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        羅漢果多糖的羧甲基化修飾及抗氧化性能影響研究

        2021-09-01 03:49:32白家峰姚延超劉紹華劉啟斌邢雨晴楊雯靜許春平
        湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2021年15期
        關(guān)鍵詞:羅漢果羧甲基分子量

        白家峰,姚延超,鄭 毅,劉紹華,劉啟斌,周 奕,邢雨晴,楊雯靜,許春平

        (1.廣西中煙工業(yè)有限責(zé)任公司技術(shù)中心,南寧 530001;2.鄭州輕工業(yè)大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,鄭州 450002;3.廣西真龍實(shí)業(yè)有限責(zé)任公司技術(shù)中心,廣西 賀州 542600)

        羅漢果(Siraitia grosvenorii)是中國(guó)特有的多年生葫蘆科攀援植物,含有豐富的維生素C、葡萄糖等人體所需功能成分,被衛(wèi)生部認(rèn)證為藥食兩用的中藥材,有止咳、潤(rùn)喉的作用,又被譽(yù)為“神仙果”[1]。目前對(duì)羅漢果多糖的研究主要集中在抗氧化、降血糖、抗腫瘤活性以及藥理方面的研究[2-7],但是對(duì)羅漢果多糖進(jìn)行羧甲基化修飾以及羧甲基化產(chǎn)物的抗氧化性能的研究較少。

        自由基是一類非?;钴S的化學(xué)物質(zhì),是帶有不成對(duì)(奇數(shù))電子的原子、原子團(tuán)、分子和離子。人體內(nèi)自由基的增多會(huì)導(dǎo)致免疫功能出現(xiàn)障礙,長(zhǎng)時(shí)間可引發(fā)炎癥并加劇衰老[8]。Chen等[9]采用熱水浸提法制備苦瓜多糖,并制備羧甲基化苦瓜多糖(CMP),通過(guò)對(duì)苦瓜多糖和羧甲基化苦瓜多糖的抗氧化性測(cè)試,證明羧甲基化修飾能明顯地提高苦瓜多糖的抗氧化性。趙鵬等[10]通過(guò)響應(yīng)面分析法優(yōu)化了羧甲基化倒卵葉五加多糖的合成工藝,優(yōu)化工藝后得到的羧甲基化倒卵葉五加多糖相比于倒卵葉五加多糖抗氧化活性有了明顯地改善。

        本研究選取廣西的羅漢果為研究對(duì)象,通過(guò)酶解法提取羅漢果多糖,并對(duì)提取的羅漢果多糖進(jìn)行羧甲基化修飾,同時(shí)研究其清除自由基的能力,為今后羅漢果多糖在保健食品中的應(yīng)用與開發(fā)提供理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 試劑、材料與儀器

        材料:羅漢果(產(chǎn)自廣西)。

        試劑:乙酸乙酯、氫氧化鈉、甲醇、水楊酸、冰乙酸、正丁醇、異丙醇、丙二醇吡啶、氯仿、三氟乙酸、纖維素酶、果膠酶、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼、30%過(guò)氧化氫均為國(guó)產(chǎn)分析純。

        主要儀器:SCIENTZ-10N冷凍干燥機(jī),寧波新芝生物科技股份有限公司;DGX-9143電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;永磁直流電動(dòng)攪拌器,上海梅穎浦儀器儀表制造有限公司;Nicolet5700型傅里葉變換紅外光譜儀,F(xiàn)ourier transformInfrared spectrometer FTIR,美國(guó)布魯克海文儀器公司;UV-17001C紫外分光光度計(jì),上海鳳凰光學(xué)科儀有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 羅漢果多糖的提取 使用酶解法提取羅漢果多糖[11]。將羅漢果干燥并粉碎,乙酸乙酯加熱回流脫脂2 h。烘干后稱取脫脂羅漢果粗粉200 g,加入4 000 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.9%的氯化鈉溶液浸提3 h。靜置后,收集沉淀。加入4 000 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.1%纖維素酶和0.25%果膠酶的水溶液浸提12 h,離心(4 000 r/min,15 min),收集上清液,加入Sevage試劑(V氯仿∶V正丁醇=4∶1)脫蛋白[12,13],攪拌0.5 h,離心后收集上清液,重復(fù)操作3次。分離出上清液,使用過(guò)氧化氫除去色素。將所得上清液在60℃下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),濃縮后加入3倍上清液體積的無(wú)水乙醇,沉降2 h,離心取沉淀,加水至溶解。將所得溶液進(jìn)行濃縮,冷凍干燥得到精制羅漢果多糖。

        1.2.2 羧甲基化修飾 使用李霞等[14]的方法并加以改進(jìn),取羅漢果多糖200 mg,溶于25 mL異丙醇,攪拌下加入20%氫氧化鈉10 mL堿化處理3 h。將2.63 g氯乙酸溶于25 mL的異丙醇,再加入20%氫氧化鈉溶液10 mL,充分?jǐn)嚢瑁徛渭右话牖旌弦河诜磻?yīng)液中,攪拌3 h。升溫至60℃反應(yīng)30 min。滴加另一半混合液于反應(yīng)液中,在60℃下反應(yīng)1 h。用0.5 mol/L CH3COOH溶液調(diào)節(jié)反應(yīng)液至pH 7。透析5 d,濃縮至10 mL,冷凍干燥得到羧甲基化的羅漢果多糖。

        1.2.3 羧甲基化取代度的測(cè)定 精確稱取10 mg羧甲基化羅漢果多糖樣品,放入烘箱中干燥1~2 h,加入體積分?jǐn)?shù)為70%的乙醇3 mL,混合后放置5 min。依次加入10 mL蒸餾水,50 mL 0.5 mol/L的NaOH溶液,混合攪拌至多糖樣品溶解。然后用0.1 mol/L的HCl滴定,以酚酞為指示劑,至紅色褪去,計(jì)算每克羧甲基多糖所需HCl的用量A[15]。

        式中,V0代表加入的NaOH的體積,mL;V2代表測(cè)定消耗的HCl的體積,mL;V1代表空白測(cè)定所消耗HCl的體積;M0代表加入的NaOH濃度;M代表HCl的濃度;W為樣品的質(zhì)量,g。羧甲基取代度(DS)計(jì)算公式如下。

        1.2.4 單糖組成分析 稱取20 mg羅漢果多糖,溶于15 mL 2 mol/L的三氟乙酸,121℃油浴水解。將所得溶液旋干,然后加入2 mL甲醇,再次蒸干,重復(fù)3次。加入2 mL吡啶,0.2 mL衍生試劑BSTFA∶TMCS(99∶1),80℃加熱4 h。過(guò)0.45 mm濾膜,利用GC-MS法檢測(cè)各單糖成分。

        色譜條件:HP-5MS型彈性石英毛細(xì)管柱(30.0 m×250μm×0.25μm);載氣氦氣;流速1 mL/min,溶劑延遲10 min;進(jìn)樣方式為分流比5∶1;進(jìn)樣口溫度250℃,進(jìn)樣量1μL。程序升溫為初始溫度50℃,保持2 min,然后以4℃/min的速率升至240℃,并保持5 min。

        質(zhì)譜條件:EI源,電子能量70 eV,離子源溫度230℃,四級(jí)桿溫度150℃,質(zhì)量掃描范圍30~550 AMU,傳輸線溫度240℃,對(duì)采集到的質(zhì)譜圖用NIST11譜庫(kù)進(jìn)行檢索。比較標(biāo)準(zhǔn)單糖與樣品保留時(shí)間,確定單糖組成。

        1.2.5 紅外光譜分析 稱取2~3 mg精制羅漢果多糖和羧甲基化羅漢果多糖,加入KBr粉末,磨細(xì)之后壓片,使用傅立葉變換紅外光譜儀,在4 000~400cm-1內(nèi)掃描紅外吸收值。

        1.2.6 SEC/MALLS/RI分析 體積色譜(SEC)—示差檢測(cè)(RI)—多角度激光光散射(MALLS)聯(lián)用技術(shù)兼具了色譜法和光散射法的特點(diǎn),光散射儀可從多個(gè)不同角度對(duì)散射光進(jìn)行檢測(cè),同時(shí)能快速、準(zhǔn)確地測(cè)定出高分子的重均分子量(Mw)、數(shù)均分子量(Mn)、粘分子量、分子量分布等,而且準(zhǔn)確性和重現(xiàn)性很好[16]。稱取20 mg羅漢果多糖加入到5 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.9%的氯化鈉溶液,80℃攪拌至完全溶解。流動(dòng)相為0.2%NaNO3和0.02%NaN3,測(cè)試溫度25℃,進(jìn)樣量100μL,流速為0.4 mL/min。用Astra軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)采集和分析。

        1.2.7 1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基清除率測(cè)定 1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)是在含有自由基的化學(xué)反應(yīng)中作為一種監(jiān)測(cè)反應(yīng)的物質(zhì),常用于抗氧化成分的體外抗氧化性評(píng)價(jià)。分別配置濃度為0.2、0.4、0.6、0.8、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10 mg/L的多糖母液于具塞試管中。設(shè)置5個(gè)測(cè)試組,2兩個(gè)樣品組分別對(duì)應(yīng)羅漢果多糖和羧甲基化多糖,1個(gè)對(duì)照組和2個(gè)空白組來(lái)避免樣品本身吸光度的影響。樣品組為3.5 mL 0.1 g/L的DPPH的50%乙醇溶液+0.5 mL樣品溶液;對(duì)照組為3.5 mL 0.1 g/L的DPPH的50%乙醇溶液+0.5 mL蒸餾水;空白組為3.5 mL無(wú)水乙醇+0.5 mL樣品溶液。將不同質(zhì)量濃度的多糖樣品對(duì)應(yīng)的3組溶液分別加入10 mL具塞試管中,充分混勻,避光靜置30 min,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,依次標(biāo)記為A2、A0、A1。計(jì)算羅漢果多糖及其羧甲基化羅漢果多糖對(duì)DPPH·的清除率E[17]。

        式中,A0為對(duì)照組吸光度;A1為空白組吸光度;A2為樣品組吸光度。

        1.2.8 羥基自由基清除率的測(cè)定 分別配置質(zhì)量濃度為0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mol/L的羅漢果多糖溶液和羧甲基化羅漢果多糖溶液于具塞試管中,設(shè)置5個(gè)測(cè)試組,2個(gè)樣品組分別對(duì)應(yīng)羅漢果多糖和羧甲基化多糖,1個(gè)空白組,2個(gè)對(duì)照組來(lái)避免樣品本身吸光度的影響。樣品組為樣品溶液1 mL依次加入9 mmol/L FeSO4溶液1 mL、9 mmol/L的水楊酸-乙醇溶液1 mL、8.8 mmol/L的H2O2溶液1 mL,充分混勻后37℃水浴30 min[18];空白組則為用蒸餾水代替樣品溶液再分別加入FeSO4溶液、水楊酸-乙醇溶液和H2O2溶液,對(duì)照組則為1 mL樣品溶液加入3 mL無(wú)水乙醇溶液,計(jì)算對(duì)羥基自由基的清除率,計(jì)算公式如下。

        式中,A1為樣品組吸光度;A0為空白組吸光度;A2為對(duì)照組吸光度。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 SEC/MALLS/RI分析結(jié)果

        體積色譜(SEC)—示差檢測(cè)(RI)—多角度激光光散射(MALLS)串聯(lián)是檢測(cè)生物大分子分子量最有效、最簡(jiǎn)便的方法之一,適用于檢測(cè)多糖等大分子結(jié)構(gòu)。本試驗(yàn)采用靜態(tài)光散射得到羅漢果多糖在氯化鈉溶液中的重均分子量Mw為5.369×104g/mol,數(shù)均分子量Mn為3.597×104g/mol,均方根旋轉(zhuǎn)半徑Rw為25.2 nm,多分散系數(shù)Mw/Mn用于說(shuō)明聚合物的寬度(如多糖)分子量分布,Mw/Mn的值越大,分子量分布越寬。羅漢果多糖的多分散系數(shù)為1.493,說(shuō)明提取出來(lái)的羅漢果多糖在水溶液中容易聚集,溶解度較小。

        2.2 紅外光譜分析結(jié)果

        羅漢果多糖的紅外光譜見圖1,說(shuō)明羅漢果多糖具有多糖類的紅外特征吸收峰,3 267 cm-1為O-H的伸縮振動(dòng)吸收峰,2 917 cm-1為C-H的伸縮振動(dòng)吸收峰,1 591 cm-1為C-O伸縮振動(dòng)吸收峰,1 412 cm-1為C-H彎曲振動(dòng)吸峰,1 014 cm-1為糖環(huán)醚鍵C-OC的不對(duì)稱伸縮振動(dòng)吸收峰,構(gòu)成了糖類特征吸收峰。

        圖1 羅漢果多糖和羧甲基化羅漢果多糖的紅外光譜

        羧甲基化羅漢果多糖的紅外光譜見圖1,3 304 cm-1為O-H的伸縮振動(dòng)吸收峰,2 945 cm-1為C-H的伸縮振動(dòng)吸收峰,1 100 cm-1為糖環(huán)中C-O-C的伸縮振動(dòng)吸收峰,說(shuō)明羧甲基化羅漢果多糖具有多糖類物質(zhì)的特征吸收峰,對(duì)比羧甲基羅漢果多糖與羅漢果多糖的紅外光譜可發(fā)現(xiàn),羧甲基羅漢果多糖1 402 cm-1和1 602 cm-1處分別出現(xiàn)羧酸鹽的對(duì)稱伸縮振動(dòng)吸收與反對(duì)稱振動(dòng)吸收峰。由此表明,反應(yīng)實(shí)現(xiàn)了羅漢果多糖的羧甲基化修飾[19]。

        2.3 單糖組成分析結(jié)果

        通過(guò)酶解法提取多糖,提取率為3.64%,并使用氧化鈉-氯乙酸法對(duì)羅漢果多糖進(jìn)行了羧甲基化修飾,羧甲基化取代度為0.41。羅漢果多糖衍生化產(chǎn)物的總離子流見圖2,與標(biāo)準(zhǔn)譜庫(kù)對(duì)比,羅漢果多糖主要由呋喃糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖、木糖、半乳糖等6種中性糖以及半乳糖醛酸和葡萄糖醛酸等酸性成分組成,結(jié)合面積歸一法分析可得羅漢果多糖的單糖組分如表1所示。

        圖2 羅漢果多糖衍生化產(chǎn)物總離子流

        表1 羅漢果多糖單糖組成

        2.4 DPPH自由基清除活性

        羅漢果多糖及其羧甲基化產(chǎn)物清除DPPH結(jié)果如圖3所示。由圖3可以看出,羅漢果多糖及其羧甲基化產(chǎn)物都具有清除DPPH的活性,在0~7 mg/mL內(nèi)羅漢果多糖及其羧甲基化產(chǎn)物的DPPH清除率隨濃度提高而快速增加,羧甲基化羅漢果多糖的DPPH清除率大于羅漢果多糖。在濃度為5 mg/mL時(shí),通過(guò)計(jì)算得到羅漢果多糖和羧甲基化羅漢果多糖的P為0.002 36,為極顯著;當(dāng)濃度為10 mg/mL時(shí)P為0.041,小于0.05。羧甲基化羅漢果多糖DPPH清除能力相較于羅漢果多糖有顯著提高。

        圖3 羅漢果多糖及羧甲基化羅漢果多糖清除DPPH測(cè)定結(jié)果

        2.5 羥基自由基(·OH)清除活性

        羅漢果多糖及其羧甲基化產(chǎn)物對(duì)羥基自由基(·OH)的清除作用如圖4所示。由圖4可知,羅漢果多糖及其羧甲基化產(chǎn)物均對(duì)Fenton反應(yīng)產(chǎn)生的羥基自由基有清除作用,且隨濃度的增加清除率逐漸升高。在濃度達(dá)到1.0 mg/mL時(shí),羧甲基化羅漢果多糖對(duì)羥基自由基的清除率達(dá)到33.68%,羅漢果多糖的清除率達(dá)到31.33%,經(jīng)過(guò)計(jì)算可知P為0.036,小于0.05。羧甲基化羅漢果多糖清除羥基自由基能力相對(duì)于羅漢果多糖有顯著提高。在低濃度范圍內(nèi),羧甲基化羅漢果多糖表現(xiàn)出較強(qiáng)的清除活性。

        圖4 羅漢果多糖及羧甲基化羅漢果多糖清除羥基自由基測(cè)定結(jié)果

        3 結(jié)論

        采用酶解法提取羅漢果多糖,多糖提取率3.64%,并使用氧化鈉-氯乙酸法對(duì)羅漢果多糖進(jìn)行了羧甲基化修飾,羧甲基化取代度為0.41。使用GC/MS技術(shù)分析羅漢果多糖單糖組分,發(fā)現(xiàn)羅漢果多糖主要由呋喃糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖、木糖、半乳糖等6種中性糖以及半乳糖醛酸和葡萄糖醛酸等酸性成分組成。紅外光譜表征顯示,羅漢果多糖已成功進(jìn)行羧甲基化修飾。通過(guò)SEC/MALLS/RI分析得到羅漢果多糖的重均分子量Mw為5.369×104g/mol,數(shù)均分子量Mn為3.597×104g/mol,均方根旋轉(zhuǎn)半徑Rw為25.2 nm,多分散系數(shù)Mw/Mn為1.493。

        通過(guò)DPPH清除測(cè)定和羥基自由基清除測(cè)定,在相同質(zhì)量濃度下羧甲基化羅漢果多糖抗氧化活性比羅漢果多糖要強(qiáng),多糖在羧甲基化過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生一些多糖的衍生物,這些衍生物的抗氧化基團(tuán)更容易與自由基結(jié)合,從而產(chǎn)生更好的清除效果,另外多糖在羧甲基化過(guò)程中還會(huì)產(chǎn)生三股螺旋結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)無(wú)規(guī)則線團(tuán)分布,已經(jīng)有文獻(xiàn)證明無(wú)規(guī)則線團(tuán)分布的抗氧化性強(qiáng)于其他組分[20]。可見羧甲基化修飾能夠改變羅漢果多糖的生物活性,提高羅漢果多糖的抗氧化性能,為羅漢果多糖和羧甲基化羅漢果多糖在食品保健中的應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。

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