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        IL-18通過下調(diào)CXCL9/CXCL10募集腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞促進(jìn)口腔鱗癌病灶轉(zhuǎn)移

        2021-08-23 01:52:38曾華興肖才文江漢大學(xué)附屬醫(yī)院武漢市第六醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科武漢430056
        中國(guó)免疫學(xué)雜志 2021年10期
        關(guān)鍵詞:細(xì)胞系結(jié)果顯示孵育

        周 衛(wèi) 曾華興 肖才文(江漢大學(xué)附屬醫(yī)院,武漢市第六醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科,武漢430056)

        口腔鱗狀細(xì)胞癌(oral squamous cell carcinoma,OSCC)是一種臨床常見口腔惡性腫瘤,85%頭頸癌主要發(fā)生于口腔[1]。目前口腔相關(guān)腫瘤是頭頸部癌癥患者死亡的主要原因[2]。OSCC發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,由多因素導(dǎo)致,腫瘤微環(huán)境中的腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞(tumor-associated macrophages,TAMs)是近年研究熱點(diǎn)。

        腫瘤微環(huán)境是腫瘤細(xì)胞賴以生存的的重要環(huán)境,由多種細(xì)胞外基質(zhì)和基質(zhì)細(xì)胞組成。TAMs是浸潤(rùn)于腫瘤組織中的巨噬細(xì)胞,是腫瘤微環(huán)境中存在數(shù)量最多的免疫細(xì)胞,對(duì)腫瘤發(fā)生發(fā)展起促進(jìn)作用。OSCC增殖、轉(zhuǎn)移和侵襲過程與TAMs密切相關(guān)[3]。但浸潤(rùn)巨噬細(xì)胞對(duì)OSCC增殖、轉(zhuǎn)移和侵襲過程的調(diào)控作用及機(jī)制尚未明確。研究表明,巨噬細(xì)胞來源的IL-6可誘導(dǎo)GSK3b磷酸化以穩(wěn)定β-catenin增強(qiáng)T細(xì)胞因子(TCF)依賴性基因激活腫瘤細(xì)胞,也可增強(qiáng)炎癥反應(yīng)促進(jìn)肝細(xì)胞肝癌通過激活STAT3及其下游抗凋亡促增殖基因表達(dá)。CXCL(C-X-C motif chemokine ligand)是一類與細(xì)胞相關(guān)的趨化因子,可結(jié)合并激活CXC趨化因子受體2(CXCR2)活化PI3K信號(hào)通路,從而介導(dǎo)上皮細(xì)胞間質(zhì)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)發(fā)生[4-5]。CXCL9和CXCL10在多種腫瘤增殖、轉(zhuǎn)移及侵襲等過程中起重要作用[6-10]。IL-18是一種新發(fā)現(xiàn)的細(xì)胞因子,其生物學(xué)功能尚未明確。研究顯示,IL-18可抑制Th17細(xì)胞產(chǎn)生IL-17和IL-22等炎癥介質(zhì),發(fā)揮抑炎作用[11-14]。但I(xiàn)L-18在OSCC中的作用鮮有報(bào)道。本研究探討IL-18在OSCC患者腫瘤組織中的表達(dá)水平,以及TAMs在OSCC肺轉(zhuǎn)移病灶形成過程中的作用。

        1 資料與方法

        1.1 資料

        1.1.1 研究對(duì)象 選取2015年1月至2017年12月我院收治的38例OSCC患者,其中男性27例,女性11例,年齡27~72歲,平均年齡(47.3±12.6)歲,經(jīng)病理科診斷證實(shí)為OSCC。另選取47例同期在我院體檢中心體檢的健康志愿者作為對(duì)照,其中男性31例,女性16例,年齡19~78歲,平均年齡(48.7±16.3)歲。兩組研究對(duì)象年齡、性別等基本資料差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,表1)。所有患者知情同意,研究經(jīng)我院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。

        表1 一般臨床資料[±s,例(%)]Tab.1 General clinical information[±s,n(%)]

        表1 一般臨床資料[±s,例(%)]Tab.1 General clinical information[±s,n(%)]

        Items Age Male Female OSCC 47.3±12.6 27(71)11(29)Normal 48.7±16.3 31(66)16(34)P 0.654 0.743 0.632

        1.1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與細(xì)胞 裸鼠由北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司提供;Tac8113細(xì)胞購(gòu)自美國(guó)ATCC公司;Tac8113-IL-8細(xì)胞系由上海吉?jiǎng)P公司轉(zhuǎn)染。

        1.1.3 主要試劑與儀器 人IL-18、CXCL9、CXCL10、CSF-1和CCL-2 ELISA試劑盒、RNA提取、反轉(zhuǎn)錄試劑盒、Realtime-PCR試劑(美國(guó)羅氏公司);IL-18、CXCL9、CXCL10抗體、AKT、P-AKT、mTOR和P-mTOR抗體(Abcam公司);β-actin抗體(西安壯志公司);SDS-PAGE試劑(上海碧云天);CXCL9、CXCL10、CSF-1和CCL-2引物(上海吉?jiǎng)P);DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)(美國(guó)Gibco公司);青鏈霉素(美國(guó)Sigma公司);化學(xué)發(fā)光儀(ChemiScope 3600 Mini,上海勤翔公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 裸鼠肺轉(zhuǎn)移模型建立 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期Tac8113與Tac8113-IL-8細(xì)胞,胰酶消化,1 000 r/min離心,PBS重懸,調(diào)整細(xì)胞密度為1×107個(gè)/ml,經(jīng)小鼠尾靜脈注射(1×106個(gè)/只),建立Tac8113與Tac8113-IL-8細(xì)胞肺轉(zhuǎn)移模型。

        1.2.2 ELISA檢測(cè)血清IL-18表達(dá) 采集OSCC患者及健康志愿者靜脈血,低溫離心,取上清,按照ELISA試劑盒說明書檢測(cè)上清IL-18含量。

        1.2.3 免疫組化染色 取OSCC患者術(shù)后腫瘤組織及癌旁組織,經(jīng)病理科處理后,石蠟切片脫蠟和水化,修復(fù)抗原,滴加封閉液,加入一抗,PBS沖洗,滴加生物素標(biāo)記的二抗,PBS沖洗。滴加鏈親和素-過氧化酶溶液孵育。DAB顯色,蘇木素復(fù)染,中性樹膠封固,以PBS緩沖液代替一抗作為陰性對(duì)照,陽性細(xì)胞漿著色為棕黃色。

        1.2.4 qRT-PCR 取裸鼠肺組織液氮冷凍,碾磨,按照試劑盒說明書提取總RNA,取1μg RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,進(jìn)行PCR反應(yīng)。設(shè)計(jì)CXCL9、CXCL10、CSF-1、CCL-2和β-actin上下游引物,PCR循環(huán)條件:95℃預(yù)變性30 s,95℃5 s,60℃30 s,共40個(gè)循環(huán)。

        1.2.5 Western blot 調(diào)整細(xì)胞密度為1×106個(gè)/ml,接種至6孔板,設(shè)3個(gè)復(fù)孔,48 h后細(xì)胞貼壁,取出6孔板,棄上清,PBS清洗1 min,加入含有蛋白酶抑制劑的裂解液并吹打細(xì)胞團(tuán),冰上裂解30 min,刮下細(xì)胞轉(zhuǎn)移至1.5 ml試管,高速離心,抽取上清(提取的蛋白)。取小鼠肺組織液氮冷凍,碾磨,裂解液裂解,低溫離心取上清(組織蛋白)。BCA蛋白定量試劑盒進(jìn)行蛋白定量,加入上樣緩沖液,煮沸5 min,-80℃保存。SDS-PACE電泳,轉(zhuǎn)膜,脫脂奶粉封閉,PBST清洗,裁剪條帶并分別加入相應(yīng)抗體(1∶1 000)室溫孵育1 h,4℃孵育過夜。次日反復(fù)清洗條帶,加入二抗室溫孵育90 min,PBS沖洗,ECL發(fā)光,化學(xué)發(fā)光儀檢測(cè)并拍照。

        1.2.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)腫瘤原代細(xì)胞 取小鼠肺部腫瘤組織,無菌條件下除去脂肪和結(jié)締組織等,PBS清洗3次,放入無菌培養(yǎng)皿,加入少量DMEM培養(yǎng)液,剪成1 mm3組織碎塊,PBS清洗3次,轉(zhuǎn)入15 ml培養(yǎng)瓶,加入膠原酶和雙抗,37℃恒溫?fù)u床消化組織至光鏡下呈絮狀,離心棄上清,加入PBS反復(fù)吹打,離心棄上清,加入DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng),鏡下可見貼壁腫瘤細(xì)胞,繼續(xù)培養(yǎng)至80%融合,胰蛋白酶消化細(xì)胞,制備細(xì)胞懸液,70μm濾膜過濾,加入CD11b和F4/80(TAMs標(biāo)志物)抗體孵育,加入含0.1%BSA的預(yù)冷PBS 4℃孵育60 min,0.1%BSA的預(yù)冷PBS沖洗2次,1%多聚甲醛固定,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS18.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料以±s表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 患者血清IL-18及OSCC腫瘤組織和癌旁組織IL-18表達(dá) ELISA結(jié)果顯示,OSCC患者血清IL-18水平[(81.2±11.6)pg/ml]顯著高于健康志愿者[(23.8±3.5)pg/ml](P<0.05)。免 疫 組 化 和Western blot結(jié)果顯示,OSCC腫瘤組織中IL-18表達(dá)顯著高于癌旁組織(P<0.05,圖1)。

        圖1 患者血清IL-18及OSCC腫瘤組織和癌旁組織IL-18表達(dá)Fig.1 IL-18 expressions in serum,tumor tissues and paracancerous tissues of patients

        2.2 Tac8113-IL-18細(xì)胞系和裸鼠肺轉(zhuǎn)移模型構(gòu)建結(jié)果 慢病毒轉(zhuǎn)染OSCC細(xì)胞系Tac8113,Western blot檢測(cè)IL-18表達(dá),結(jié)果顯示,Tac8113-IL-18細(xì)胞IL-18表達(dá)明顯高于Tac8113細(xì)胞(P<0.05)。裸鼠尾靜脈注射Tac8113與Tac8113-IL-18細(xì)胞45 d后建模成功,脫頸處死裸鼠,取完整肺組織拍照保存[7],結(jié)果顯示,Tac8113-IL-18細(xì)胞在小鼠肺部形成的轉(zhuǎn)移病灶數(shù)顯著多于Tac8113細(xì)胞(P<0.05,圖2)。

        圖2 Tac8113-IL-18細(xì)胞系和裸鼠肺轉(zhuǎn)移模型構(gòu)建Fig.2 Construction of TAC8113-IL-18 cell line and lung metastasis model in nude mice

        2.3 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)CD11b和F4/80陽性(TAMs標(biāo)志物)表達(dá)細(xì)胞 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)2組裸鼠肺部腫瘤組織體外培養(yǎng)細(xì)胞,結(jié)果顯示,Tac8113-IL-18組腫TAMs數(shù)明顯多于Tac8113組(P<0.05,圖3)。

        圖3 Tac8113與Tac8113-IL-18細(xì)胞TAMs分布情況Fig.3 Distribution of TAMs in Tac8113 and Tac8113-IL-18 cells

        2.4 ELISA檢測(cè)裸鼠血清CXCL9、CXCL10、CSF-1和CCL-2表達(dá) Tca8113-IL-18組小鼠血清CXCL9和CXCL10表達(dá)明顯低于Tca8113組,而CSF-1和CCL-2表達(dá)明顯升高(P<0.05,圖4)。

        圖4 血清CXCL9和CXCL10及CSF-1和CCL-2表達(dá)Fig.4 Expressions of CXCL9,CXCL10,CSF-1 and CCL-2 in serum

        2.5 qRT-PCR檢測(cè)裸鼠腫瘤組織CXCL9、CXCL10、CSF-1和CCL-2表達(dá) Tca8113-IL-18組小鼠腫瘤組織中CXCL9和CXCL10表達(dá)明顯低于Tca8113組,而CSF-1和CCL-2表達(dá)明顯增加(P<0.05,圖5)。

        圖5 裸鼠腫瘤組織中CXCL 9、CXCL10、CSF-1和CCL-2表達(dá)Fig.5 Expressionsof CXCL9,CXCL10,CSF-1and CCL-2 in nudemousetumor tissues

        2.6 Western blot檢測(cè)2組細(xì)胞系和裸鼠腫瘤組織CXCL9、CXCL10、AKT、P-AKT、mTOR和P-mTOR表達(dá) Tca8113-IL-18組小鼠腫瘤組織和細(xì)胞系中CXCL9、CXCL10表達(dá)降低,而P-AKT和P-mTOR表達(dá)升高(P<0.05,圖6)。

        圖6 在細(xì)胞系和腫瘤組織中CXCL9、CXCL10、P-AKT和P-mTOR表達(dá)Fig.6 CXCL9,CXCL10,P-AKT and P-mTOR expressions in cell lines and tumor tissues

        3 討論

        口腔癌是頭頸部常見腫瘤,以鱗狀細(xì)胞癌為高發(fā),發(fā)病年齡呈年輕化,當(dāng)發(fā)生舌鱗狀細(xì)胞癌時(shí),其診斷與治療更加棘手[15]。腫瘤微環(huán)境對(duì)腫瘤生長(zhǎng)起重要作用,研究表明,無論是體外還是體內(nèi),腫瘤微環(huán)境均可為腫瘤增殖和轉(zhuǎn)移等惡性生物學(xué)行為提供有利環(huán)境,促進(jìn)腫瘤發(fā)生發(fā)展[16]。巨噬細(xì)胞存在于腫瘤微環(huán)境,但其對(duì)腫瘤細(xì)胞,尤其是OSCC增殖調(diào)控作用如何,以及受何種因素調(diào)控尚未明確。研究表明,巨噬細(xì)胞來源的IL-6可誘導(dǎo)GSK3b磷酸化以穩(wěn)定β-catenin增強(qiáng)T細(xì)胞因子(TCF)依賴性基因激活腫瘤細(xì)胞[4]。IL-6也可增強(qiáng)炎癥反應(yīng)促進(jìn)肝細(xì)胞肝癌激活A(yù)KT及其下游抗凋亡促增殖基因。IL-18是一種新發(fā)現(xiàn)的細(xì)胞因子,其生物學(xué)功能尚未明確[17]。IL-18可通過p53激活NF-kB信號(hào)通路影響巨噬細(xì)胞作用[18-19]。但I(xiàn)L-18在OSCC中的作用鮮有報(bào)道。CXCL9和CXCL10作為CXC家族成員,在體內(nèi)起抑制腫瘤作用,CXCL9和CXCL10聚集的組織中,TAMs分布較少。

        本研究探討IL-18在OSCC中的作用,臨床數(shù)據(jù)顯示,OSCC患者血清中IL-18含量遠(yuǎn)高于健康志愿者,說明IL-18對(duì)OSCC發(fā)生發(fā)展起促進(jìn)作用。OSCC患者腫瘤組織和癌旁組織分析結(jié)果顯示,CXCL9和CXCL10在癌旁組織的分布明顯高于腫瘤組織,提示CXCL9和CXCL10是OSCC的抑癌基因。裸鼠肺組織轉(zhuǎn)移模型中,ELISA、qRT-PCR、Western blot結(jié)果顯示,CXCL9和CXCL10在Tca8113-IL-18裸鼠腫瘤組織中表達(dá)較低,說明IL-18可下調(diào)CXCL9和CXCL10表達(dá)。為驗(yàn)證TAMs在OSCC組織中的作用,課題組檢測(cè)TAMs標(biāo)志物CD11b+F4/80結(jié)果顯示,Tca8113-IL-18裸鼠腫瘤組織中TAMs數(shù)明顯多于Tca8113組,說明IL-18可增強(qiáng)TAMs在腫瘤組織中的侵潤(rùn)作用。為驗(yàn)證CXCL9和CXCL10和TAMs的作用,課題組檢測(cè)TAMs分泌因子CSF-1和CCL-2表達(dá)結(jié)果顯示,腫瘤組織中CXCL9和CXCL10表達(dá)降低的同時(shí)CSF-1和CCL-2表達(dá)增高,提示CXCL9和CXCL10下調(diào)可促進(jìn)TAMs功能。PI3K/AKT/mTOR信號(hào)通路在CXCL1與IL-8促腫瘤轉(zhuǎn)移中發(fā)揮關(guān)鍵作用,Western blot結(jié)果顯示,無論是在IL-18高表達(dá)細(xì)胞系還是腫瘤組織中,P-AKT和P-mTOR表達(dá)均明顯增加,說明IL-18可能激活腫瘤組織中PI3K/AKT/mTOR信號(hào)通路,從而促進(jìn)OSCC增殖及肺部轉(zhuǎn)移。

        綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)在OSCC中,IL-18可能通過激活PI3K/AKT/mTOR信號(hào)通路下調(diào)CXCL9、CXCL10表達(dá),從而募集TAMs促進(jìn)OSCC肺部轉(zhuǎn)移病灶形成,為OSCC治理提供新的靶點(diǎn)和治療方案。

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