量少,凈化效果好、操作簡便等優(yōu)點(diǎn),實(shí)驗(yàn)開發(fā)一種采用加速溶劑提取法將典型土壤中噻菌靈、惡咪唑、抑霉唑、咪鮮胺和氟菌唑提取出來,QuEChERS 凈化法將提取液凈化后,上GCMS/MS 儀定量測(cè)定的分析方法[10-15]。實(shí)驗(yàn)證明,此方法檢測(cè)準(zhǔn)確度高、靈敏度高,可以用于典型土壤中苯并咪唑類殺菌劑殘留的監(jiān)測(cè)。

        1 試驗(yàn)部分

        1.1 儀器

        氣相色譜儀:Agilent 7890B 型,配備自動(dòng)進(jìn)樣器、柱溫箱(美國安捷倫公司);三重四級(jí)桿串聯(lián)質(zhì)譜儀:Agilent 7000D 型(美國安捷倫公司);電子分析天平:sartorius Quintix65-1CN 型(十萬分之一,德國賽多利斯公司);加速溶劑萃取儀:Thermo ASE-300 型(美國熱電公司);高速冷凍離心機(jī):Biobase TGL-20M 型(山東博科公司);純水制備儀:Milli-Q direct 16 型(美國密理博公司)。

        1.2 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)和試劑

        噻菌靈標(biāo)準(zhǔn)溶液:100μg/mL,編號(hào)為GBW(E) 082320;抑霉唑標(biāo)準(zhǔn)溶液:100μg/mL,編號(hào)為GBW(E) 082421;咪鮮胺標(biāo)準(zhǔn)溶液:100μg/mL,編號(hào)為GBW(E) 082347;氟菌唑標(biāo)準(zhǔn)溶液:100 μg/mL,編號(hào)為BWQ 8059—2016;惡咪唑標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì):100 mg/瓶,編號(hào)為C15789000,以上均購自農(nóng)業(yè)農(nóng)村部環(huán)境保護(hù)科研監(jiān)測(cè)所。乙腈、丙酮、正己烷、甲醇:色譜純(上海安譜科技有限公司);實(shí)驗(yàn)用水均為去離子水,純水制備儀制備,其他試劑均為分析純(上?;瘜W(xué)試劑廠)。

        1.3 儀器方法

        1.3.1 色譜條件

        氣化室溫度:240 ℃;色譜柱:HP-5 MS(規(guī)格:30 m×0.25 mm,0.25 μm)載氣:氦氣,純度99.9999%;柱流量:1.15 mL/min;進(jìn)樣方式:不分流;進(jìn)樣量:1 μL,梯度升溫。升溫程序見表1。

        表1 程序升溫方法

        1.3.2 質(zhì)譜條件

        離子源:ESI 源;電子轟擊電壓:65 eV;離子源溫度:270 ℃;碰撞氣:氬氣,純度99.9999%;接口溫度:260 ℃;采集模式:MRM;溶劑延遲:3.6 min。

        1.4 實(shí)驗(yàn)方法

        1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液的配制

        取惡咪唑標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),精密稱取50 mg,置50 mL量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,混勻;再精密移取100 μL 該溶液,置10 mL 量瓶中,另取噻菌靈、抑霉唑、咪鮮胺和氟菌唑標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別精密移取1.0 mL,置上述10 mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,混勻(5種殺菌劑濃度均為:10 μg/mL)。

        1.4.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

        取1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液,定量移取適量,分別置10 mL 量瓶中,制備含5種殺菌劑濃度依次為0.05,0.15,0.6,2.0,6.0,15.0 μg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,加甲醇定容至刻度,混勻。

        1.4.3 樣品溶液的制備

        前處理:取研細(xì)后的典型土壤樣品,過60 目篩網(wǎng),取過篩后的土壤樣品12 g,加15 g 硅藻土,混合均勻后裝填至22 mL 的萃取罐中,用乙腈-丙酮(體積比為1∶1)混合溶劑萃取。萃取方法見表2。

        表2 萃取條件

        凈化:將上述萃取液轉(zhuǎn)移至旋蒸瓶中,45 ℃旋蒸至近干,用20 mL 冰醋酸(1%)-乙腈溶液轉(zhuǎn)移至50 mL 塑料離心管中,加入分散固相萃取劑硫酸鎂5 g、乙酸鈉2 g 鹽析,渦旋1 min,高速冷凍離心6 min(轉(zhuǎn)速為10000 r/min);將離心后的上清液轉(zhuǎn)移至25 mL 裝有凈化試劑PSA 的凈化管中,渦旋1 min,高速冷凍離心6 min(轉(zhuǎn)速為10000 r/min)。將離心后的凈化液置試管中,氮吹至近干(溫度45 ℃),殘?jiān)蛹状? mL,混勻即得。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 提取方法的選擇

        土壤基質(zhì)通常含有大量的無機(jī)物、有機(jī)物、水分等,如金屬氧化物、硅酸鹽等,成分較為復(fù)雜,常用的前處理方法有:超聲提取法、索氏提取法和加速溶劑提取法等。高效的前處理方法,須將待測(cè)物盡量進(jìn)行提取,且將干擾物質(zhì)進(jìn)行消除。超聲提取法和索氏提取法,待測(cè)物提取率偏低、基質(zhì)干擾較大,最終導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確度偏低等;加速溶劑提取法是在一定的溫度和壓力下,反復(fù)多次的提取,待測(cè)物提取率高,且通過研究合適的提取溶劑,可以有效降低基質(zhì)干擾。實(shí)驗(yàn)通過考察對(duì)加標(biāo)濃度為0.15 μg/mL 的加標(biāo)樣品進(jìn)行提取后提取率,比較上述3種方法對(duì)5種咪唑類殺菌劑提取率的影響,最終確定快速溶劑萃取法作為前處理方法。比較結(jié)果見表3。

        表3 前處理方法比較結(jié)果

        2.2 萃取條件的優(yōu)化

        加速溶劑萃取法,是在高溫、高壓的條件下將待測(cè)殺菌劑,從土壤基質(zhì)中提取出來的前處理方法,影響其提取效果的因素主要是溫度和壓力。選擇適合的溫度能夠保證提取溶劑在樣品基質(zhì)中加速流動(dòng),降低待測(cè)殺菌劑與土壤的相互作用力;同樣選擇合適的壓力,能夠保障萃取溶劑保持液態(tài),更快地與土壤基質(zhì)混合,從而提高待測(cè)殺菌劑在萃取過程的溶解能力,達(dá)到高效提取的目的。實(shí)驗(yàn)通過設(shè)定萃取溫度(80,85,90,95,100 ℃)和萃取壓力(9,9.5,10,10.5,11 MPa),考察典型土壤加標(biāo)樣品(加標(biāo)濃度:0.15 μg/mL),在上述變化條件下的提取情況。結(jié)果,選擇萃取壓力為10 MPa 和95 ℃時(shí),回收率達(dá)到最佳。

        2.3 色譜柱的優(yōu)化

        實(shí)驗(yàn)考察氣相色譜-質(zhì)譜法常用的HP-5 MS、DB-17 MS 和Rtx-5 MS 型質(zhì)譜專用柱,柱長度、膜厚和內(nèi)徑均一致。保持1.3 儀器方法項(xiàng)下色譜和質(zhì)譜條件,考察上述3種不同極性色譜柱對(duì)5種待測(cè)殺菌劑分離情況和重復(fù)性的影響。結(jié)果,選擇DB-17 MS 和Rtx-5 MS 型色譜柱時(shí),5種待測(cè)殺菌劑分離效果差,且重復(fù)性實(shí)驗(yàn)結(jié)果較差;選擇HP-5 MS色譜柱時(shí),5種待測(cè)殺菌劑響應(yīng)和分離良好,峰型尖銳,重復(fù)性結(jié)果良好。故實(shí)驗(yàn)選擇HP-5 MS 色譜柱作為分離柱。

        2.4 MRM 方法的優(yōu)化

        取5 μg/mL 的噻菌靈、惡咪唑、抑霉唑、咪鮮胺和氟菌唑標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照1.3 項(xiàng)下的質(zhì)譜條件進(jìn)行一級(jí)掃描-全掃描(Q3Scan 模式),確定各農(nóng)藥的目標(biāo)離子和保留時(shí)間。然后對(duì)目標(biāo)離子進(jìn)行二級(jí)掃描-產(chǎn)物離子掃描(Production scan 模式),得到母離子對(duì)應(yīng)的碎片離子。特征離子對(duì)以及相應(yīng)的碰撞能量、豐度比是質(zhì)譜測(cè)試的定性依據(jù)。而定量計(jì)算時(shí),為保證檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確度,通常以豐度較大的特征離子對(duì)的色譜峰面積作為定量依據(jù)。因此,本文選擇響應(yīng)較高的一個(gè)碎片離子作為定量離子,再選擇2個(gè)碎片離子作為定性離子。對(duì)此方法進(jìn)行碰撞電壓、碰撞時(shí)間等的優(yōu)化,最終確定5種農(nóng)藥殘留的多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)方法。5種農(nóng)藥典型色譜圖見圖1,質(zhì)譜離子參數(shù)見表4。

        圖1 5種農(nóng)藥質(zhì)量色譜圖

        表4 5種農(nóng)藥質(zhì)譜參數(shù)1)

        2.5 方法線性范圍、曲線方程和檢出限

        取1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液,定量移取適量,分別置10 mL 量瓶中,制備含5種殺菌劑濃度依次為0.05,0.15,0.6,2.0,6.0,15.0 μg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,加甲醇定容至刻度,混勻;按1.3 儀器方法項(xiàng)下色譜和質(zhì)譜條件,分別進(jìn)樣以上溶液各1 μL,收集譜圖。根據(jù)譜圖中待測(cè)殺菌劑響應(yīng)值為縱坐標(biāo)(Y),對(duì)應(yīng)的濃度為橫坐標(biāo)(X),計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)曲線方程,以3 倍信號(hào)噪音比值計(jì)算檢測(cè)限,結(jié)果如表5 所示。

        表5 待測(cè)殺菌劑線性范圍、曲線方程、相關(guān)系數(shù)和檢出限

        2.6 加標(biāo)回收率考察

        取空白典型土壤樣品,過60 目篩網(wǎng),取過篩后的土壤樣品12 g,加15 g 硅藻土,混合均勻后裝填至22 mL 的萃取罐中,分別加入1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液適量,后續(xù)按1.4.3 樣品溶液項(xiàng)下方法處理,制備含5種待測(cè)殺菌劑濃度分別為0.02,0.15,2.0 μg/mL的加標(biāo)溶液,每個(gè)加標(biāo)濃度點(diǎn)配制3 份;再按1.3 儀器方法項(xiàng)下色譜和質(zhì)譜條件,分別進(jìn)樣以上溶液各1 μL,收集譜圖,根據(jù)實(shí)際檢測(cè)結(jié)果和加入量計(jì)算加標(biāo)回收率,結(jié)果見表6。

        表6 加標(biāo)回收率結(jié)果

        2.7 方法重復(fù)性試驗(yàn)

        取空白典型土壤樣品,過60 目篩網(wǎng),取過篩后的土壤樣品12 g,加15 g 硅藻土,混合均勻后裝填至22 mL 的萃取罐中,加入1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液適量,后續(xù)按1.4.3 樣品溶液項(xiàng)下方法處理,制備含5種待測(cè)殺菌劑濃度為0.06 μg/mL 的加標(biāo)溶液,同法平行制備6 份;再按1.3 儀器方法項(xiàng)下色譜和質(zhì)譜條件,分別進(jìn)樣以上溶液各1 μL,收集譜圖,計(jì)算6次檢測(cè)結(jié)果的重復(fù)性RSD。結(jié)果,噻菌靈、惡咪唑、抑霉唑、咪鮮胺和氟菌唑重復(fù)性RSD 分別為3.26%、3.18%、3.75%、4.43%和2.73%,表明方法具有良好的重復(fù)性。重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果見表7。

        表7 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果

        3 結(jié)束語

        實(shí)驗(yàn)建立采用加速溶劑提取法將典型土壤中噻菌靈、惡咪唑、抑霉唑、咪鮮胺和氟菌唑提取出來,QuEChERS 凈化法將提取液凈化后,上GC-MS/MS儀定量測(cè)定的分析方法。實(shí)驗(yàn)首先對(duì)土壤的前處理方法進(jìn)行了選擇,確定加速溶劑萃取法作為前處理方法;考察了常用萃取溶劑的萃取效果,對(duì)色譜條件和質(zhì)譜條件進(jìn)行了優(yōu)化,確定上述最佳條件后,對(duì)方法的線性、重復(fù)性、加標(biāo)回收率等進(jìn)行了考察,結(jié)果表明實(shí)驗(yàn)建立的方法線性范圍廣、加標(biāo)回收率范圍在85.9%~103.1%之間,5種待測(cè)殺菌劑重復(fù)性(n=6)均在5.0%范圍內(nèi)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明方法具有前處理速度快、靈敏度高、檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn),可以用于典型土壤中苯并咪唑類殺菌劑殘留的監(jiān)測(cè)。

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