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        pH對微波改性薏米蛋白功能特性的影響

        2021-09-10 09:14:48張藝瑋任靜張舒富天昕馮玉超王長遠
        中國調(diào)味品 2021年9期
        關(guān)鍵詞:改性

        張藝瑋,任靜,張舒,富天昕,馮玉超,王長遠*

        (1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué) 食品學(xué)院,黑龍江 大慶 163319;2.國家雜糧工程技術(shù)研究中心,黑龍江 大慶 163319)

        薏米,是一種傳統(tǒng)的藥食兼用谷物,廣泛種植于中國、日本和越南,被譽為“世界禾本科植物之王”[1]。薏米蛋白資源豐富,含18種氨基酸,包括8種人體必需的氨基酸,與FAO/WHO制定的黃金配比相接近[2]。但是對薏米蛋白的研究并不多,對改性薏米蛋白的研究報道更是較少見。在食品中添加改性蛋白可以增強其功能特性,其中物理改性方法具有安全無殘留及成本低廉等特點,所以對蛋白改性多采取物理方法,其中微波廣泛應(yīng)用于化學(xué)、生物和食品等科學(xué)研究[3],微波對蛋白質(zhì)的破壞效果最強[4-5],所以較常應(yīng)用于蛋白改性。pH是影響蛋白結(jié)構(gòu)和功能特性的主要因素之一,因此在微波改性蛋白研究中具有重要的參考價值。基于此,本實驗選用微波改性的方法,以堿法提取的薏米蛋白進行微波改性,并對其結(jié)構(gòu)及功能特性進行測定,探討不同pH條件下微波改性后薏米蛋白的結(jié)構(gòu)和功能特性,使其在后期對薏米蛋白的改性提供理論依據(jù),對促進薏米蛋白在食品行業(yè)中的應(yīng)用及薏米產(chǎn)品的開發(fā)具有參考意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        薏米、玉米色拉油:市售;牛血清蛋白、鹽酸、氫氧化鈉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、福林-酚試劑、石油醚(分析純):購自上海麥克林公司;溴化鉀(光譜純):Sigma 公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        TG16-WS離心機 長沙湘儀離心機儀器有限公司;DELTA320精密pH計 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;Alpha 1-2LD Plus冷凍干燥機 德國Christ公司;CW-2000超聲微波萃取儀 上海新拓分析儀器科技有限公司;HHS-21-6數(shù)顯恒溫水浴鍋 上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;DGG-9140電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海森信實驗儀器有限公司;A360型紫外-可見分光光度計 翱藝儀器(上海)有限公司;Quintik 224-1CN電子天平 賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;FTIR傅里葉紅外光譜儀 美國 Thermo Electron公司。

        1.3 方法

        1.3.1 薏米蛋白的提取

        將薏米清洗,去除雜質(zhì),于烘箱中烘干至恒重,用粉碎機粉碎后過80目篩,得到薏米粉。稱取適量薏米粉于燒杯中與石油醚以1∶5(m/V)的比例混合,攪拌5 h,得到脫脂薏米粉,晾干后置于密封袋中保存?zhèn)溆谩2捎脡A提酸沉法進行薏米蛋白的提取,參照曹向宇等[6]的實驗方法并進行適當(dāng)改動:脫脂薏米粉與蒸餾水按照1∶12(m/V)的比例混合,用1 mol/L的NaOH溶液調(diào)節(jié)pH值至10.5后,于37 ℃水浴鍋中加熱,并進行攪拌4 h,之后置于4000 r/min的離心機中離心20 min,取上清液;用1 mol/L的HCl溶液將上清液的pH值調(diào)至等電點,靜置1 h,之后以4000 r/min離心2 min,棄上清液,取沉淀進行冷凍干燥,于-20 ℃貯存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3.2 薏米蛋白的微波改性

        于燒杯中稱取5 g薏米蛋白粉,添加100 mL蒸餾水,配制成濃度為5%的薏米蛋白水溶液,并用NaOH和HCl溶液(均為0.1 mol/L),分別調(diào)節(jié)pH值為5.5,6.5,7.5,8.5,9.5,10.5,然后放入超聲微波萃取儀中,關(guān)閉超聲,設(shè)置微波功率100 W、溫度85 ℃、時間100 s進行改性。改性后的蛋白溶液以4000 r/min離心20 min,取沉淀物進行冷凍干燥,于-20 ℃貯存?zhèn)溆肹7]。

        1.3.3 溶解性的測定

        參照賈聰?shù)萚8]的實驗方法,并進行適當(dāng)?shù)母膭?。稱量0.5 g樣品,添加100 mL濃度為0.05 mol/L的磷酸緩沖溶液(pH值為7),放入37 ℃的水浴鍋中并攪拌30 min,靜置取出。于4000 r/min的離心機中離心20 min,取1 mL上清液于試管中,再依次加入1 mL堿性銅溶液和4 mL福林酚溶液,立即搖勻,于55 ℃的水浴中反應(yīng)5 min,置于冷水浴中10 min,取出后于650 nm處測定其吸光度值,按照下式計算溶解度。

        (1)

        1.3.4 乳化性、乳化穩(wěn)定性的測定

        用0.1 mol/L的磷酸緩沖溶液(pH 7),配制10 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的蛋白溶液,加入2 mL玉米油,然后以10000 r/min的速度高速勻漿1 min,制成乳濁液,用微量注射器于液體底部取50 μL液體,放入預(yù)先加入5 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%十二烷基硫酸鈉溶液(SDS)的試管內(nèi),制成混合溶液,分別在0,10 min時,在500 nm的波長下檢測吸光度值A(chǔ)0、Aφ。乳化性、乳化穩(wěn)定性的計算公式如下[9]:

        (2)

        (3)

        式中:A0為0 min時混合溶液的吸光度;Aφ為10 min時混合溶液的吸光度。

        1.3.5 起泡性、起泡穩(wěn)定性的測定

        參照Agyare等[10]的方法,并根據(jù)實驗對條件進行適當(dāng)?shù)母膭?。? g凍干的薏米蛋白粉,添加100 mL濃度為0.05 mol/L的磷酸緩沖溶液(pH 7),配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的蛋白溶液,然后以10000 r/min的高速均質(zhì)機進行攪拌2 min,快速移至100 mL的量筒內(nèi),記錄泡沫所占體積V0,將該量筒放入30 ℃的水浴鍋中靜置30 min,然后再次記錄泡沫所占體積V1。起泡性、起泡穩(wěn)定性的計算公式如下:

        (4)

        (5)

        式中:V0為0 min時泡沫體積;V1為10 min時的泡沫體積。

        1.3.6 紅外光譜的測定

        參照林素麗[11]的實驗方法,并進行適當(dāng)?shù)恼{(diào)整。利用傅里葉紅外光譜分析法對改性后的薏米蛋白進行分析,采用KBr壓片法,稱取0.0001 g的樣品和0.1 g的固體KBr于瑪瑙研缽中,研磨成均勻的粉末并壓成薄片。用傅里葉紅外光譜儀作全波長掃描,波數(shù)范圍在0~4000 cm-1之間,分辨率在4 cm-1,波數(shù)精度在0.01 cm-1,掃描32次。

        1.3.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

        實驗均進行3次平行,采用Excel 2019軟件對數(shù)據(jù)進行處理分析作圖。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 溶解性分析

        蛋白質(zhì)在水溶液和鹽溶液中被溶解的性質(zhì)稱為溶解性,溶解效果較好的蛋白質(zhì)通常也具有較好的乳化性、起泡性、持油性和凝膠性等特點。具有良好溶解性的植物蛋白在食品工業(yè)中也具有良好的應(yīng)用前景,尤其是在飲料行業(yè),植物蛋白近年來成為科研與實際生產(chǎn)中的熱點,改性后提高溶解性植物蛋白在貯存過程中可以抑制分層和沉淀現(xiàn)象,增強穩(wěn)定性,改善口感等[12]。

        以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.8171x+0.0002(R2=0.9983)。不同pH條件下微波改性后薏米蛋白的溶解性見圖1。

        圖1 微波改性薏米蛋白的溶解性Fig.1 The solubility of microwave-modified coix seed protein

        由圖1可知,pH值為5.5時,溶解度為47.7%。pH 6.5時的溶解度最低,僅為34.5%。隨著pH值的不斷升高,改性蛋白的溶解度也不斷增大,pH 7.5時的溶解度為42.2%,pH值為8.5時達到峰值,溶解度為67.7%,較未改性的薏米蛋白高出1.7%。pH 9.5與pH 8.5相差不大,分別為64.4%和67.7%,但隨著pH>8.5,溶解度在不斷降低,pH 10.5時溶解度為38.0%。

        經(jīng)過微波改性后的蛋白,蛋白分子的二硫鍵被打破,結(jié)構(gòu)不再緊密,暴露更多親水基團,增強溶解性。pH值為8.5時溶解度最大,可能是因為較高的pH值導(dǎo)致蛋白質(zhì)內(nèi)部因靜電排斥而造成分子伸展,蛋白質(zhì)分子粒徑增大,產(chǎn)生了部分可溶的蛋白質(zhì)聚集體[13],從而使溶解度增大[14]。pH<8.5條件下的改性蛋白溶解度不高,主要因素之一為在等電點附近蛋白沉淀較多,蛋白易借靜電力形成較大的聚集體,不利于溶解。隨著溶液的環(huán)境趨向堿性,蛋白的溶解度均高于中性和弱酸性環(huán)境。

        2.2 乳化性和乳化穩(wěn)定性定性分析

        互不相溶的兩種液體經(jīng)過機械攪拌形成均一乳化液的性質(zhì)為乳化性,是蛋白質(zhì)具有的一種特性。影響此特性的主要因素為蛋白質(zhì)分子鏈中的疏水基團和親水基團,蛋白質(zhì)的存在決定了其表面活性[15]。

        不同pH條件下微波改性對薏米蛋白乳化性的影響見圖2。

        圖2 微波改性薏米蛋白的乳化性Fig.2 The emulsibility of microwave-modified coix seed protein

        由圖2可知,pH 5.5時乳化性為0.0034 m2/g,在pH 6.5條件下,薏米蛋白的乳化性最低,僅為0.0012 m2/g;pH 7.5時,薏米蛋白的乳化性最佳,達到0.0076 m2/g,高出未改性薏米蛋白0.0016 m2/g。pH>7.5時,薏米蛋白的乳化性不斷降低,pH 8.5時乳化性為0.0038 m2/g,pH 9.5為轉(zhuǎn)折點,乳化性為0.0022 m2/g,當(dāng)pH值繼續(xù)增大,薏米蛋白的乳化性不再降低,反而升高,pH 10.5時,乳化性升至0.0058 m2/g。

        不同pH條件下微波改性后薏米蛋白的乳化穩(wěn)定性見圖3。

        圖3 微波改性薏米蛋白的乳化穩(wěn)定性Fig.3 The emulsifying stability of microwave-modified coix seed protein

        由圖3可知,pH 5.5和pH 7.5時的乳化穩(wěn)定性相差不大,分別為36%和37%。pH 6.5時乳化穩(wěn)定性為58%,其最好的乳化穩(wěn)定性為pH 8.5條件下的微波改性蛋白,達到79%,比未改性的薏米蛋白高出37%。pH 9.5時改性蛋白的乳化穩(wěn)定性為61%,隨著pH值不斷增大,乳化穩(wěn)定性也不斷降低,pH 10.5時改性蛋白的乳化穩(wěn)定性僅為24%。

        圖2和圖3中乳化性和乳化穩(wěn)定性的變化趨勢呈相反狀態(tài)。但在等電點附近,其乳化性和乳化穩(wěn)定性都不高,推斷在此pH條件下改性蛋白只能微溶于溶液中,并且缺乏靜電排斥力,親水性降低,所以能夠依附在油/水界面上的蛋白質(zhì)減少,導(dǎo)致乳化性不高。在中性偏堿性的條件下,改性蛋白的乳化性有所提高,主要因素有微波處理后的蛋白分子更加松散,極性基團和疏水基團暴露的增加及柔性的增強[16]。隨著pH值的增大,乳化穩(wěn)定性降低,推測在堿性環(huán)境下改性的親水基團增加,附著在油/水界面上的蛋白質(zhì)較之前減少,界面厚度減小,從而導(dǎo)致乳化穩(wěn)定性降低。

        2.3 起泡性和泡沫穩(wěn)定性分析

        蛋白質(zhì)經(jīng)過機械攪打,在氣-液界面可以形成一層堅韌的薄膜并使氣體并入且穩(wěn)定的能力稱為起泡性。分散的兩相間存有界面張力,蛋白能夠吸附在兩相之間降低其張力,同時產(chǎn)生一定的流變學(xué)特性和穩(wěn)定作用,并且作用于產(chǎn)生的吸附膜,增加膜的強度、粘度和彈性以對抗不利因素的能力稱為泡沫穩(wěn)定性[17]。

        微波改性后的薏米蛋白在不同pH條件下的起泡性見圖4。

        圖4 微波改性薏米蛋白的起泡性Fig.4 The foamability of microwave-modified coix seed protein

        由圖4可知,pH 5.5時,改性蛋白的起泡性為38%,在pH 6.5時起泡性最低,僅為5%。隨著pH值的不斷增大,改性蛋白的起泡性得到改善,pH 7.5時起泡性為20%,pH 8.5時為最大值,達到54%,未改性薏米蛋白的起泡性為43%。當(dāng)pH>8.5時,起泡性降低,pH 9.5和pH 10.5時的起泡性分別為22%和29%。

        微波改性薏米蛋白在不同pH條件下的泡沫穩(wěn)定性見圖5。

        圖5 微波改性薏米蛋白的泡沫穩(wěn)定性Fig.5 The foaming stability of microwave-modified coix seed protein

        由圖5可知,pH 5.5時,改性蛋白的泡沫穩(wěn)定性為42%,pH 6.5時泡沫穩(wěn)定性最佳,穩(wěn)定性達到80%。隨著堿性的增大,泡沫穩(wěn)定性逐漸下降,pH 8.5時,泡沫穩(wěn)定性最低,僅為29%,也高出未改性薏米蛋白8%,pH 9.5時略有升高,泡沫穩(wěn)定性為41%,pH 10.5時為30%。

        良好的溶解度是蛋白質(zhì)呈現(xiàn)良好起泡性的重要條件,pH 8.5時溶解度和起泡性最好[18]。微波改性后的薏米蛋白,受微波作用而被極化,分子內(nèi)的非親水基團暴露于分子表面,降低其表面張力,提高其起泡性。pH 6.5時的泡沫穩(wěn)定性最好而起泡性最差。隨著堿性增大,起泡性緩慢增加,泡沫穩(wěn)定性隨之下降,推測在堿性條件下,改性蛋白的溶解性得到改善,起泡部分為溶解部分,即起泡性也得到改善。但在攪打過程中沉淀的蛋白顆粒會通過靜電作用與泡沫結(jié)合,所形成的泡沫綿密穩(wěn)定,并且在等電點附近環(huán)境下的蛋白之間缺乏靜電排斥相互作用,利于在界面蛋白之間相互作用及形成黏稠的膜,所以泡沫穩(wěn)定性最好,pH增大,泡沫穩(wěn)定性下降。

        2.4 傅里葉紅外光譜分析

        傅里葉紅外光譜分析是一種分析多肽和蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)常用的方法,具有快捷、簡單、高效等特點,廣泛用于鑒定食品、中草藥等混合體[19]。不同的官能團和化學(xué)鍵對紅外光譜吸收不同,可以檢測到蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)的變化。

        圖6 微波改性薏米蛋白的紅外光譜圖Fig.6 The infrared spectra of microwave-modified coix seed protein

        3 結(jié)論

        本研究通過對薏米蛋白在不同pH值條件下進行微波改性,采用堿提酸沉法提取薏米蛋白并對改性蛋白進行結(jié)構(gòu)和功能性測定,在傅里葉紅外光譜分析中發(fā)現(xiàn),pH 8.5條件下改性蛋白的吸收峰與未改性薏米蛋白相差不大,說明結(jié)構(gòu)相似,改性后的薏米蛋白溶解性提高1.7%,乳化性提高0.0016 m2/g,乳化穩(wěn)定性提高37%,起泡性提高11%,泡沫穩(wěn)定性提高8%。通過分析說明改性薏米蛋白的結(jié)構(gòu)變化越小,其功能性質(zhì)越好。磷脂P-H鍵的伸縮振動可能與改性后的薏米蛋白功能性質(zhì)改善相關(guān)。綜上所述,微波改性中,不同pH值對薏米蛋白的結(jié)構(gòu)影響顯著。本研究對薏米蛋白的改性研究具有一定的參考意義。

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