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        microRNA-23b對Aβ25-35導致神經(jīng)細胞凋亡的作用及機制研究

        2021-09-14 12:31:10潘可萌高向東姚文兵
        中國藥科大學學報 2021年4期
        關(guān)鍵詞:膜電位培養(yǎng)箱神經(jīng)細胞

        潘可萌,陳 松,高向東,姚文兵

        (中國藥科大學生命科學與技術(shù)學院江蘇省生物藥物成藥性研究重點實驗室,南京211198)

        阿爾茨海默病(Alzheimer′s disease,AD)是一種主要發(fā)生在老年人中的神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,臨床表現(xiàn)為進行性認知能力喪失,晚期出現(xiàn)老年性癡呆[1]。主要病理特征表現(xiàn)為β-淀粉樣蛋白(βamyloid protein,Aβ)組成的老年斑(senile plaques,SPs),以及過度磷酸化的tau蛋白構(gòu)成的神經(jīng)原纖維纏結(jié)(neurofibrillary tangles,NFTs)[2]。AD發(fā)病機制尚不清楚,目前治療AD的藥物都只能在一定程度上緩解AD的癥狀,對于AD的神經(jīng)元損傷無法有效地清除和阻斷,并不能完全治愈AD[3]。隨著人口老齡化加劇,AD患病人數(shù)逐年增長,至2020年,全球AD患病人數(shù)將近5 000萬,給社會和家庭帶來巨大負擔[4]。因此,關(guān)于AD發(fā)病機制研究和藥物研發(fā)刻不容緩。

        微小RNA(microRNAs,miRNAs)是一種高度保守的小片段非編碼RNA,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控基因的表達[5]。miRNAs在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中廣泛分布,對神經(jīng)發(fā)育、分化、成熟發(fā)揮重要作用[6-8]。microRNA-23b(miR-23b)位于人類9號染色體長臂9q22.32,在該位點上以基因簇形式表達[9],呈現(xiàn)高度保守,參與細胞增殖、生長、凋亡、分化、細胞黏附以及細胞遷移等多種生命活動[10-12]。已有研究顯示在AD患者的額葉皮層中miR-23b的表達水平下調(diào),并且可以作為評估AD的生物標志物[13-14],但其在AD中的具體作用及機制需要進一步研究。

        本研究采用Aβ25-35建立AD樣損傷細胞模型,探究在該模型下miR-23b對神經(jīng)細胞凋亡情況的影響,并進一步研究凋亡相關(guān)蛋白和自噬相關(guān)蛋白表達水平的變化,從而在細胞水平上探討miR-23b對Aβ25-35導致AD樣神經(jīng)細胞凋亡的保護作用及機制。

        1 材料

        1.1試劑

        miR-23b(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司);Aβ25-35(中國吉爾生化有限公司);Lipofectamine 3000轉(zhuǎn)染試劑、蛋白酶和磷酸酶抑制劑、蛋白預染Marker(美國Thermo公司);RIPA細胞裂解液、一抗稀釋液、BCA蛋白濃度檢測試劑盒、線粒體膜電位檢測試劑盒(中國碧云天生物技術(shù)研究所);Annexin V-FITC/PI細胞凋亡檢測試劑盒、ECL試劑盒(南京諾唯贊生物技術(shù)有限公司);PVDF膜(美國Millipore公司);DMEM高糖培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司);氨芐青霉素、鏈霉素、牛血清白蛋白(中國Biosharp公司);胰蛋白酶、MTT(美國Sigma公司);Bax抗體、Bcl-2抗體、β-actin抗體(中國Abclonal公司);LC3B抗體、Beclin-1抗體、HRP標記的山羊抗兔IgG(美國Cell Signaling Technology公司);p62抗體(中國Proteintech公司);其他試劑均為市售分析純。

        1.2儀器

        二氧化碳細胞培養(yǎng)箱、高速冷凍離心機、全波長酶標儀(美國Thermo公司);電泳儀、轉(zhuǎn)膜儀(美國Bio-Rad公司);多功能凝膠成像系統(tǒng)(中國Tanon公司);倒置熒光顯微鏡(日本Olympus公司);流式細胞儀(美國BD公司)。

        1.3細胞

        神經(jīng)母細胞瘤細胞SH-SY5Y細胞株購自美國菌種保藏中心(ATCC)。

        2 方法

        2.1 細胞培養(yǎng)

        SH-SY5Y細胞在含有10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基中貼壁生長,放置于37℃含有5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待匯合度達到80%左右進行實驗。

        2.2 Aβ25-35寡聚體的制備

        稱量Aβ25-35粉末5 mg,加至雙蒸水5 mL中充分溶解,超凈臺中進行過濾除菌,37℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)老化4 d,BCA法測定Aβ25-35寡聚體濃度,-20℃保存。

        2.3 Aβ25-35致SH-SY5Y細胞損傷模型的建立

        待細胞培養(yǎng)瓶內(nèi)細胞匯合度達到80%左右時,進行胰酶消化,收集密度為每毫升5×104個的SH-SY5Y細胞懸浮液,充分混勻后以每孔100μL鋪在96孔細胞培養(yǎng)板中,放置于37℃含有5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。12 h后以梯度濃度8,4,2,1,0.5,0.25μmol/L的Aβ25-35孵育SH-SY5Y細胞24 h,進行MTT法檢測細胞活性。MTT法具體步驟:每孔加入MTT 10μL,放置于37℃含有5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中,4 h后棄去培養(yǎng)基,每孔加入DMSO 150μL后置于搖床上振搖使結(jié)晶物充分溶解。使用酶標儀檢測:570 nm為檢測波長,630 nm為參比波長,檢測各孔內(nèi)吸收度。

        2.4 細胞轉(zhuǎn)染

        實驗分為空白對照組、Aβ25-35+miR-23b NC組和Aβ25-35+mi R-23b轉(zhuǎn)染組。收集狀態(tài)良好的SHSY5Y細胞,以每毫升5×104個細胞的密度接種于6孔板中,放置于37℃含有5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待每孔細胞匯合度達到80%左右進行實驗。棄去每孔培養(yǎng)基,加入無血清opti-MEM培養(yǎng)基,2~3 h后開始轉(zhuǎn)染。具體轉(zhuǎn)染步驟如下:使用opti-MEM培養(yǎng)基稀釋Lipofectamine 3000與mi R-23b,Lipofectamine 3000 3.75μL用opti-MEM 125μL稀釋,使用opti-MEM培養(yǎng)基稀釋miR-23b至50 nmol/L,將miR-23b與稀釋的Lipofectamine 3000等體積混合,室溫靜置10 min,棄去孔內(nèi)opti-MEM培養(yǎng)基,加入混合物,每孔總體積2 mL,孵育6 h后更換為含有1%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,孵育24 h后,采用濃度為0.5μmol/L的Aβ25-35損傷SH-SY5Y細胞;繼續(xù)培養(yǎng)24 h進行后續(xù)實驗。

        2.5 Annexin V-FITC/PI雙染法檢測miR-23b及Aβ25-35對SH-SY5Y細胞凋亡的影響[15]

        細胞分組及轉(zhuǎn)染具體實驗步驟見“2.4”項。收集每孔細胞培養(yǎng)液,預冷PBS洗滌細胞3次后棄去,使用不含EDTA的胰酶消化貼壁細胞,終止消化后收集細胞,預冷PBS洗滌細胞2次后棄去;加入1×結(jié)合緩沖液100μL,輕輕吹勻至單細胞懸液;分別加入Annexin V-FITC染色液5μL和PI染色液5μL,輕輕吹勻,避光,室溫孵育10 min,加入1×結(jié)合緩沖液400μL,輕輕混勻,過篩網(wǎng),置于冰浴中,流式細胞儀檢測各組細胞熒光強度。

        2.6 JC-1探針法檢測miR-23b及Aβ25-35對SHSY5Y細胞線粒體膜電位的影響

        細胞分組及轉(zhuǎn)染具體實驗步驟見“2.4”項。取適量JC-1(200×)探針,按照每50μL探針加入8 mL超純水的比例進行稀釋,劇烈渦旋使之充分混勻,再加入JC-1染色緩沖液(5×)2 mL充分混勻;棄去細胞培養(yǎng)液,使用預冷的PBS洗滌1次,每孔加入細胞培養(yǎng)基1 mL,再加入JC-1染色工作液1 mL,充分混勻,放置于37℃含有5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中孵育20 min,棄去JC-1染色工作液,使用JC-1染色緩沖液(1×)洗滌2次,每孔加入無血清培養(yǎng)基2 mL,全程避光,熒光顯微鏡觀察并拍照。

        2.7 Western blot檢測mi R-23b及Aβ25-35對SHSY5Y細胞Bax、Bcl-2、p62、LC3B、Beclin-1蛋白表達量的影響

        細胞分組及轉(zhuǎn)染具體實驗步驟見“2.4”項。提取各組細胞內(nèi)總蛋白,具體步驟為:細胞板置于冰上,棄去孔內(nèi)培養(yǎng)基,預冷PBS洗滌細胞3次,每孔加入RIPA細胞裂解液(按1∶100的比例加入蛋白酶和磷酸酶抑制劑混合液)100μL;細胞刮刀刮取細胞收集于EP管中,每5分鐘充分渦旋1次,共6次;置于高速冷凍離心機中,4℃,12 000 r/min離心20 min后收集上清液即為細胞總蛋白。蛋白制樣后進行SDS-PAGE電泳,上樣后80 V恒壓電泳,濕轉(zhuǎn)恒流轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉封閉2 h后,TBST洗膜3次,每次10 min,4℃孵育一抗過夜;TBST洗膜5次,每次5 min,室溫孵育二抗2 h后,TBST洗膜5次,每次5 min,ECL顯色成像,檢測目的蛋白水平。

        2.8 統(tǒng)計分析

        實驗數(shù)據(jù)采用GraphPad Prism 8.0分析軟件進行處理,各項指標以xˉ±s表示,來源于至少3次獨立實驗,以One-Way ANOVA檢驗進行組間比較,以P<0.05表明差異有統(tǒng)計學意義。

        3 結(jié) 果

        3.1 Aβ25-35致SH-SY5Y細胞損傷模型的建立

        Aβ25-35作為毒性片段,使用濃度梯度為8,4,2,1,0.5,0.25μmol/L的Aβ25-35損傷SH-SY5Y細胞24 h后,MTT法檢測細胞活性。結(jié)果如圖1所示,Aβ25-35可損傷SH-SY5Y細胞活性,并且呈現(xiàn)一定的濃度依賴性。當0.5μmol/L Aβ25-35作用于SH-SY5Y細胞24 h時,與對照組相比,細胞損傷率約為30%,選取該濃度為Aβ25-35的造模濃度。

        Figure 1 Effects of different concentrations of Aβ25-35 on SH-SY5Y cell viability(xˉ±s,n=6)**P<0.01,***P<0.001 vs control group

        3.2 miR-23b對Aβ25-35致SH-SY5Y細胞凋亡情況的干預作用

        采用Aβ25-35對SH-SY5Y細胞進行損傷并轉(zhuǎn)染miR-23b,收集細胞進行Annexin V-FITC/PI染色,流式細胞儀檢測各組細胞凋亡水平的變化。結(jié)果如圖2所示,與對照組相比較,Aβ25-35損傷SH-SY5Y細胞后,凋亡細胞數(shù)量明顯增多,而轉(zhuǎn)染miR-23b后凋亡細胞數(shù)量顯著減少,說明miR-23b能夠改善Aβ25-35誘導的SH-SY5Y細胞凋亡水平。

        Figure 2 Effects of miR-23b and Aβ25-35 on apoptosis in SH-SY5Y cells(xˉ±s,n=3)A:Analysis of the apoptosis level of SH-SY5Y cells by flow cytometry;B:Quantification of the apoptosis level###P<0.001 vs control group;***P<0.001 vs Aβ25-35+miR-23b NC groupNC:Negative control

        3.3 miR-23b對Aβ25-35誘導SH-SY5Y細胞內(nèi)線粒體膜電位的影響

        采用Aβ25-35對SH-SY5Y細胞進行損傷并轉(zhuǎn)染miR-23b,JC-1檢測試劑盒檢測各組細胞線粒體膜電位情況。線粒體膜電位的下降說明細胞進入早期凋亡。當線粒體膜電位高時,JC-1形成聚合物,呈現(xiàn)紅色熒光;線粒體膜電位低時,JC-1為單體形式,呈現(xiàn)綠色熒光。結(jié)果如圖3所示,與對照組相比較,Aβ25-35損傷SH-SY5Y細胞后,細胞內(nèi)綠色熒光較強,紅色熒光減弱,說明Aβ25-35損傷神經(jīng)細胞后線粒體膜電位降低;而轉(zhuǎn)染miR-23b后細胞內(nèi)出現(xiàn)較強的紅色熒光,綠色熒光減弱,說明miR-23b能夠緩解Aβ25-35誘導的SH-SY5Y細胞內(nèi)線粒體膜電位異常。

        Figure 3 Effects of miR-23b and Aβ25-35 on the mitochondrial membrane potential in SH-SY5Y cells(Scale bar:50μm)A:Fluorescence of mitochondrial membrane potential of SH-SY5Y cells;B:Quantification of the red/green fluorescence ratio(xˉ±s,n=3)###P<0.001 vs control group;***P<0.001 vs Aβ25-35+miR-23b NC group

        3.4 mi R-23b對Aβ25-35誘導SH-SY5Y細胞內(nèi)Bax、Bcl-2蛋白表達水平的影響

        采用Aβ25-35對SH-SY5Y細胞進行損傷并轉(zhuǎn)染miR-23b,Western blot檢測各組細胞內(nèi)Bax、Bcl-2蛋白表達水平。結(jié)果如圖4所示,與對照組相比較,Aβ25-35損傷SH-SY5Y細胞后,SH-SY5Y細胞內(nèi)促凋亡蛋白Bax表達量和抑凋亡蛋白Bcl-2表達量的比值顯著上升,而轉(zhuǎn)染miR-23b后促凋亡蛋白Bax表達量和抑凋亡蛋白Bcl-2表達量的比值明顯下降,說明miR-23b可能通過調(diào)節(jié)Aβ25-35誘導SHSY5Y細胞內(nèi)凋亡相關(guān)蛋白的表達水平,進而緩解神經(jīng)細胞的凋亡。

        3.5 miR-23b對Aβ25-35誘導SH-SY5Y細胞內(nèi)p62、LC3B、Beclin-1蛋白表達量的影響

        采用Aβ25-35對SH-SY5Y細胞進行損傷并轉(zhuǎn)染miR-23b,Western blot檢測各組細胞內(nèi)p62、LC3B、Beclin-1蛋白表達量的變化。結(jié)果如圖5所示,與對照組相比較,Aβ25-35誘導SH-SY5Y細胞損傷后,SH-SY5Y細胞內(nèi)p62蛋白水平上升,LC3B-II/LC3B-I比值下降,Beclin-1蛋白水平下降,而轉(zhuǎn)染miR-23b后能在一定程度上緩解Aβ25-35誘導SHSY5Y細胞內(nèi)自噬相關(guān)蛋白水平表達的異常,說明miR-23b可能同時影響自噬相關(guān)蛋白的表達量,最終緩解神經(jīng)細胞的凋亡。

        Figure 5 Effects of miR-23b and Aβ25-35 on the protein levels of p62,LC3B and Beclin-1 in SH-SY5Y cells(xˉ±s,n=3)A:Detection of protein levels of p62,LC3B and Beclin-1 by Western blot;B,C,D:Quantitative analysis of protein levels of p62,LC3B-II/LC3B-I and Beclin-1##P<0.01,###P<0.001 vs control group;***P<0.001 vs Aβ25-35+miR-23b NC group

        4 討 論

        AD主要發(fā)生在老年人群中,中國作為老年人口數(shù)量增長較快的國家,目前AD患病人數(shù)已經(jīng)達到950萬,60歲以上老人的平均患病率為5.4%[16]。然而AD發(fā)病機制復雜,目前尚未研究出針對AD的有效治療藥物[17]。miRNAs作為一種內(nèi)源性小片段非編碼RNA,能夠與特定mRNA的3′UTR非編碼翻譯區(qū)靶向結(jié)合從而導致mRNA的降解或抑制翻譯過程,最終調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄后翻譯表達[18]。miR-23b定位于9號染色體上,屬于miR-23b/27b/24-1家族,其可靶向不同的蛋白從而在多種疾病中發(fā)揮作用[19-21]。已有研究顯示在AD患者的額葉皮層中miR-23b的表達水平下調(diào),并且可以作為評估AD的生物標志物[13-14]。然而,miR-23b在AD中的具體作用以及分子機制還有待進一步研究。在近幾十年的研究中普遍認為Aβ的異常積累可能是導致AD的發(fā)病機制之一[22-23],Aβ聚集形成纖維化沉積,進而形成β淀粉樣斑塊最終引發(fā)突觸損傷、tau蛋白異常磷酸化、膽堿能丟失、氧化應激和神經(jīng)炎癥等細胞損傷[24]。Aβ25-35因其能夠迅速聚集,產(chǎn)生較強的神經(jīng)毒性[25],諸多研究使用Aβ25-35建立AD模型[26]。同時SH-SY5Y細胞作為人類神經(jīng)母細胞瘤細胞,其形態(tài)、神經(jīng)化學和電生理特性與神經(jīng)元相似[27],因此本研究采用Aβ25-35誘導SH-SY5Y神經(jīng)細胞建立AD細胞損傷模型,探索miR-23b對SH-SY5Y神經(jīng)細胞活性的影響。結(jié)果表明在24 h內(nèi),Aβ25-35對SH-SY5Y細胞活性損傷呈現(xiàn)一定的濃度依賴性,以濃度為0.5μmol/L的Aβ25-35誘導SH-SY5Y神經(jīng)細胞建立AD樣細胞損傷模型,給予miR-23b后能夠緩解Aβ25-35所致神經(jīng)細胞凋亡。說明miR-23b對AD樣細胞模型發(fā)揮一定的保護作用。

        凋亡作為生物體內(nèi)細胞自主消亡的過程,對機體組織發(fā)育和體內(nèi)環(huán)境平衡至關(guān)重要[28]。諸多研究顯示凋亡參與多種主要的神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,包括AD、肌萎縮側(cè)索硬化癥、帕金森病和亨廷頓病等[29]。自噬作為一種選擇性降解途徑,通過降解細胞內(nèi)受損的細胞器、蛋白質(zhì),提高細胞應對各種應激挑戰(zhàn)的能力[30]。正常情況下細胞凋亡與自噬過程相互平衡,維持細胞內(nèi)穩(wěn)態(tài),但在神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病中凋亡與自噬平衡被打破[31-32]。本研究發(fā)現(xiàn)miR-23b可以緩解Aβ25-35導致的神經(jīng)細胞內(nèi)異常的線粒體膜電位,同時miR-23b顯著改善Aβ25-35引起的異常的凋亡相關(guān)蛋白和自噬相關(guān)蛋白水平,說明miR-23b可能同時影響凋亡相關(guān)蛋白和自噬相關(guān)蛋白從而緩解神經(jīng)細胞的凋亡,最終對Aβ25-35損傷的SH-SY5Y細胞發(fā)揮保護作用。本研究為防治AD提供了新的潛在靶點,為AD藥物研發(fā)提供了新思路。

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