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        牛膝多糖調(diào)控Wnt/β-catenin通路改善骨質(zhì)疏松性骨折大鼠骨代謝的研究*

        2021-10-14 01:48:16楊豪曾范慧
        中醫(yī)學(xué)報 2021年10期
        關(guān)鍵詞:牛膝骨組織低劑量

        楊豪,曾范慧

        駐馬店市中心醫(yī)院,河南 駐馬店 463400

        骨質(zhì)疏松是由于骨量低、骨微結(jié)構(gòu)遭破壞而引發(fā)的全身性骨骼疾病。老年人群較為常見,絕經(jīng)后的女性發(fā)病率也較高[1]。隨著老齡化日益加重,骨質(zhì)疏松患者發(fā)病率也逐年上升[2]。有文獻(xiàn)報道,僅骨質(zhì)疏松所致髖部骨折患者中1年內(nèi)因并發(fā)癥致死率約20%,50%左右患者致殘,嚴(yán)重影響患者的生活[3]。目前增強骨質(zhì)的常見藥物有雌激素、降鈣素、生長激素等,但是長期使用藥物引起的不良反應(yīng)不容忽視[4]。牛膝具有補肝腎、強筋骨、活血化瘀的功效[5]。牛膝多糖為牛膝的主要成分之一。研究表明,牛膝多糖可促進(jìn)關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞增殖,可應(yīng)用于骨性關(guān)節(jié)炎[6]。Wnt/β-連環(huán)蛋白(β-catenin)通路在骨發(fā)育、分化及修復(fù)等過程中具有重要調(diào)節(jié)作用。研究發(fā)現(xiàn),激活Wnt/β-catenin通路可以調(diào)節(jié)骨代謝,促進(jìn)骨折愈合[7]。本研究基于Wnt/βcatenin通路探討牛膝多糖對骨質(zhì)疏松骨折大鼠骨代謝的調(diào)控作用,為臨床治療骨質(zhì)疏松骨折提供依據(jù)。

        1 材料

        1.1 動物清潔級SD雌鼠60只,體質(zhì)量270~290 g,購自上海吉輝實驗動物飼養(yǎng)有限公司,許可證號:SCXK(滬)2019-0001。飼養(yǎng)條件:12 h光照12 h黑暗,溫度(25±2)℃,相對濕度40%~60%,自由飲食和進(jìn)水。倫理批號:ZMDCH201902-03。

        1.2 藥物與試劑牛膝多糖(純度≥98%,蘭州沃特萊斯生物科技有限公司,批號:130415);尼爾雌醇(安徽圣鷹藥業(yè)有限公司,批號:190412)。生理鹽水(遼寧民康制藥有限公司,批號:20181204);RNA提取試劑盒、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(北京全式金生物技術(shù)有限公司,批號:180316、180520);細(xì)胞裂解液(上海李記生物科技有限公司,批號:20180416003);制膠試劑盒(北京德元國際科技有限公司,批號:20180912A);電化學(xué)發(fā)光(electrochemi luminescence,ECL)試劑盒(上海炎熙生物科技有限公司,批號:181114C);實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(real-time quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR)預(yù)混體系(SYBR GreenⅠ)(上海聯(lián)邁生物工程有限公司,貨號:RT0416135208);堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)、骨鈣素(bone gla protein,BGP)、Ⅰ型前膠原氨基端前肽(type Iprocollagen propeptide,PINP)、Ⅰ型膠原蛋白交聯(lián)N端端肽(N-terminal typeⅠcollagen telopeptide,NTx)酶聯(lián)免疫(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(武漢云克隆科技股份有限公司,批號:190106、190225、190218、190316);抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate-resistant acid phosphatage,TRAP)ELISA試劑盒(上海酶聯(lián)生物科技有限公司,批號:20181013007);蘇木精-伊紅(hematoxylin eosin,HE)染色試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司,批號:1805A);引物合成委托蘇州金唯智生物科技有限公司;β-catenin、RUNT相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2(runt-related transcription factor 2,Runx2)、骨形成轉(zhuǎn)錄因子(Osterix)、磷酸化β-連環(huán)蛋白(phosphorylationβ-catenin,p-β-catenin)、β-actin單克隆抗體及辣根過氧化物酶(horse radish peroxidase,HRP)二 抗(美 國Abcam公 司,批 號:180611、180425、180326、180107、180922、180715);蛋白定量試劑盒(美國Sigma公司,批號:1904112)。

        1.3 儀器HBS-1096A型酶標(biāo)儀(南京德鐵實驗設(shè)備有限公司);HHQ-3558型組織切片機(杭州艾普儀器設(shè)備有限公司);BK-T型攤烤片機(山東博科生物產(chǎn)業(yè)有限公司);BX53M型光學(xué)顯微鏡(日本Olympus公司);Mini-PROTEAN Tetra型電泳槽和Trans-Blot Turbo型蛋白轉(zhuǎn)印系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司);AriaDNA型RT-qPCR儀(加拿大魯美科思公司);UltraFocus型雙能X射線小動物骨密度儀(美國Faxitron公司)。

        2 方法

        2.1 動物模型的復(fù)制與給藥從60只大鼠中隨機挑出50只進(jìn)行去卵巢骨質(zhì)疏松大鼠模型的制備,打開大鼠腹腔,切除大鼠兩側(cè)卵巢并縫合傷口,余下10只僅開腹腔、切除卵巢周圍的脂肪組織,不進(jìn)行卵巢切除并縫合傷口,記作假手術(shù)組。正常飼養(yǎng)10周后,使用雙能X射線骨密度儀檢測60只大鼠骨密度值,當(dāng)建模大鼠骨密度值低于假手術(shù)組大鼠骨密度值平均數(shù)2.5個標(biāo)準(zhǔn)差以上為建模成功。然后將大鼠右側(cè)股骨中段切開骨膜,橫向鋸斷股骨,立即使用克氏針將斷骨固定后進(jìn)行傷口縫合。將建模成功的大鼠隨機分為5組,分別為模型組、陽性對照組及牛膝多糖高、中、低劑量組。建模術(shù)后第2天大鼠進(jìn)行藥物治療,陽性對照組大鼠灌胃0.21 mg·kg-1尼爾雌醇,牛膝多糖高、中、低劑量組分別灌胃8 g·kg-1、4 g·kg-1、2 g·kg-1牛膝多糖,假手術(shù)組和模型組分別灌胃同體積生理鹽水,每天1次,連續(xù)12周。

        2.2 檢測大鼠骨密度(bone m ineral density,BMD)水平 分別于給藥前和給藥12周后通過雙能X線吸收測量法檢測大鼠股骨BMD水平,將雙能X線骨密度儀設(shè)置為Hi-red Small animal模式,檢測大鼠股骨BMD水平。

        2.3 檢測大鼠骨代謝指標(biāo)給藥12周后,對大鼠進(jìn)行尾靜脈取血,收集血清,按照ELISA試劑盒說明書檢測血清ALP、BGP、PINP、NTx、TRAP水平。

        2.4 骨組織病理學(xué)檢查每組隨機選擇3只大鼠,脫頸椎法處死后,取大鼠骨折端骨組織,經(jīng)過甲醛固定過夜后加入10%EDTA溶液中脫鈣4周。經(jīng)過包埋、切片后使用HE染色試劑盒進(jìn)行染色,操作參考產(chǎn)品說明書。經(jīng)過中性樹脂封片后,在光學(xué)顯微鏡下觀察骨組織骨小梁的數(shù)量、排列情況、形態(tài)及連續(xù)性等。

        2.5 檢測骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠骨折端骨組織中β-catenin mRNA、Runx2 mRNA、Osterix mRNA水平每組隨機選擇3只大鼠,頸椎脫臼處死后,取大鼠骨折端骨組織,加入液氮進(jìn)行研磨,用RNA提取試劑盒提取組織中總RNA,使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。查找目的基因mRNA序列,設(shè)計出上下游引物。β-catenin上游引物:5′-TAGTACCGATAGCTAAACTG-3′,下游引物:5′-TAAGTACCTCAATACGTAGA-3′,產(chǎn)物長度為121 bp;Runx2上游引物為:5′-TGACTTACGTCCAGTCAACG-3′,下 游 引 物 為:5′-TGGTACCTAGCTGGTAATAC-3′,產(chǎn)物長度為123 bp;Osterix上游引物:5′-TAACGTGCATCGGCTAACGT-3′,下游引物:5′-GATCCGTGCGGTACCATACT-3′,產(chǎn)物長度為119 bp;β-actin上游引物:5′-TGCACTTGCATGACTCGAAT-3′,下游引物:5′-GATTACCATCGGATCGGATA-3′,產(chǎn)物長度132 bp。按照cDNA 0.5μL,上下游引物各1μL,熒光預(yù)混試劑1μL,dNTP 1μL,ddH2O 5.5μL,總體積10μL的體系加入PCR的96孔板中。退火溫度設(shè)置為58℃,40個循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后,使用配套熒光采集系統(tǒng)得到各樣品Ct值,以β-actin為持家基因,根據(jù)2-ΔΔCt得出目的基因水平。

        2.6 W estem Blot法檢測骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠骨折端骨組織中β-catenin、Runx2、Osterixl及p-β-catenin蛋白表達(dá)每組隨機選擇3只大鼠,頸椎脫臼處死后,取大鼠骨折端骨組織,將骨折端骨組織中加入少許液氮,研磨勻漿后,加入細(xì)胞裂解液,在4℃搖床中過夜裂解后,10 000×g離心5 min,上清即為細(xì)胞總蛋白。用細(xì)胞核蛋白提取試劑盒提取細(xì)胞核蛋白;加入上樣緩沖液并在沸水中煮沸5 min使蛋白變性;用制膠試劑盒制膠并上樣進(jìn)行電泳,電泳結(jié)束后轉(zhuǎn)膜,使用5%脫脂牛奶封閉,一抗孵育過夜,更換二抗室溫孵育2 h,在暗室中使用ECL發(fā)光液顯色,經(jīng)過顯影液、定影液處理后,在膠片上顯示出目的條帶。用掃描儀將膠片上的條帶進(jìn)行灰度值分析,以β-actin為參考,計算目的蛋白相對表達(dá)水平。

        2.7 統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 20.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,實驗數(shù)據(jù)均采用平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較使用單因素方差分析,兩組間比較使用SNK-q檢驗。P<0.05認(rèn)為具有統(tǒng)計學(xué)意義。

        3 結(jié)果

        3.1 對骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠股骨BMD水平的影響50只建模大鼠,共48只建模成功。模型組和陽性對照組每組9只,牛膝多糖高、中、低劑量組每組10只。大鼠治療期間,由于灌胃操作不當(dāng)導(dǎo)致牛膝多糖高劑量組和中劑量組分別死亡1只。股骨BMD水平檢測結(jié)果顯示:治療前,與假手術(shù)組比較,模型組、陽性對照組和牛膝多糖高、中、低劑量組大鼠BMD水平均顯著降低(P<0.05),各組間差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。治療后,與假手術(shù)組比較,模型組大鼠BMD水平顯著降低(P<0.05);與模型組比較,牛膝多糖高、中、低劑量組與陽性對照組大鼠BMD水平顯著升高(P<0.05)。見表1。

        表1 對骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠股骨BMD水平的影響 (±s)

        表1 對骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠股骨BMD水平的影響 (±s)

        注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

        組別 n治療前/mg·cm-2 治療后/mg·cm-2 10 268.44±21.24 269.09±20.05模型組 9 209.71±20.09* 197.26±15.36*陽性對照組 9 210.39±19.14* 243.47±12.01#牛膝多糖高劑量組 9 214.33±33.54* 258.66±10.52#牛膝多糖中劑量組 9 207.54±20.48* 242.21±19.33#牛膝多糖低劑量組 10 209.64±26.98* 227.99±11.15假手術(shù)組#

        3.2 大鼠血清骨代謝指標(biāo)與假手術(shù)組比較,模型組大鼠血清ALP、BGP和PINP水平顯著降低(P<0.05),NTx、TRAP水平顯著升高(P<0.05);與模型組比較,牛膝多糖高、中、低劑量組與陽性對照組大鼠血清ALP、BGP和PINP水平顯著升高(P<0.05),NTx、TRAP水平顯著降低(P<0.05)。見表2。

        表2 大鼠血清骨代謝指標(biāo) (±s)

        表2 大鼠血清骨代謝指標(biāo) (±s)

        注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

        組別 n ALP/U·L-1 BGP(ρ/μg·L-1) PINP(ρ/μg·L-1)NTx(c/μmol·L-1)TRAP(ρ/μg·L-1)1.65 1.48.±0.34模型組 9 112.33±11.45* 0.91±0.13* 26.44±5.85* 19.35±4.87* 2.85±0.56*陽性對照組 10 156.70±15.05# 1.45±0.25# 62.81±7.12# 13.12±3.06# 2.28±0.16#牛膝多糖高劑量組9 188.45±13.21# 1.71±0.18# 84.33±10.86# 10.01±1.82# 1.77±0.39#牛膝多糖中劑量組9 155.38±18.33# 1.42±0.18# 65.50±7.01# 13.54±1.08# 2.21±0.25#牛膝多糖低劑量組10 125.44±12.08# 1.19±0.12# 51.27±6.24# 16.99±1.39# 2.56±0.17假手術(shù)組 10 200.89±22.06 2.05±0.21 93.45±12.98 8.28±#

        3.3 大鼠骨折端骨組織病理學(xué)變化假手術(shù)組大鼠骨小梁粗大致密,粗細(xì)均勻且結(jié)構(gòu)連續(xù)性好;模型組大鼠骨小梁數(shù)量減少,排列凌亂且稀疏,骨小梁連接性差,存在大片無骨小梁骨髓區(qū);陽性對照組大鼠骨小梁連續(xù)性較好;牛膝多糖高、中、低劑量組隨著劑量的增加,骨小梁逐漸數(shù)量增多,形態(tài)增粗,連續(xù)性增加。見圖1。

        圖1 大鼠骨折端骨組織病理學(xué)觀察(HE染色,×100)

        3.4 對骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠骨折端骨組織中β-catenin m RNA、Runx2 m RNA、Osterix m RNA水平的影響與假手術(shù)組比較,模型組大鼠骨折端骨組織β-catenin mRNA、Runx2 mRNA、Osterix mRNA水平顯著降低(P<0.05);與模型組比較,牛膝多糖高、中、低劑量組與陽性對照組大鼠骨折端骨組織β-catenin mRNA、Runx2 mRNA、Osterix mRNA水平顯著升高(P<0.05)。見表3。

        表3 RT-qPCR檢測骨折端骨組織中β-catenin m RNA、Runx2 m RNA、Osterix m RNA表達(dá) (±s)

        表3 RT-qPCR檢測骨折端骨組織中β-catenin m RNA、Runx2 m RNA、Osterix m RNA表達(dá) (±s)

        注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

        組別 n β-catenin mRNA Runx2 mRNA Osterix mRNA假手術(shù)組0.88±0.21 1.25±0.45 0.74±0.21模型組 3 0.32±0.09* 0.47±0.06* 0.11±0.02*對照組 3 0.45±0.06# 0.72±0.12# 0.46±0.06#牛膝多糖高劑量組 3 0.67±0.13# 0.95±0.17# 0.63±0.12#牛膝多糖中劑量組 3 0.45±0.05# 0.76±0.12# 0.45±0.08#牛膝多糖低劑量組 3 0.39±0.03# 0.58±0.08# 0.33±0.04 3#

        3.5 對骨質(zhì)疏松性骨折模型大鼠骨折端骨組織中β-catenin、胞核β-catenin、Runx2、Osterixl蛋白及p-β-catenin表達(dá)的影響與假手術(shù)組比較,模型組大鼠骨折端骨組織β-catenin、胞核β-catenin、Runx2、Osterixl蛋白表達(dá)顯著下調(diào)(P<0.05),p-β-catenin/β-catenin水平顯著升高(P<0.05);與模型組比較,牛膝多糖高、中、低劑量組與陽性對照組大鼠骨折端骨組織β-catenin、胞核βcatenin、Runx2、Osterixl蛋白表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05),p-β-catenin/β-catenin水平顯著降低(P<0.05)。見圖2、表4。

        表4 骨折端骨組織中β-catenin、胞核β-catenin、Runx2、Osterixl蛋白及p-β-catenin表達(dá)檢測 (±s)

        表4 骨折端骨組織中β-catenin、胞核β-catenin、Runx2、Osterixl蛋白及p-β-catenin表達(dá)檢測 (±s)

        注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

        -actin假手術(shù)組 3 0.88±0.11 0.62±0.12 0.30±0.07 1.19±0.21 0.組別 n β-catenin/β-actin胞核β-catenin/β-actin p-β-catenin/β-catenin Runx2/β-actin Osterix/β 71±0.12模型組 3 0.34±0.07* 0.15±0.02* 1.05±0.18* 0.45±0.06* 0.21±0.04*陽性對照組 3 0.69±0.10# 0.35±0.06# 0.69±0.12# 0.73±0.12# 0.47±0.06#牛膝多糖高劑量組 3 1.06±0.18# 0.79±0.13# 0.42±0.08# 0.94±0.16# 0.65±0.12#牛膝多糖中劑量組 3 0.75±0.15# 0.36±0.07# 0.55±0.03# 0.77±0.08# 0.44±0.05#牛膝多糖低劑量組 3 0.58±0.11# 0.23±0.03# 0.81±0.11# 0.58±0.08# 0.35±0.05#

        圖2 骨折端骨組織中β-catenin、胞核β-catenin、Runx2、Osterixl蛋白及p-β-catenin表達(dá)檢測

        4 討論

        由于女性絕經(jīng)后卵巢功能減退導(dǎo)致骨代謝紊亂、破骨細(xì)胞活性增強,使骨小梁吸收加快,成骨細(xì)胞活性相對減弱,骨形成速度緩慢,最終導(dǎo)致骨丟失,發(fā)生骨質(zhì)疏松[8-9]。骨質(zhì)疏松表現(xiàn)為骨量減少、骨微結(jié)構(gòu)破壞、骨脆性增加,增加了骨折的風(fēng)險。骨質(zhì)疏松性骨折常見脊柱骨折、尺橈骨骨折、髖部骨折等,嚴(yán)重降低患者的生活質(zhì)量[10]。尼爾雌醇是雌激素類藥物,也是絕經(jīng)期婦女防治骨質(zhì)疏松的常用藥物,具有吸收好、效果明顯的特點[11]。但有研究表明,長期使用雌激素類藥物可能會引起頭痛、高血壓、子宮出血,增加患卵巢癌、子宮肌瘤的風(fēng)險等不良反應(yīng)[12]。本研究通過摘除大鼠雙側(cè)卵巢后,經(jīng)雙能X線骨密度儀檢測BMD水平均降低,骨質(zhì)疏松大鼠經(jīng)過右側(cè)股骨骨折后,骨質(zhì)疏松骨折大鼠模型制備成功。

        本研究中牛膝多糖高、中、低劑量組和陽性對照組大鼠經(jīng)過12周的治療后,BMD水平顯著提高,骨代謝發(fā)生改善,提示常規(guī)西藥和牛膝多糖均能增強骨質(zhì)疏松癥大鼠的骨密度。本研究還發(fā)現(xiàn),經(jīng)過牛膝多糖治療后,大鼠血清NTx和TRAP水平較模型組均降低,表明牛膝多糖具有抑制骨吸收的作用。ALP在成骨過程中能水解磷酸酯和焦磷酸鹽活性,有利于骨礦化,促進(jìn)骨形成[13-14]。血清中ALP水平可能來自骨組織及肝臟等其他組織。因此,檢測機體骨形成水平還需更具特異性的骨形成指標(biāo)如BGP來驗證。BGP主要由成骨細(xì)胞合成,可與骨基質(zhì)結(jié)合,維持骨正常礦化速度,血清中BGP水平的高低可反映成骨細(xì)胞活性[15-16]。人體骨基質(zhì)中約90%的成分為Ⅰ型膠質(zhì),PINP是Ⅰ型膠原前體轉(zhuǎn)化為膠原纖維質(zhì)的過程中裂解的產(chǎn)物之一。當(dāng)一個膠原分子合成,會產(chǎn)生一個PINP分子,因此,PINP直接反映出Ⅰ型膠原合成速率[17]。本研究結(jié)果顯示,牛膝多糖組大鼠血清中ALP、BGP和PINP水平均較模型組升高,表明牛膝多糖可促進(jìn)骨形成。骨質(zhì)吸收過程中,NTx是骨膠原纖維降解產(chǎn)物。因此,血清中NTx反映了骨吸收水平,是骨吸收的特異性指標(biāo)[14]。TRAP主要由破骨細(xì)胞釋放,對骨基質(zhì)中礦化底物進(jìn)行降解,反映了破骨細(xì)胞活性[15]。牛膝歸肝、腎經(jīng),有補肝腎、健筋骨、活血化瘀的功效,可用于治療肝腎虧虛、跌打瘀痛、腰膝酸痛、筋骨無力等[18-19]。牛膝多糖是牛膝的活性成分之一,可用于治療骨性關(guān)節(jié)炎[20]。李開言等[21]研究表明,牛膝多糖含藥血清應(yīng)用于損傷的軟骨細(xì)胞可提高其增殖活性,對改善骨代謝、防治骨質(zhì)疏松癥具有重要意義,與本研究結(jié)果相符。

        Wnt/β-catenin信號通路不僅在胚胎發(fā)育過程中發(fā)揮重要調(diào)節(jié)作用,在骨代謝過程中也十分關(guān)鍵[22-23]。β-catenin是Wnt/β-catenin信號通路中的關(guān)鍵分子,無Wnt信號激活時,β-catenin會被Axin/APC/GSK 3β復(fù)合體磷酸化并被溶酶體降解,當(dāng)Wnt信號被激活時,β-catenin不發(fā)生磷酸化,可進(jìn)入細(xì)胞核激活其下游信號因子Runx2[24]。Runx2是Runt家族成員之一,是成骨分化的特異性轉(zhuǎn)錄因子。研究表明,Runx2基因缺失可導(dǎo)致成骨細(xì)胞分化被抑制,骨膜成骨和軟骨內(nèi)成骨會被抑制[25]。此外,Runx2可促進(jìn)Ⅰ型膠原合成,提高ALP、BGP、PINP水平,抑制NTx和TRAP水平[26]。Osterix是Runx2下游信號因子,也是骨發(fā)育過程中主要調(diào)節(jié)因子之一。研究表明,Osterix基因敲除小鼠,Runx2表達(dá)正常,敲除小鼠Osterix基因無法正常表達(dá),且成骨細(xì)胞無法發(fā)育為成骨細(xì)胞[27]。因此,Osterix與Runx2在成骨細(xì)胞增殖分化和骨代謝過程中發(fā)揮重要作用。本研究中經(jīng)過牛膝多糖治療后β-catenin、胞核β-catenin、Runx2和Osteri蛋白表達(dá)增加而p-β-catenin水平下降。郎小琴等[28]對老年骨質(zhì)疏松大鼠模型灌胃牛膝多糖發(fā)現(xiàn),骨形成指標(biāo)水平均升高,而骨吸收指標(biāo)水平降低,與本研究結(jié)果一致;此外,還發(fā)現(xiàn)大鼠雙側(cè)最大應(yīng)力及斷裂吸收能量顯著升高,證實牛膝多糖不僅可改善老年骨質(zhì)疏松大鼠的骨代謝水平,還可降低骨折風(fēng)險。Li R等[29]研究顯示,微小核糖核酸-23b-3p可阻斷Wnt/β-catenin信號通路參與絕經(jīng)后骨質(zhì)疏松,且發(fā)現(xiàn)p-β-catenin表達(dá)升高,而該通路下游的Runx2和Osterix表達(dá)下降。由此推測,牛膝多糖可提高大鼠骨密度,改善骨代謝水平可能與激活Wnt/β-catenin信號通路有關(guān)。

        綜上所述,牛膝多糖可提高骨質(zhì)疏松骨折模型大鼠骨密度,改善大鼠骨代謝水平,減輕大鼠骨組織病理損傷,可能與激活Wnt/β-catenin信號通路,上調(diào)β-catenin、胞核β-catenin表達(dá),下調(diào)p-β-catenin表達(dá),從而促進(jìn)下游Runx2和Osterix表達(dá)有關(guān)。本研究為骨質(zhì)疏松骨折患者治療提供新思路。由于參與骨形成信號通路較多,是否影響其他信號通路尚未涉及,需進(jìn)行進(jìn)一步研究。

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