廖慶釗，陳福艷，覃 雅，黃嬋嬋，黃羅冬，申佩弘

（1. 廣西大學，廣西 南寧 530005； 2. 廣西水產(chǎn)科學研究院，廣西 南寧 530021）

羅非魚屬于雜食性魚類，具有易養(yǎng)殖、生長快的特點，是世界上第二大經(jīng)濟養(yǎng)殖型魚類[1-2]。在羅非魚集約化養(yǎng)殖中病害是目前制約其產(chǎn)業(yè)發(fā)展的首要因素。中國南方羅非魚養(yǎng)殖場經(jīng)常爆發(fā)由鏈球菌引發(fā)的魚病。羅非魚對無乳鏈球菌 (Streptococcus agalactiae) 極為敏感，感染后死亡率高，造成的經(jīng)濟損失巨大[3]。一直以來，養(yǎng)殖戶主要通過抗生素和其他化學藥物進行魚病防控。濫用抗生素會引發(fā)耐藥致病菌增多、抗性基因傳播和生態(tài)失衡等問題[4-5]。為解決羅非魚細菌病害問題，緩解對抗生素的依賴，亟需尋找防控病害的新資源。

利用環(huán)境友好型微生物作為飼料添加劑來提高魚類抗病能力，是當下生態(tài)可持續(xù)養(yǎng)殖的新探索[6]。研究表明，發(fā)酵食品中的微生物 (酵母類和乳酸桿菌類) 對魚類有顯著的益生作用[5,7-9]。關于乙醇假絲酵母 (Candida ethanolica) 的研究報道主要集中于食品發(fā)酵方面，如可可豆發(fā)酵中乙醇假絲酵母通過產(chǎn)生一些有機酸以及蛋白質而表現(xiàn)出較強的抗真菌能力[10]；在釀造山西老陳醋的過程中添加乙醇假絲酵母可以起到提香作用[11]；在制作芒果汁工藝中利用乙醇假絲酵母混合菌液可以改善其風味[12]。在動物飼養(yǎng)方面，F(xiàn)ernandes等[13]對牛瘤胃的酵母群落結構分析指出乙醇假絲酵母對牛具有益生潛能；Inoue等[14]用乙醇假絲酵母發(fā)酵魚粉飼喂小鼠，發(fā)現(xiàn)小鼠的免疫力得到顯著增強。因此，乙醇假絲酵母是一種有益生潛能的微生物，具有重要的開發(fā)利用價值。

乙醇假絲酵母應用于水產(chǎn)養(yǎng)殖尚未見報道，本文利用實驗室前期分離并保存的一株乙醇假絲酵母(Candida ethanolica 菌株 GXU01) 作為飼料添加菌對羅非魚進行養(yǎng)殖實驗，并以羅非魚的生長性能、消化能力、腸道菌群結構和免疫抗病能力等指標評價乙醇假絲酵母的益生作用，以期為羅非魚健康養(yǎng)殖尋找更有效的飼用添加菌。

1 材料與方法

1.1 實驗用魚及菌株

尼羅羅非魚 (Oreochroms niloticus) 樣本取自廣西水產(chǎn)科學研究院。菌株乙醇假絲酵母保存于廣西大學生命科學與技術學院資源與環(huán)境微生物實驗室。將菌株GXU01在PDA培養(yǎng)基上活化后，接種于糖蜜液體培養(yǎng)基 (質量分數(shù)：糖蜜6%，尿素0.1%，硫酸銨0.1%，滅菌降溫后加無水乙醇2%)中，37 ℃ 振蕩 (200 r·min?1) 培養(yǎng) 48 h，6 000 r·min?1離心收集菌體。使用磷酸鹽緩沖液 (PBS) 對菌體沖洗 3遍，將懸浮菌液稀釋成 108CFU·mL?1。

1.2 實驗設計

選用體質量為 (100±15) g的健康羅非魚180尾，隨機分成2組：對照組 (CK) 為基礎飼料中添加 PBS[15-17]，實驗組 (T5) 為基礎飼料中添加GXU01菌體懸浮液，分別設置3個重復，每個重復 30尾，在魚塘中設置長 2 m×寬 1 m×深 1 m 的網(wǎng)箱飼養(yǎng)。每2周換水1次，確保池塘中的水質達到魚類生長要求，養(yǎng)殖期間平均水溫25～32 ℃。

1.3 實驗飼料制備與飼喂

實驗基礎飼料購自廣西安桂水產(chǎn)飼料有限公司，飼料大小 2 mm，主要成分 (質量分數(shù)) 為 粗蛋白28%、粗灰分13%、水12%、粗纖維10%、粗脂肪3%、鈣2%、總磷1.5%、賴氨酸1.3%、氯化鈉1%。在飼喂實驗開始時，禁食24 h并稱質量，按魚體質量2%投喂飼料，每天上、下午分別喂食1次。飼喂前30 min在9 g基礎日糧中加入1 mL濃度為 108CFU·mL?1的懸浮菌液，充分混勻并晾干后投喂[16]。每2周稱質量1次，以調(diào)整飼料投喂量，每次投喂30 min后收集剩余飼料，以確定飼料攝入量。分別在喂養(yǎng)30和60 d后，對各組魚的生長性能、血清非特異性免疫參數(shù)和腸道菌群結構進行分析。

1.4 生長性能測定與樣品采集

參照Tan等[17]的研究用增質量 (WG)、飼料系數(shù) (FCR)、飼料效率 (FE) 和成活率評價生長性能。飼養(yǎng)30和60 d后，從每個重復隨機取3尾魚。麻醉后采集血樣，將血清于?20 ℃保存，用于測定血清非特異性免疫力。用500 mg·L?1麻醉劑 (MS-222) 對魚實施安樂死，冰面解剖，每尾魚取肝臟1 g，用于測定抗氧化能力。取全腸道樣品，稱取500 mg添加9.5 mL預冷PBS緩沖液進行勻漿處理，4 ℃、12 000 r·min?1離心 15 min，將上清液轉移至干凈的10 mL樣品管中用于蛋白酶、淀粉酶、纖維素酶和木聚糖酶活性測定；剩余的腸道樣品用于微生物群落結構分析。用Bradford法測定總蛋白[18]。肝臟和消化道樣品均用液氮速凍，?80 ℃ 保存。

1.5 消化酶活性的測定

蛋白酶測定參照Tan等[17]的方法，木聚糖酶活性測定參照Saputra等[15]的方法，纖維素酶活性測定參照Ullah等[16]的方法，以上均用超微量微孔板分光光度計 (BioTek Instruments, Inc.) 測定。淀粉酶活性采用淀粉酶 (AMS) 測試盒 (購自南京建成生物工程研究所) 測定。

1.6 血清非特異性免疫參數(shù)測定

血清超氧化物歧化酶 (SOD) 和溶菌酶 (LZM)活性用試劑盒 (南京建成) 測定。補體C3和C4用相應的魚補體蛋白 (C3和C4) ELISA試劑盒測定，其原理應用雙抗體夾心法測定補體蛋白水平，在含純化的補體蛋白 (C3或C4) 抗體微孔板中，加入補體蛋白，再與HRP標記的補體蛋白 (C3或C4) 抗體結合形成抗體-抗原-酶標抗體復合物，經(jīng)過徹底清洗后用TMB顯色，通過顯色的深淺測定補體蛋白的水平。

1.7 肝臟抗氧化能力的測定

肝臟總抗氧化能力 (T-AOC) 和丙二醛 (MDA)測定嚴格按照相應的試劑盒 (南京建成) 說明進行。

1.8 腸道微生物群落結構測定分析

在實驗第4和第8周采集消化道樣本分析微生物多樣性。用 FastDNA Spin kit for Soil (MP Biomedicals) 試劑盒提取消化道樣本中的DNA，所有實驗流程都嚴格按照制造商的說明操作。利用以下引物從獲得的DNA中擴增出16S rDNA基因的可變V3—V4區(qū)：5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCA-3'和 5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3'。隨后使用高通量測序 (HTS) 技術對PCR產(chǎn)物進行測序。對原始測序序列進行過濾、雙端拼接，得到優(yōu)化序列 (Tags)；將優(yōu)化序列進行聚類，劃分操作分類單元 (Operational taxonomic units, OTU)，并根據(jù)OTU的序列組成得到其物種分類，基于OTU分析結果，對樣品進行分類學分析，研究樣品中的微生物群落結構。

1.9 攻毒試驗

無乳鏈球菌用TSB培養(yǎng)基于37 ℃培養(yǎng)24 h，3 000 r·min?1、4 ℃ 離心 10 min 收集菌體細胞，并用PBS沖洗3次。在攻毒試驗之前，用PBS將收集的無乳鏈球菌稀釋成濃度梯度 (105、106、107、108和 109CFU·mL?1)，每個濃度取0.1 mL 對 10尾200 g左右的羅非魚進行肌肉注射，確定7 d 50% 致死量 (LD50) 為 108CFU·mL?1。飼喂實驗結束后，每組隨機選10尾魚置于1 m3的水桶中養(yǎng)殖，并注射 0.1 mL濃度為 108CFU·mL?1的無乳鏈球菌，以注射PBS緩沖液的CK組作為陰性對照組。每24 h記錄死亡情況，統(tǒng)計7 d死亡率。

1.10 數(shù)據(jù)分析

數(shù)據(jù)采用SPSS 25.0軟件進行t檢驗分析，P<0.05視為具有統(tǒng)計學顯著性。計算結果以“平均值±標準差 ()”表示。

2 結果

2.1 飼喂GXU01對羅非魚生長性能和消化酶活性的影響

飼喂GXU01后，羅非魚的生長特性 (表1) 和消化性能 (圖1) 測定結果顯示，與CK組比，T5組的飼料轉化率及消化酶 (蛋白酶、淀粉酶和木聚糖酶) 活性均顯著提高，說明酵母飼料可以改善羅非魚的生長和消化。

圖1 GXU01對羅非魚腸道蛋白酶、淀粉酶、木聚糖酶和纖維素酶活性的影響CK和T5分別為對照組和GXU01實驗組；Day 30、Day 60分別表示飼養(yǎng)30和60 d取樣；柱上不同字母表示差異性顯著 (P<0.05)；圖2同此。Figure 1 Effects of GXU01 on activity of gut proteinase, amylase, xylanase and cellulase in tilapiasCK and T5 indicate control and GXU01 treated group, respectively; samples were marked as Day 30 on 30th day and Day 60 on 60th day of feeding; different letters on the bar indicate significant difference (P<0.05). The same case in Figure 2.

表1 GXU01飼料對羅非魚生長性能的影響Table 1 Effects of GXU01 feed on growth performance of tilapia

2.2 飼喂GXU01對羅非魚血清非特異性免疫力的影響

血清溶菌酶和補體蛋白是常用于評價魚類非特異性免疫的指標。與CK組相比，T5組2個月后羅非魚血清LZM活性和C3含量顯著提高 (圖2)，說明GXU01具有顯著增強羅非魚非特異性免疫力的作用。

圖2 GXU01對羅非魚血清超氧化物歧化酶活性、溶菌酶活性、補體C3和補體C4質量濃度的影響Figure 2 Effects of GXU01 on serum SOD activity, lysozyme activity, mass concentrations of Complement 3 and Complement 4 in tilapia

2.3 腸道微生物群落結構

相應的菌落結構在門和屬水平的豐度百分比見圖3。與CK組相比，T5組中梭桿菌門大幅增加，而藍細菌門大幅減少。在屬水平上，T5組中鯨桿菌屬 (Cetobacterium) 大幅增加，其次是Phreatobacter和艾克曼菌屬 (Akkermansia)；出現(xiàn)大幅減少的是Trachydiscus minutus、Uncultured_bacterium和Tetradesmus obliquus。表示飼喂GXU01對羅非魚腸道菌群結構的影響較顯著。

圖3 基于16S rDNA基因序列的羅非魚腸道在門水平和屬水平菌群結構及相對豐度圖CK和T5分別代表對照組和GXU01的實驗組；投喂30 d取樣標為CK-1、T5-1，投喂60 d取樣標為CK-2、T5-2；表2、圖4同此。Figure 3 Structure and relative abundance of intestinal flora at phylum and genus of tilapia based on 16s rDNA sequenceCK and T5 indicate control and GXU01 treated group, respectively; samples were marked as CK-1,T5-1 at 30th day and CK-2, T5-2 at 60th day of feeding. The same case in Table 2 and Figure 4.

2.4 腸道菌群多樣性分析

各樣品高通量測序獲得的OTUs數(shù)量介于557～628，對這些序列以OTUs≥97%劃分進行聚類，并對各組樣品進行Alpha多樣性指數(shù)評估，選用指標分別為Chao1、Simpson和Shannon(表2)。相對于CK組，T5組中的Simpson指數(shù)變大，Shannon指數(shù)偏小，表明T5組的菌落多樣性降低。

表2 Alpha多樣性指數(shù)分析Table 2 Analysis of Alpha diversity index

腸道菌群相似程度用物種豐度聚類熱圖 (圖4)展示，相對于CK組，T5組出現(xiàn)了較大的差異。在PCoA分析圖 (圖5) 中可以看出，T5組前后兩次取樣 (T5-1和T5-2) 腸道菌群最相近，說明飼喂GXU01更有利于維持羅非魚腸道菌群穩(wěn)定。

圖4 基于屬水平上的物種豐度聚類熱圖Figure 4 Clustering heat map based on species abundance at genus level

圖5 基于binary_chisq距離算法的屬水平PCoA分析圖Figure 5 Genus level PCoA analysis diagram based on binary_chisq distance algorithm

2.5 飼喂酵母飼料對羅非魚抗病能力的影響

細菌半致死攻毒試驗是評價抗病力最直觀的指標[19]。8周喂養(yǎng)實驗后，通過統(tǒng)計羅非魚在無乳鏈球菌攻毒后7 d累計存活情況，評價了飼喂微生物后羅非魚的抗病效果。陰性對照組在注射PBS緩沖液后7 d內(nèi)無死亡發(fā)生，而注射無乳鏈球菌的對照組累計成活率在感染后的前5 d明顯下降，然后維持在 (40±10)%。GXU01組成活率為 (66.66±5.77)%，顯著高于對照組 (圖6)。說明GXU01可以顯著增強羅非魚抗無乳鏈球菌的能力。

圖6 用無乳鏈球菌進行攻毒試驗后7 d成活率Figure 6 Survival rate of 7 d after challenge test with S. agalactiae

3 討論

益生菌酵母可以作為水產(chǎn)養(yǎng)殖物種有效的生長促進劑，這已被多個研究證實[20-21]。釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae) 和富硒酵母均對羅非魚的飼料利用率和生長性能有顯著的促進作用[22-23]。本實驗中，酵母飼料同樣表現(xiàn)出促生長性能。酵母的促生長作用可能部分歸因于酵母本身，因其富含蛋白質、碳水化合物、核酸和維生素等營養(yǎng)物質，可以作為動物的營養(yǎng)增強劑[24]。如補充全細胞酵母、n-3 HUFA 富集酵母以及β-巰基乙醇處理的酵母能改善營養(yǎng)物質的消化，促進虹鱒 (Oncorhynchus mykiss) 的生長[25]；酵母細胞壁也可以顯著促進羅非魚生長[26-27 ]。另一種解釋是可能由于消化酶活性增加，腸道的消化能力與生長性能呈正相關。本實驗中添加酵母使羅非魚消化酶活性增加；飼料中添加酵母益生菌可增強舌齒鱸 (Dicentrarchus labrax) 的消化酶活性[28-29]，從而提高其生長性能；Ullah等[16]的研究也證實飼喂酵母可提高羅非魚腸道蛋白酶、木聚糖酶和纖維素酶的活性，進而改善其生長性能。

羅非魚血清參數(shù)與攻毒試驗結果均顯示，飼喂GXU01能顯著增強羅非魚的免疫抗病能力。在相似的研究中，Brattgjerd等[30]用來源于酵母細胞壁的葡萄糖注射大西洋鮭 (Salmo salar)，發(fā)現(xiàn)大西洋鮭血清LZM活力顯著提升。Yuan等[31]用3%酵母水解物替代魚粉飼喂建鯉 (Cyprinus carpio var.Jian)，使其血清溶菌酶活性、補體C3和C4水平顯著增加，免疫抗病能力也隨之增強。然而，酵母類物質對促進機體免疫的機理還有待進一步探究。

腸道微生物能夠通過腸-腦神經(jīng)影響生物體的消化吸收、生長代謝和免疫調(diào)節(jié)等機能[32]。飲食可以在很大程度上影響腸道菌群結構。研究指出對羅非魚飼喂添加菌可有效調(diào)節(jié)腸道微生物群落結構，改善其生長、消化和免疫調(diào)節(jié)能力[33-35]。關于羅非魚腸道微生物的報道中，有研究表明梭桿菌門、變形菌門、厚壁菌門和放線菌門是羅非魚腸道優(yōu)勢菌群[36]。Tan等[17]發(fā)現(xiàn)梭桿菌門是羅非魚腸道微生物的主要組成。本實驗中攝食GXU01的羅非魚腸道菌群中梭桿菌門為優(yōu)勢菌群，而藍藻門的豐度大幅降低，可能原因是GXU01會抑制藍藻類微生物的生長。投喂GXU01的羅非魚中艾克曼菌屬比例顯著高于其他組，表明GXU01能促進梭桿菌門和艾克曼菌屬的生長。Zhang等[37]研究發(fā)現(xiàn)艾克曼菌屬是一種有益生潛能的腸道微生物，其增強宿主代謝和免疫力的效果顯著。然而，羅非魚及其腸道微生物作為一個互利共生的整體，酵母飼料是如何影響其整體機制的還需進一步探究。

4 結論

本研究結果顯示，投喂GXU01的羅非魚血清溶菌酶活性和補體C3含量顯著增加 (P<0.05)，腸道菌落結構發(fā)生了顯著變化，表現(xiàn)為藍藻門大幅減少，梭桿菌門顯著增多；在屬水平上，鯨桿菌屬和艾克曼菌屬兩個有益菌群的豐度顯著上調(diào) (P<0.05)。結果表明，GXU01能顯著增強羅非魚腸道消化酶活性，改善羅非魚的生長性能，提高其抗病能力，酵母飼料在羅非魚養(yǎng)殖中具有較好的益生功效。