鞏濤 魏傳軍 安明理 寧萌 周伏忠

摘要 為選育納豆激酶（Nattokinase，NK）高活性菌株，從4種不同風味食品中分離得到26株菌株，通過酪蛋白平板初篩和液體發(fā)酵復篩，得到2株納豆激酶高產菌株，利用分子生物學技術鑒定為2株枯草芽孢桿菌（ Bacillus subtilis ）。采用氯化鋰-紫外與亞硝基胍（NTG）復合誘變的方式，最終獲得1株納豆激酶活性達到2 338.01 U/mL的高產菌株SD3-3-6，該突變菌株納豆激酶酶活相較于初始菌株SD3提高了1.93倍，是1株具有應用前景的高產菌株。

關鍵詞 納豆;納豆激酶;多肽;復合誘變;芽孢桿菌

中圖分類號 Q 936.96 ?文獻標識碼 A ?文章編號 0517-6611（2021）15-0159-03

Abstract In order to select nattokinase high activity strains， 26 strains were isolated from four different samples. Two nattokinase highyield strains were screened through primary screening and rescreening， and identified as two ?Bacillus subtilis ?strains by molecular biology technology. A highyield strain SD336 with nattokinase activity of 2 338.01 U/mL was obtained by lithium chloride UV and NTG compound mutagenesis. The final activity of nattokinase of SD336 was 1.93 times higher than that of the original strain SD3.

Key words Natto;Nattokinase;Polypeptide;Mutagenesis; Bacillus subtilis

基金項目 河南省科技攻關項目（212102310541）;河南省科學院科研項目（190305003、18JK16012）。

作者簡介 鞏濤（1982—），男，山東臨沂人，助理研究員，博士，從事農業(yè)微生物學研究。

收稿日期 2021-01-03

納豆激酶（natto kinase，NK）是納豆在發(fā)酵過程中由枯草芽孢桿菌（ Bacillus subtilis ）產生的一種具有纖溶活性的絲氨酸蛋白酶[1]。大量研究結果顯示，納豆發(fā)酵過程中，不僅生成大量的短肽、多肽等具有特殊生理功能的生物活性肽，還能產生具有強溶栓功能的納豆激酶，可以被開發(fā)為功能性食品、營養(yǎng)食品和天然藥物等，具有廣泛的應用前景[2-5]。納豆激酶作為一種潛在的溶栓藥物，與目前臨床使用的鏈激酶、尿激酶等溶栓藥物相比，除具有更好的安全性等諸多優(yōu)點外，成本也更加低廉[6-10]。然而，目前國內篩選到的納豆激酶菌種的產酶活性和國外相比還存在較大差距，國內報道的多數為500～3 200 U/mL[11-15]，如何分離與選育出納豆激酶高活性菌種是亟需解決的問題。

筆者從4種納豆與豆豉食品中分離得到了26株產納豆激酶的菌株，對2株酶活較高的菌株通過氯化鋰-紫外與NTG復合誘變的方法實施多次誘變，最終得到納豆激酶酶活較高的高產菌株，旨在為納豆激酶的生產奠定良好基礎。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 菌株來源。

分別從購于日本的山大納豆、濱莉納豆，中國的惟一齋八寶豆豉、永川豆豉中分離。

1.1.2 培養(yǎng)基。

酪蛋白初篩培養(yǎng)基[16]：酪蛋白5 g/L，葡萄糖1 g/L，酵母提取物1 g/L，K2HPO4 1 g/L，KH2PO4 0.5 g/L，MgSO4 0.1 g/L，瓊脂15 g/L，pH 7.0～7.5。

LB培養(yǎng)基：蛋白胨5 g/L，酵母粉5 g/L，NaCl 10 g/L。

液體發(fā)酵培養(yǎng)基：蛋白胨25 g/L，葡萄糖20 g/L，MgSO4 0.5 g/L，CaCl2 0.2 g/L，K2HPO4 2 g/L，KH2PO4 1 g/L。以上培養(yǎng)基于121 ℃滅菌20 min，備用。

1.1.3 主要試劑。

尿激酶、纖維蛋白原（血）、凝血酶，均購自中國藥品生物制品檢定所，亞硝基胍（北京華越洋生物科技有限公司產品，中國），其他試劑均為國產分析純。

1.2 試驗方法

1.2.1 納豆激酶產生菌株的分離與初篩。

根據文獻[17]的方法稍作修改，取5 g樣品用滅菌研缽磨碎，加入20 mL無菌生理鹽水混勻，85 ℃水浴10 min殺死營養(yǎng)體及雜菌，5 000 r/min 離心10 min，取上清。將上清進行10倍梯度稀釋，吸取適當稀釋后的樣品0.2 mL涂布酪蛋白平板，37 ℃培養(yǎng)24 h，選擇透明圈較大的菌落作為初篩菌株。

1.2.2 液體發(fā)酵復篩。

將初篩菌株的種子液以5%接種量接種于LB液體培養(yǎng)基中，37 ℃ 180 r/min振蕩培養(yǎng)72 h，5 000 r/min離心10 min，取適當稀釋后的上清液10 μL于瓊脂糖-纖維蛋白平板，室溫下放置3～5 ?h，測量比較溶纖圈直徑，選擇納豆激酶酶活較高的菌株，作為誘變育種的出發(fā)菌株。

1.2.3 生長曲線繪制。

將待誘變菌株以5%接種量分別接種到裝有LB液體培養(yǎng)基的三角瓶中，37 ℃，200 r/min搖瓶培養(yǎng)，每隔2 h取樣1次，在OD600下測定吸光值。以菌體生長時間為橫坐標，OD600值為縱坐標，繪制菌株生長曲線圖。

1.2.4 氯化鋰-紫外復合誘變。

根據文獻[18]描述略做修改，將菌株接種于含有0.8%氯化鋰的LB培養(yǎng)基，37 ℃200 r/min 培養(yǎng)至對數生長期，5 000 r/min離心10 min，收集菌體，用生理鹽水洗滌菌體細胞并稀釋為10-8 CFU/mL的菌懸液，取制備好的菌懸液10 mL于無菌9 cm培養(yǎng)皿中，置于距20 W紫外燈30 cm處的磁力攪拌器上，開啟磁力攪拌器，分別照射30、60、90、120、150、180 s，將誘變后的菌懸液移入無菌試管中，避光冰浴1 h，冰浴后的菌液適當稀釋，取200 μL涂布酪蛋白平板，37 ℃培養(yǎng)24 h，選取透明圈較大的菌落進行液體發(fā)酵復篩。

1.2.5 亞硝基胍（NTG）誘變。

將氯化鋰-紫外復合誘變處理之后的高活性菌株接入LB培養(yǎng)基培養(yǎng)至對數生長期，用滅菌的0.1 mol/L、pH 7.0磷酸鈉鹽緩沖液（PBS）制備10-8 CFU /mL的菌懸液，加入用上述PBS配制的亞硝基胍（NTG）溶液，制作終濃度0.1～1.0 mg/mL的誘變液，于37 ℃搖床中振蕩處理20 h，5 000 r/min離心10 min，棄上清液，用緩沖液洗滌3次，適當稀釋涂于酪蛋白平板，37 ℃培養(yǎng)24 h，選取透明圈較大的菌落進行液體發(fā)酵復篩[19]。

1.2.6 致死率的測定。

將未經誘變處理的菌液（A）與誘變處理的菌液（B）適當等量稀釋后，涂布于酪蛋白平板上計算菌落數。取致死率為60%～90%的組別進行下一步試驗[20]。致死率的計算公式如下：

致死率（%）=（ A-B）/A×100

1.2.7 高活性菌株遺傳穩(wěn)定性驗證。

對經誘變處理之后篩選到的高性菌株進行傳代試驗，連續(xù)傳8代，每次傳代后的菌株經液體發(fā)酵，測量比較溶纖圈直徑，篩選納豆激酶酶活高的菌株。

1.2.8 高活性菌株的鑒定。

按細菌DNA提取試劑盒（Omega）操作手冊提取基因組DNA，用細菌16S rDNA通用引物27F和1492R進行PCR擴增16S rDNA基因序列[21]。將PCR產物送華大基因進行測序。將測序序列進行BLAST同源性對比分析，運用Mega 7.0構建系統(tǒng)發(fā)育樹，確定所選菌株種屬[22]。

2 結果與分析

2.1 納豆激酶高活性菌株的初篩與復篩

通過酪蛋白平板初步篩選出了26株長勢良好且透明圈明顯的菌落。經過瓊脂糖-纖維蛋白原平板對26株菌進行復篩，最終得到5株具有較大透明圈的菌株（表1），按照“1.2.8”進行了菌株的鑒定，綜合考慮選擇菌株SD3與WYZ14作為誘變育種出發(fā)菌株。

2.2 SD3、WYZ14生長曲線繪制

菌株SD3、WYZ14生長曲線（圖1）顯示，接種后4 h菌株SD3、WYZ14進入對數生長期，4～18 h是菌株的對數生長期，20 h后菌體進入穩(wěn)定期。加入氯化鋰的菌體生長稍延后。由于對數生長期的細胞處理，菌體活力旺盛，突變率高，重現(xiàn)性好，故后續(xù)試驗選擇培養(yǎng)16 h的菌體進行誘變處理。

2.3 氯化鋰-紫外復合誘變篩選結果

文獻報道，一般選擇致死率為70%～80%的劑量，誘變效果較好。從圖2可見，當處理時間為120 s時，SD3與WYZ14致死率分別達到76.5%與78.2%。因此，氯化鋰-紫外復合試驗選擇120 s作為最佳誘變劑量。

通過對氯化鋰-紫外復合誘變，篩選出22株透明圈與菌落直徑比值較CK有所增大的菌株，每出發(fā)菌株選擇1株酶活最高的誘變菌株分別進行搖瓶發(fā)酵，傳代培養(yǎng)后對酶活進行測定，測定結果見表2。表2顯示，誘變菌株SD3-3液體發(fā)酵液納豆激酶酶活較出發(fā)菌株提高了40.3%，為搖瓶發(fā)酵酶活最高的菌株，選用菌株SD3-3進行NTG 誘變育種。

2.4 NTG誘變篩選結果

由圖3可見，隨著誘變劑量的增加與處理時間的延長，菌株致死率不斷增大。低劑量時，誘變效果不佳，高劑量會影響菌落再生。綜合考慮致死率與正突變范圍后，選擇NTG 濃度0.4 mg/mL，處理時間20 min 進行誘變篩選。

通過NTG誘變篩選得到10株高產菌株，結果見圖4，菌株SD3-3-2、SD3-3-6、SD3-3-8與SD3-3-10的酶活較高，比出發(fā)菌株SD3-3分別提高42.3%、39.5%、47.4%與385%。

2.5 高產菌株的遺傳穩(wěn)定性

將誘變高產菌株進行傳代試驗，結果見圖5，菌株SD3-3-4、SD3-3-6與SD3-3-9傳代8次遺傳穩(wěn)定性仍然較好，其他菌株從第3代開始就回落，傳代6次以上菌株的高產特性基本消失。高產菌株SD3-3-6不僅遺傳穩(wěn)定，且酶活較高，傳代8次后，酶活穩(wěn)定在2 327.18 U/mL，是1株具備生產潛力的高產菌株。

3 結論

紫外與亞硝基胍誘變技術是傳統(tǒng)誘變育種技術，具有快速、安全、有效、操作簡便、正突變率高等優(yōu)點，已被廣泛用于微生物誘變育種[23-24]。采用多種誘變劑交替的復合誘變通常比單一誘變劑處理能取得更好的結果，如彭鈺媛等[25]選用NTG 和紫外處理蠟樣芽孢桿菌（ Bacillus cereus ）獲得了解鉀能力提高了63.64%的誘變菌株。錢娟娟等[26]利用ARTP-亞硝基胍（NTG）復合誘變方法對中性蛋白酶出發(fā)菌株進行復合誘變，選育出1株酶活較出發(fā)菌株提高90%左右的高產菌株。

筆者通過對SD3菌株進行氯化鋰-紫外和NTG復合誘變，酪蛋白平板初篩，液態(tài)發(fā)酵復篩，從大量突變株中篩選到1株穩(wěn)定、高產納豆激酶的突變菌株SD3-3-6，其產酶能力從最初的1 203.56 U/mL提高到2 327.18 U/mL，提高了193倍。連續(xù)培養(yǎng)8代均維持較高的酶活水平，說明該突變菌株遺傳性穩(wěn)定，是1株具有應用前景的高產菌株，同時也說明氯化鋰-紫外和NTG復合誘變是一種針對納豆激酶產生菌株有效的誘變技術。

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