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        針刺療法干預(yù)RANKL/OPG信號通路調(diào)控骨質(zhì)疏松模型大鼠骨代謝平衡機制研究

        2021-09-25 09:37:58丁小娟秦曉光郭小榮
        康復(fù)學(xué)報 2021年4期
        關(guān)鍵詞:下丘腦成骨細胞骨密度

        尹 秦,潘 虹,丁小娟,秦曉光,郭小榮

        甘肅中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院,甘肅 蘭州730020

        骨質(zhì)疏松癥(osteoporosis,OP)是骨量減少、骨微結(jié)構(gòu)退化導(dǎo)致的骨質(zhì)變化、骨脆性增加,從而極易引發(fā)骨折的全身代謝性疾?。?]。研究表明,OP的發(fā)生是免疫系統(tǒng)、內(nèi)分泌系統(tǒng)等多系統(tǒng)共同作用的結(jié)果[2-3]。基于中醫(yī)學(xué)“腎主骨”“脾主運化”理論,OP與脾腎之氣的強弱密切相關(guān),脾胃健旺,則腎精氣充足,骨骼強盛。研究表明,針刺能夠改善骨微結(jié)構(gòu),促進成骨細胞生成[4],針刺腎俞穴、三陰交穴、關(guān)元穴及足三里穴可培腎壯骨,固精培元[5-8],這對骨質(zhì)疏松的發(fā)生、發(fā)展具有重要影響,但相關(guān)機制并不明確。RANKL/OPG信號通路是由核因子Kappa B受體活化因子配體(receptor of activator nuclear factor-kB ligand,RANKL)和骨保護素(osteoprotegerin,OPG)構(gòu)成。RANKL/OPG信號通路對破骨細胞的形成、分化和吸收具有一定的調(diào)節(jié)作用,但具體機制并未完全闡明[9-10]。因此,本研究通過切除雌性大鼠雙側(cè)卵巢的方法建立OP大鼠模型,給予電針刺激腎俞穴、三陰交穴、關(guān)元穴、足三里穴,旨在探究針刺對去卵巢大鼠RANKL/OPG信號通路的作用,并分析其對骨代謝平衡的影響。

        1 材料與方法

        1.1 實驗動物

        SPF級雌性Wistar大鼠60只,3月齡,體質(zhì)量(180±20)g,由甘肅中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物中心提供,動物合格證號:SCXK(甘)2019-0001,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后開始實驗造模。本實驗方案經(jīng)甘肅中醫(yī)藥大學(xué)動物實驗倫理委員會批準(批準號:2019010),實驗過程及操作均遵守國家健康與醫(yī)學(xué)研究委員會動物道德準則。

        1.2 主要實驗試劑及儀器

        無菌針灸針(北京漢醫(yī)醫(yī)療器械有限責任公司,規(guī)格:0.20 mm×25 mm);HANS-200A電針儀(南京濟生醫(yī)療科技有限公司);戊酸雌二醇片(拜耳醫(yī)藥保健有限公司,規(guī)格:1 mg×21片,批號:H20160679);RANKL抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,批號:bs-0747R-1);OPG抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,批號:bs-0431R-1);酶聯(lián)免疫檢測儀(美國BIO-RAD公司);實驗動物微型CT影像系統(tǒng)(德國西門子公司,型號:Inveon);倒置相差熒光顯微鏡(日本Olympus公司);骨密度儀(韓國Osteosys公司,型號:EXA-PRESTO);骨特異性堿性磷酸酶(bone specific alkaline phosphatase,BALP)ELISA檢測試劑盒、核結(jié)合因子-α1(core-binding factor α1,CBF-α1)ELISA檢測試劑盒、Ⅰ型膠原羧基末端肽(cterminal typeⅠcollagen telopeptide,CTX-I)ELISA檢測 試劑盒、Ⅰ型前膠原氨基端前肽(procollagen typeⅠamino-terminal peptide,PINP)ELISA檢 測 試 劑 盒、骨鈣素(osteocalcin,OC)ELISA檢測試劑盒均購自北京方程生物科技有限公司。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 動物分組與模型制備60只大鼠按照隨機數(shù)字法分空白組、模型組、雌二醇組及針刺組,每組15只。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,除空白組外,其他大鼠均去除卵巢,建立OP型大鼠[11],造模組大鼠骨密度較空白組顯著降低時即造模成功[12]。

        1.3.2 干預(yù)方法 造模后進行為期12周的干預(yù),參照“人和動物體表面積折算的等效劑量比率表”進行換算。空白組、模型組大鼠給予0.9% NaCl溶液50 μg/(kg·d)灌胃,雌二醇組給予戊酸雌二醇50 μg/(kg·d)灌胃,針刺組采用自制鼠袋固定大鼠,暴露針刺穴位,參照《實驗針灸學(xué)》取穴方法選擇腎俞穴、三陰交穴、關(guān)元穴、足三里穴[13],將針灸針刺入穴位后,接電針儀,疏密波,刺激強度2 mA,頻率2 Hz,15 min/次,1次/d,共治療12周。4組大鼠均常規(guī)飼養(yǎng),生長環(huán)境及飼養(yǎng)條件相同。

        1.4 觀察指標

        1.4.1 骨代謝標志物含量測定 經(jīng)腹腔麻醉后處死大鼠,心臟取血2 mL,置于離心機中,離心半徑10 cm,轉(zhuǎn)速3 000 r/min,離心10 min,取上清液,ELISA法檢測血清中BALP、CTX-Ⅰ、CBF-α1、PINP、OC含量水平。

        1.4.2 骨密度及骨小梁微結(jié)構(gòu)測定 分離4組大鼠右側(cè)股骨標本,置于Micro-CT下對遠端干骺端進行掃描,設(shè)定掃描參數(shù)為:65 kV,384 mA,分辨率18 μm。所有標本從股骨遠端生長板頂點至皮質(zhì)部分去掉后為本次掃描興趣區(qū)域(region of interest,ROI),提取圖像資料,自帶骨骼分析軟件(Advanced Bone Analysis,ABA)測定骨組織相關(guān)計量學(xué)指標,包括:骨密度(bone mineral density,BMD)、相對骨體積(relative bone volume,BV/TV)、骨小梁厚度(trabecular bone thcikness,Tb.Th)、連接密度(connectivity density,Conn.D)、骨小梁分離度(trabecular separation,Tb.Sp)、骨小梁數(shù)量(trabecular number,Tb.N)、結(jié)構(gòu)模型指數(shù)(structure model index,SMI)。所有CT操作、圖像構(gòu)建及統(tǒng)計分析均由同一組研究人員操作完成。

        1.4.3 TUNEL法檢測股骨遠端細胞凋亡情況 取4組大鼠股骨組織剪碎后置于4%多聚甲醛溶液內(nèi)浸泡24 h,不同濃度乙醇按順序脫水后,進行切片操作,脫蠟后將標本置于蘇木精中進行染色15 min,最后脫水透明10 min,TUNEL試劑盒檢測4組大鼠切片標本中細胞凋亡情況,激光共聚焦顯微鏡觀察。

        1.4.4 RT-PCR法檢測RANKL/OPG mRNA表達提取4組大鼠下丘腦及股骨部分組織,使用RNA抽提試劑盒提取不同組大鼠股骨組織中總RNA,檢測RNA純度含量后用Takara逆轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄獲取cDNA,應(yīng)用Primer 5.0設(shè)計引物序列,RT-PCR法檢測4組大鼠不同組織中OPG和RANKL mRNA表達量,甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)作為內(nèi)參對照,采用2-ΔΔCt方法分析數(shù)據(jù)。引物序列見表1。

        表1 PCR引物序列Table 1 PCR primer sequence

        1.4.5 免疫印跡法檢測RANKL/OPG蛋白表達 大鼠處死后,迅速取下丘腦及股骨遠端的部分組織剪碎,加入RIPA裂解緩沖液放置在冰上30 min,分別提取4組大鼠相應(yīng)組織中的總蛋白,然后使用BCA蛋白測定試劑盒測定各組大鼠皮膚中蛋白質(zhì)的濃度。蛋白質(zhì)用SDS-PAGE進行等量分離,然后移至聚偏二氟乙烯膜(polyvinylidene fluoride,PDVF)膜上,并置于4℃下添加一抗(1∶500)孵育過夜。洗滌后添加辣根過氧化物酶綴合的二抗(1∶500),常溫下孵育2 h。使用ECL試劑進行顯影,應(yīng)用Quantity One軟件分析蛋白相對表達水平。

        1.5 統(tǒng)計學(xué)方法

        采用SPSS 22.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析。計量資料服從正態(tài)分布,數(shù)據(jù)以(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較方差齊性時用LSD-t法進行檢驗,方差不齊采用Tamhane's T2進行檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 4組干預(yù)后骨密度及骨代謝標志物比較

        與空白組比較,模型組、雌二醇組、針刺組BMD、BALP、CBF-α1、CTX-I、PINP、OC均明顯低于空白組,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組比較,針 刺 組BMD、BALP、CBF-α1、CTX-I、PINP、OC均明顯升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表2。

        表2 4組干預(yù)后BMD及骨代謝標志物含量比較(±s)Table 2 Comparison of BMD and bone metabolic markers in four groups after intervention(±s)

        表2 4組干預(yù)后BMD及骨代謝標志物含量比較(±s)Table 2 Comparison of BMD and bone metabolic markers in four groups after intervention(±s)

        注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。Note:Compared with the blank group,1)P<0.05;Compared with the model group,2)P<0.05.

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        2.2 4組干預(yù)后骨小梁微結(jié)構(gòu)比較

        與空白組比較,模型組BV/TV、Tb.N、Tb.Th、Conn.D均明顯降低,Tb.Sp、SMI均明顯升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組比較,雌二醇組針 刺組BV/TV、Tb.N、Tb.Th、Conn.D均 明 顯 升高,Tb.Sp、SMI均明顯降低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3。

        表3 4組干預(yù)后骨小梁微結(jié)構(gòu)比較(±s)Table 3 Comparison of trabecular microstructure in four groups after intervention(±s)

        表3 4組干預(yù)后骨小梁微結(jié)構(gòu)比較(±s)Table 3 Comparison of trabecular microstructure in four groups after intervention(±s)

        注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。Note:Compared with the blank group,1)P<0.05;Compared with the model group,2)P<0.05.

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        2.3 4組股骨遠端細胞凋亡情況比較

        TUNEL染色提示藍色熒光為正常細胞核,綠色熒光為凋亡細胞。激光共聚焦顯微鏡觀察顯示,空白組大鼠骨組織正常,綠色熒光極少;與空白組比較,模型組凋亡細胞數(shù)量明顯增加;與模型組比較,雌二醇組、針刺組干預(yù)后大鼠股骨遠端細胞凋亡數(shù)量均明顯減少。見圖1。

        圖1 4組大鼠股骨遠端細胞凋亡情況比較(×40)Figure 1 Comparison of apoptosis in distal femur in four groups(×40)

        2.4 4組干預(yù)后下丘腦及股骨組織中OPG、RANKL mRNA表達量比較

        與空白組比較,模型組下丘腦、股骨中OPG mRNA均明顯降低,RANKL mRNA均明顯升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組比較,針刺組下丘腦、股骨中OPG mRNA均明顯上升,RANKL mRNA均明顯下降,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表4。

        表4 4組干預(yù)后下丘腦及股骨組織中OPG、RANKL mRNA表達量比較(±s)Table 4 Comparison of OPG and RANKL mRNA expression in hypothalamus and femur in four groups after intervention(±s)

        表4 4組干預(yù)后下丘腦及股骨組織中OPG、RANKL mRNA表達量比較(±s)Table 4 Comparison of OPG and RANKL mRNA expression in hypothalamus and femur in four groups after intervention(±s)

        注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。Note:Compared with the blank group,1)P<0.05;Compared with the model group,2)P<0.05.

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        2.5 4組干預(yù)后下丘腦及股骨組織中OPG、RANKL蛋白表達量比較

        與空白組比較,模型組下丘腦及股骨組織中OPG蛋白表達均明顯降低,RANKL蛋白均明顯升高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與模型組比較,針刺組下丘腦、股骨中OPG蛋白表達均明顯上升,RANKL蛋白表達均明顯下降,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表5、圖2。

        圖2 4組干預(yù)后下丘腦和股骨組織中OPG、RANKL蛋白表達量比較Figure 2 Comparison of OPG and RANKL protein expression in hypothalamus and femur in four groups after intervention

        表5 4組干預(yù)后下丘腦及股骨組織中OPG、RANKL蛋白表達量比較(±s)Table 5 Comparison of OPG and RANKL protein expression in hypothalamus and femur in four groups after intervention(±s)

        表5 4組干預(yù)后下丘腦及股骨組織中OPG、RANKL蛋白表達量比較(±s)Table 5 Comparison of OPG and RANKL protein expression in hypothalamus and femur in four groups after intervention(±s)

        注:與空白組比較,1)P<0.05;與模型組比較,2)P<0.05。Note:Compared with the blank group,1)P<0.05;Compared with the model group,2)P<0.05.

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        3 討 論

        研究顯示,OP發(fā)病與骨組織代謝異常、骨微循環(huán)障礙以及基因多態(tài)性等多因素有關(guān)[14]。隨著人口老齡化加快和激素的過多使用,OP患病率呈現(xiàn)逐年增長趨勢[15]。中醫(yī)學(xué)將OP歸于“骨痿”“骨枯”范疇,辨證論治多從腎、脾等臟腑入手。張景岳[16]指出:“水谷之海先天為之主,精血之海后天為之資……先天不足者,后天培養(yǎng)之,亦可居其強半?!闭f明腎精氣充足與脾胃功能密切相關(guān),脾胃健旺,則水谷精微化源充盛,骨骼強盛。

        中醫(yī)藏象學(xué)說認為“腎精生髓,髓通于腦”“諸髓者,皆屬于腦”。可見古代醫(yī)家早已認識到腦、腎、骨三者密切的聯(lián)系。故當腦生理活動異常時,腎主骨生髓之功能也可能異常,甚至可發(fā)展至骨痿。有研究認為,OP是由神經(jīng)系統(tǒng)、內(nèi)分泌系統(tǒng)以及免疫系統(tǒng)功能紊亂導(dǎo)致的骨代謝異常[17],而下丘腦是系統(tǒng)調(diào)節(jié)的主要調(diào)控中心[18]。“腎藏精”在整體層次的主要體現(xiàn)就是對下丘腦的調(diào)控作用[19]。隨著個體衰老,機體脾腎漸衰,從而出現(xiàn)“脾腎虧虛”的各種表現(xiàn),進而導(dǎo)致OP發(fā)生發(fā)展[20]。因此,臨床亟需尋找有效的方法干預(yù)OP,并探討其可能的作用機制。

        3.1 針刺可改善OP模型大鼠骨密度,調(diào)節(jié)骨代謝水平

        骨密度是臨床檢測骨質(zhì)疏松變化的重要指標。本研究結(jié)果顯示,與空白組比較,模型組大鼠的BMD及骨代謝標志物等含量明顯降低,這表明去卵巢大鼠造模后骨量出現(xiàn)丟失,這與骨質(zhì)疏松的病理表現(xiàn)相符。與模型組比較,針刺組大鼠骨密度含量明顯增加,骨代謝相關(guān)標志物水平明顯改善,骨小梁微結(jié)構(gòu)指標明顯改善,這提示針刺可改善OP模型大鼠骨密度,調(diào)節(jié)骨代謝水平。這與喬梁等[21-22]研究結(jié)果一致。PINP作為Ⅰ型前膠原細胞外分泌產(chǎn)物是骨形成的敏感指標,CTX-Ⅰ是骨吸收過程中Ⅰ型膠原釋放入血的產(chǎn)物。PINP、CTX-Ⅰ是診斷骨質(zhì)疏松癥的特異性指標[23-24]。針刺足三里、三陰交、腎俞、關(guān)元等穴位可使血液中PINP及CTX-Ⅰ含量明顯增加,從而提高Ⅰ型膠原的合成速率,促進成骨細胞活動和骨吸收。CBF-α1屬于runt結(jié)構(gòu)域基因家族的轉(zhuǎn)錄因子,由成骨細胞特異性表達,是決定成骨細胞分化的重要因子。OC主要由成骨細胞、成牙質(zhì)細胞合成,作為成骨細胞分泌的特殊非膠原蛋白,其含量變化可用于監(jiān)測骨發(fā)育以及骨代謝情況,在調(diào)節(jié)骨鈣代謝中起重要作用[25]。針刺足三里、三陰交、腎俞、關(guān)元等穴位可提高CBF-α1和OC含量,這有助于調(diào)節(jié)成骨細胞分化,調(diào)控骨細胞的功能因子表達,促進骨骼形成和發(fā)育[26]。

        3.2 針刺調(diào)節(jié)OP模型大鼠骨代謝平衡可能與RANKL/OPG信號通路調(diào)控有關(guān)

        下丘腦在骨代謝的調(diào)控過程中發(fā)揮重要作用,而RANKL/OPG信號通路是骨代謝過程中重要的信號通路之一。本研究結(jié)果顯示,OP模型大鼠下丘腦及股骨遠端組織中OPG表達下降,而RANKL表達升高,這提示下丘腦可協(xié)同調(diào)控股骨組織中RANKL/OPG信號通路表達,間接促進骨吸收過程。本研究結(jié)果還發(fā)現(xiàn),大鼠造模后RANKL/OPG蛋白和mRNA在下丘腦及股骨遠端組織中表達含量發(fā)生明顯變化,但經(jīng)針刺干預(yù)后,OP大鼠下丘腦及股骨組織中OPG mRNA和蛋白表達量明顯上升,RANKL mRNA和蛋白表達量明顯下降,這提示針刺能夠調(diào)節(jié)OP大鼠RANKL/OPG信號通路的表達,這與魏振樸等[27-28]研究結(jié)果一致。維持RANKL/OPG信號通路平衡,能夠調(diào)控破骨細胞的生成,控制骨代謝,而在骨代謝過程中下丘腦能夠分泌多種信號因子來調(diào)節(jié)骨吸收標志物并參與骨重建的過程,骨堿性磷酸酶(BALP)是其中主要的成骨細胞表型標志物之一[29-30]。BALP可誘導(dǎo)成骨細胞分泌RANKL轉(zhuǎn)導(dǎo)因子,促使組織中的核因子κB(NF-κB)受體活化因子配基調(diào)控骨吸收[31]。OPG是由成骨細胞分泌的RANKL餌受體(NF-κB受體活化因子配體),RANK是RANKL的唯一受體,在破骨細胞前體細胞、成熟的破骨細胞和軟骨細胞上均有表達[32]。在BALP影響下,OPG與RANK競爭并結(jié)合RANKL,拮抗RANKL-RANK表面相關(guān)蛋白的結(jié)合,從而導(dǎo)致破骨細胞的分化、成熟能力降低,促使破骨細胞凋亡,抑制骨吸收[33]。針刺足三里、三陰交、腎 俞、關(guān)元等穴位可提高BALP含量,促進RANKL/OPG信號通路表達,促進骨吸收作用,增強骨小梁結(jié)構(gòu)強度,提高骨密度,從而改善骨微結(jié)構(gòu),進而影響骨質(zhì)疏松發(fā)病進程[34]。

        4 小 結(jié)

        針刺腎俞、三陰交、關(guān)元、足三里等穴位能夠改善OP模型大鼠骨代謝標志物表達,調(diào)控骨代謝平衡,其機制可能與針刺調(diào)控RANKL/OPG信號通路表達有關(guān)。

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