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        龍牙楤木多糖復(fù)合酶法提取工藝優(yōu)化及抗氧化活性研究

        2021-09-21 08:16:10張桂娟陳繼凌陶薈竹
        食品與機(jī)械 2021年8期
        關(guān)鍵詞:果膠酶木瓜緩沖液

        張桂娟 陳繼凌 陶薈竹

        (1. 黑龍江生態(tài)工程職業(yè)學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150025;2. 精華制藥集團(tuán)股份有限公司,江蘇 南通 226000)

        龍牙楤木[Araliaelata(Miq.)Seem.]為五加科楤木屬多年生落葉小喬木,又名遼東楤木、刺嫩牙,可藥食兩用,其根皮和樹皮多為藥用部分,嫩芽被譽(yù)為“山菜之王”。龍牙楤木具有補(bǔ)氣安神、除濕止痛、活血祛風(fēng)的功能,臨床上常用于治療神經(jīng)衰弱、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、糖尿病、胃病等[1],主要含皂苷、多糖、黃酮及揮發(fā)油等[2-4]成分;其中,多糖類成分具有增強(qiáng)機(jī)體免疫力、抗腫瘤、抗輻射損傷等作用[5-6]。

        目前,常見(jiàn)的多糖提取方法有熱水浸提法[7]、酸提取法[8]、堿提取法[9]、超聲波輔助提取法[10]、微波輔助提取法[11]和酶提取法[12]等,而龍牙楤木多糖的提取方法僅見(jiàn)于熱水浸提[13]及超聲波輔助提取[14]。近年來(lái),酶提取法具有提取條件溫和,可破壞植物細(xì)胞壁而加速有效成分釋放,縮短提取時(shí)間,并可減少干擾物質(zhì)溶出,因此,被廣泛應(yīng)用于天然植物有效成分的提取[15-17]。其中,纖維素酶、果膠酶、木瓜蛋白酶為常用酶類,纖維素酶可水解植物細(xì)胞壁組成成分纖維素,木瓜蛋白酶對(duì)動(dòng)植物蛋白、多肽、酰胺等有較強(qiáng)的水解能力,有助于糖蛋白復(fù)合物的水解而釋放更多多糖,提高提取率。由于植物細(xì)胞壁組成結(jié)構(gòu)復(fù)雜,單一酶破解細(xì)胞壁及細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)較難,易導(dǎo)致成分溶出不完全。試驗(yàn)擬選用纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶提取龍牙楤木多糖,應(yīng)用響應(yīng)面法優(yōu)化其提取工藝,并考察其抗氧化能力,以期為龍牙楤木多糖精深產(chǎn)品加工、資源合理應(yīng)用提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        1.1.1 材料與試劑

        龍牙楤木:采自黑龍江省伊春市,春季新發(fā)的嫩芽;

        石油醚、乙醚、95%乙醇、無(wú)水乙醇、丙酮、濃硫酸、苯酚、葡萄糖、1,1-二苯基-2-苦味基肼(DPPH)、硫酸鐵、水楊酸、過(guò)氧化氫:分析純,天津市富宇精細(xì)化工有限公司;

        纖維素酶(1×104U/g)、果膠酶(4.9×103U/g)、木瓜蛋白酶(5×105U/g):北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;

        抗壞血酸:分析純,無(wú)錫市亞盛化工有限公司;

        純化水:pH 7.0~7.5,自制。

        1.1.2 主要儀器與設(shè)備

        紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):UV-2200型,北京瑞利分析儀器有限公司;

        數(shù)顯恒溫振蕩器:WHY-2型,常州普天儀器制造有限公司;

        旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:R-501型,河南宇科自動(dòng)化儀器儀表設(shè)備有限公司;

        循環(huán)水真空泵:SHZ-DⅢ型,上海英化儀器設(shè)備有限公司;

        電子天平:ESJ200-4型,沈陽(yáng)龍騰電子有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 龍牙楤木預(yù)處理 取龍牙楤木嫩芽鮮品于80 ℃烘干24 h,再于60 ℃烘干至恒重,粉碎成粗粉。石油醚超聲脫脂1 h,過(guò)濾,揮干石油醚,干燥粗粉備用。

        1.2.2 多糖提取工藝

        干燥龍牙楤木粗粉→復(fù)合酶水解→減壓濃縮→醇沉→靜置過(guò)夜→離心得沉淀→有機(jī)溶劑洗滌→揮干有機(jī)溶劑→龍牙楤木粗多糖

        1.2.3 多糖提取率測(cè)定 采用苯酚—濃硫酸法[14]。按式(1) 計(jì)算多糖提取率。

        (1)

        式中:

        E——多糖提取率,%;

        C——供試品多糖質(zhì)量濃度,μg/mL;

        V——供試品溶液定容體積,mL;

        D——稀釋倍數(shù);

        W——龍牙楤木樣品質(zhì)量,g。

        1.2.4 單因素試驗(yàn)

        (1) 料液比:精密稱取一定量龍牙楤木粗粉,按質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%分別加入纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶,用pH 5.5的磷酸氫二鈉與檸檬酸緩沖液作為提取溶劑,酶解溫度50 ℃,酶解時(shí)間60 min,考察料液比[(m龍牙楤木粗粉∶V緩沖液)分別為1∶15,1∶20,1∶25,1∶30,1∶35,1∶40 (g/mL)]對(duì)多糖提取率的影響。

        (2) 酶解時(shí)間:精密稱取一定量龍牙楤木粗粉,按質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%分別加入纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶,用pH 5.5的磷酸氫二鈉與檸檬酸緩沖液作為提取溶劑,料液比(m龍牙楤木粗粉∶V緩沖液)1∶25 (g/mL),酶解溫度50 ℃,考察酶解時(shí)間(30,60,90,120,150,180 min)對(duì)多糖提取率的影響。

        (3) 酶解溫度:精密稱取一定量龍牙楤木粗粉,按質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%分別加入纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶,用pH 5.5的磷酸氫二鈉與檸檬酸緩沖液作為提取溶劑,料液比(m龍牙楤木粗粉∶V緩沖液)1∶25 (g/mL),酶解時(shí)間60 min,考察酶解溫度(40,45,50,55,60 ℃)對(duì)多糖提取率的影響。

        (4) 緩沖液pH值:精密稱取一定量龍牙楤木粗粉,按質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%分別加入纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶,用磷酸氫二鈉與檸檬酸緩沖液作為提取溶劑,料液比(m龍牙楤木粗粉∶V緩沖液)1∶25 (g/mL),酶解溫度50 ℃,酶解時(shí)間60 min,考察緩沖液pH值(3.5,4.0,4.5,5.0,5.5,6.0)對(duì)多糖提取率的影響。

        1.2.5 復(fù)合酶酶量配比正交試驗(yàn) 精密稱取一定量龍牙楤木粗粉,在單因素試驗(yàn)最適料液比、酶解時(shí)間、酶解溫度、pH值下,以纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶的添加量為因素,以龍牙楤木多糖提取率為評(píng)價(jià)指標(biāo),設(shè)計(jì)L9(33)正交試驗(yàn),確定3種酶的最佳添加量。

        1.2.6 響應(yīng)面試驗(yàn) 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Behnken中心組合設(shè)計(jì)原理[18-19],以多糖提取率為響應(yīng)值,以酶解時(shí)間、料液比、酶解溫度為響應(yīng)因素,進(jìn)行三因素三水平響應(yīng)面分析試驗(yàn)。利用Design Expert 8.0.5b軟件進(jìn)行回歸分析,優(yōu)化提取工藝。

        1.2.7 抗氧化能力的測(cè)定

        (1) DPPH自由基清除能力:根據(jù)文獻(xiàn)[20-21]并修改。將DPPH自由基溶于無(wú)水乙醇,制成0.1 mmol/L試液。精密量取1 mL不同濃度待測(cè)樣品于試管中,加入3.0 mL DPPH試液,4.0 mL無(wú)水乙醇,混勻,避光反應(yīng)30 min,測(cè)定517 nm處吸光度值,以DPPH自由基試液作空白,按式(2)計(jì)算DPPH自由基清除率。

        (2)

        式中:

        R——自由基清除率,%;

        A0——空白試液吸光度值;

        An——樣品反應(yīng)液吸光度值。

        (2) 羥自由基清除能力:根據(jù)文獻(xiàn)[22]并修改。精密量取3 mL不同濃度的龍牙楤木多糖溶液于10 mL容量瓶中,依次精密加入0.1 mol/L硫酸鐵溶液、0.1 mol/L水楊酸溶液及0.1 mol/L過(guò)氧化氫溶液各2 mL,純化水定容,37 ℃水浴30 min,測(cè)定510 nm處吸光度值,按式(2)計(jì)算羥自由基清除率。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        利用Design-Expert 8.0.5、Excel軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理與分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗(yàn)

        2.1.1 料液比 由圖1可知,多糖提取率隨料液比的增加先短暫降低后升高再下降,當(dāng)料液比(m龍牙楤木粗粉∶V緩沖液)為1∶30 (g/mL)時(shí),多糖提取率最大。說(shuō)明隨著提取溶劑的增加,可能因不同酶的作用起效快慢不同,其破壞細(xì)胞壁及水解糖蛋白釋放多糖的功能優(yōu)勢(shì)不同[23],當(dāng)料液比增加至一定范圍時(shí),酶破解細(xì)胞壁的能力達(dá)到限度值,而未被酶破壞的細(xì)胞內(nèi)外濃度差亦無(wú)明顯變化,多糖釋放量及溶出量穩(wěn)定[24]。故料液比(m龍牙楤木粗粉∶V緩沖液)以1∶30 (g/mL)為宜。

        圖1 料液比對(duì)多糖提取率的影響

        2.1.2 酶解時(shí)間 由圖2可知,多糖提取率隨酶解時(shí)間的延長(zhǎng)先升高后暫時(shí)降低再升高再降低,當(dāng)酶解時(shí)間為150 min時(shí),多糖提取率達(dá)最大值。這可能是由于試驗(yàn)選用的為復(fù)合酶,而不同酶的起效作用時(shí)間及作用強(qiáng)度不同,或復(fù)合酶在釋放細(xì)胞內(nèi)多糖及其他成分的同時(shí),對(duì)部分多糖糖苷鍵起水解作用[25]。故酶解時(shí)間以150 min為宜。

        圖2 酶解時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響

        2.1.3 酶解溫度 由圖3可知,多糖提取率隨酶解溫度的升高先增加后降低,當(dāng)酶解溫度為50 ℃時(shí),多糖提取率達(dá)最大值,說(shuō)明復(fù)合酶隨著酶解溫度的升高活力增強(qiáng),加快多糖的溶出,當(dāng)酶解溫度升高至一定值后,酶活力下降,提取率降低[26]。因此,酶解溫度以50 ℃為宜。

        圖3 酶解溫度對(duì)多糖提取率的影響

        2.1.4 緩沖液pH值 由圖4可知,隨著pH值的升高,多糖提取率逐漸降低,當(dāng)pH值為3.5~4.0時(shí),提取率最高,可能是果膠酶在復(fù)合酶提取多糖過(guò)程中起主導(dǎo)作用,其在偏酸性條件下酶解作用強(qiáng),亦或是龍牙楤木細(xì)胞中含堿性成分綜合其溶劑的酸性,使釋放的多糖未被酸水解而保留于溶劑中[27]。同時(shí),為簡(jiǎn)化操作,測(cè)得以自制純化水為溶劑,溶液pH值為5.96時(shí)的多糖提取率與pH值

        圖4 緩沖液pH值對(duì)多糖提取率的影響

        為4.0時(shí)相近,因此,選擇以純化水為提取溶劑。

        2.2 復(fù)合酶酶量配比正交試驗(yàn)

        在單因素試驗(yàn)最適料液比、酶解時(shí)間、酶解溫度、pH值下,以纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶的添加量為因素,以龍牙楤木多糖提取率為評(píng)價(jià)指標(biāo),設(shè)計(jì)L9(33)正交試驗(yàn)。正交試驗(yàn)因素水平見(jiàn)表1,正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果見(jiàn)表2。

        表1 正交試驗(yàn)因素水平表

        表2 復(fù)合酶酶量配比正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果

        由表2可知,各因素對(duì)多糖提取率的影響程度依次為木瓜蛋白酶>果膠酶>纖維素酶。由表3可知,果膠酶添加量與木瓜蛋白酶添加量對(duì)多糖提取率影響顯著,纖維素酶添加量對(duì)多糖提取率的影響不顯著,從節(jié)約物料成本投入角度綜合考慮,最佳復(fù)合酶酶量配比為A1B2C1,即纖維素酶添加量1.0%、果膠酶添加量1.5%、木瓜蛋白酶添加量0.5%。

        表3 方差分析表?

        2.3 響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化

        2.3.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果 采用Box-Behnken中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法,根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,以酶解時(shí)間、酶解溫度、料液比為相應(yīng)變量,以多糖提取率為響應(yīng)值進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)。響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平見(jiàn)表4,試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果見(jiàn)表5。

        利用Design-Expert 8.0.5軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行二次多元回歸擬合,得二次回歸方程:

        (3)

        表4 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平表

        表5 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果

        表6 方差分析表?

        2.3.2 響應(yīng)曲面圖及等高線圖 由圖5~圖7可知,酶解時(shí)間、酶解溫度、料液比對(duì)龍牙楤木多糖提取率影響較大,表現(xiàn)為曲面陡峭。酶解時(shí)間與酶解溫度的交互作用強(qiáng)于酶解溫度與料液比的交互作用,而酶解時(shí)間與料液比的交互作用最弱。

        圖5 酶解溫度與酶解時(shí)間的交互作用對(duì)多糖提取率的影響

        圖6 酶解溫度與液料比的交互作用對(duì)多糖提取率的影響

        圖7 酶解時(shí)間與液料比的交互作用對(duì)多糖提取率的影響

        2.3.3 模型驗(yàn)證 由Design-Expert 8.0.5軟件得出復(fù)合酶法提取龍牙楤木多糖最佳工藝為:酶解溫度53.7 ℃,酶解時(shí)間160.2 min,料液比(m龍牙楤木粗粉∶V純化水)1.00∶31.05 (g/mL),此時(shí)預(yù)測(cè)龍牙楤木多糖提取率為10.78%??紤]到實(shí)際操作的可行性,將最佳提取工藝調(diào)整為:酶解溫度54 ℃,酶解時(shí)間160 min,料液比(m龍牙楤木粗粉∶V純化水)1∶31 (g/mL),此條件下的龍牙楤木多糖提取率為(10.68±0.05)%(n=3),與預(yù)測(cè)值接近,且較熱水浸提(5.87%)[13]和超聲波輔助提取(4.81%)[14]的分別提高了81.94%和122.04%,說(shuō)明該模型對(duì)龍牙楤木多糖提取工藝條件參數(shù)優(yōu)化可靠,具有較好的應(yīng)用價(jià)值。

        2.4 抗氧化活性

        2.4.1 DPPH自由基清除能力 由圖8可知,當(dāng)多糖質(zhì)量濃度為0~8 mg/mL時(shí),3種提取方法所得多糖對(duì)DPPH自由基均具有一定的清除作用,且隨著多糖質(zhì)量濃度的增加,DPPH自由基清除能力升高。3種提取方法所得多糖清除DPPH自由基的IC50值分別為6.76,4.96,2.00 mg/mL,但三者對(duì)DPPH自由基的清除率均低于維生素C。

        圖8 3種多糖對(duì)DPPH自由基清除率的影響

        2.4.2 羥基自由基清除能力 由圖9可知,當(dāng)多糖質(zhì)量濃度為0~10 mg/mL時(shí),熱水浸提法、超聲輔助提取法、復(fù)合酶法所得龍牙楤木多糖對(duì)羥基自由基均具有清除作用,且清除率隨多糖質(zhì)量濃度的增加而上升。當(dāng)多糖質(zhì)量濃度為8~10 mg/mL時(shí),羥基自由基清除率上升趨勢(shì)減弱,最大值分別為54.42%,60.13%,70.10%。3種提取方法所得多糖清除羥基自由基的IC50值分別為6.75,5.25,3.05 mg/mL,三者對(duì)羥基自由基的清除率低于維生素C。

        圖9 3種多糖對(duì)羥基自由基清除率的影響

        3 結(jié)論

        以龍牙楤木為原料,以純化水為溶劑,采用復(fù)合酶法提取龍牙楤木多糖,對(duì)其提取工藝進(jìn)行優(yōu)化并分析其抗氧化活性。結(jié)果表明,復(fù)合酶法提取龍牙楤木多糖的最佳條件為纖維素酶添加量1.0%,果膠酶添加量1.5%,木瓜蛋白酶添加量0.5%,酶解溫度54 ℃,酶解時(shí)間160 min,料液比(m龍牙楤木粗粉∶V純化水)1∶31 (g/mL),此條件下龍牙楤木多糖提取率為(10.68±0.05)%,與預(yù)測(cè)值接近。抗氧化試驗(yàn)表明,龍牙楤木多糖對(duì)DPPH自由基及羥基自由基的IC50值分別為2.00,3.05 mg/mL,且清除作用均隨多糖質(zhì)量濃度的增大而升高,清除率最大值分別為78.10%和70.10%,表明龍牙楤木多糖具有良好的抗氧化活性。后續(xù)需研究龍牙楤木多糖的純化、分離及結(jié)構(gòu)鑒定等。

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