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        外周血樹突狀細胞Tim-3蛋白、CD80、CD86表達與骨髓增生異常綜合征預后的相關(guān)性

        2021-08-18 09:09:06余娟嚴曉琴鄒夏華芳
        疑難病雜志 2021年8期
        關(guān)鍵詞:骨髓外周血紅細胞

        余娟,嚴曉琴,鄒夏,華芳

        骨髓增生異常綜合征(myelodysplastic syndrome,MDS)是一種或多種血細胞類型發(fā)育不良,以及骨髓譜系中細胞減少和功能異常的疾病[1]。樹突狀細胞(dendritic cell,DC)可提供淋巴細胞活化、增殖的信號,在自身免疫監(jiān)控、體液免疫應答中發(fā)揮重要作用[2]。T細胞免疫球蛋白黏蛋白分子-3(T cell immunoglobulin mucin-3,Tim-3)是一種由淋巴細胞亞型輔助性T細胞1(helper T cell 1,Th1)、Th17、自然殺傷(natural killer,NK)細胞及髓系細胞表達的Ⅰ型跨膜蛋白[3]?,F(xiàn)檢測MDS患者外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cells,PBMC)誘導成熟的DC細胞Tim-3、CD80、CD86表達水平,分析其與MDS患者預后的相關(guān)性,以期為臨床防治MDS提供參考,報道如下。

        1 資料與方法

        1.1 臨床資料 選取2015年11月—2017年11月于四川大學華西醫(yī)院血液內(nèi)科就診的MDS患者104例作為研究對象(觀察組),男59例,女45例,年齡53~76(61.17±7.35)歲;病程2.15~8.01(5.32±2.64)年;合并癥:糖尿病22例,慢性心力衰竭15例,肺炎19例;有家族遺傳病史32例,既往均無治療史。根據(jù)2016年世界衛(wèi)生組織公布的MDS分型標準[4]進行分型:難治性貧血患者9例,難治性貧血伴環(huán)形鐵粒幼紅細胞增多患者13例,難治性貧血伴原始細胞增多Ⅰ型患者43例,難治性貧血伴原始細胞增多Ⅱ型患者32例,5q-綜合征7例。根據(jù)MDS國際預后評分系統(tǒng)(international prognostic scoring system,IPSS)[5]對104例患者進行預后分組,低危亞組(0分0.05);與健康對照組比較,觀察組環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例、骨髓涂片原始細胞升高,Hb、PLT、RBC水平降低(P<0.01),見表1。本研究獲得醫(yī)院倫理委員會批準(審批號:2015-07-257B),受試者及家屬知情同意并簽署知情同意書。

        表1 2組受試者臨床資料比較

        1.2 病例選擇標準 (1)納入標準:①患者均符合“骨髓增生異常綜合征診斷與治療中國專家共識(2014年版)”診斷標準[6];② MDS患者持續(xù)4個月一系或多系血細胞減少(Hb<110 g/L,中性粒細胞絕對計數(shù)<1.5×109/L);③臨床資料完整者。(2)排除標準:①患有其他可導致血細胞減少和發(fā)育異常的造血及非造血系統(tǒng)疾?。虎诎殡S嚴重肝腎功能不全或衰竭;③患有自身免疫性疾病(系統(tǒng)性紅斑狼瘡、風濕性關(guān)節(jié)炎等);④患有骨轉(zhuǎn)移癌、肝癌、肺癌等腫瘤疾病等患者。

        1.3 檢測指標與方法

        1.3.1 外周血DC細胞培養(yǎng):采集受試者肘靜脈血15 ml并抗凝,緩慢加入預先加有人淋巴細胞分離液(上海聯(lián)邁生物工程有限公司)5 ml的離心管中,室溫下離心,吸取中間層白色細胞至15 ml離心管,加入含20%胎牛血清(FBS,武漢普諾賽生命科技有限公司)的RPMI-1640培養(yǎng)基(武漢普諾賽生命科技有限公司)5 ml,混勻,離心棄上清,加入紅細胞裂解液(上海聯(lián)邁生物工程有限公司)2 ml混勻1~2 min,離心棄上清;加入含10% FBS血清的RPMI-1640重懸計數(shù)鋪板,置于細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)5 h,細胞貼壁后棄去非貼壁細胞,加入含有重組人粒細胞巨噬細胞集落刺激因子(rhGM-CSF,上海江萊生物科技有限公司)20 μg/L和重組人白介素-4(rhIL-4,上海江萊生物科技有限公司)完全培養(yǎng)基20 μg/L培養(yǎng),隔天半量換液,培養(yǎng)至第7 d。用倒置顯微鏡每天觀察細胞生長、形態(tài)及數(shù)量變化情況,并拍照。當看到細胞體積明顯變大,約為單個核細胞的三四倍,大部分細胞發(fā)生脫壁、懸浮,可見伸展的毛刺狀突起,為典型的DC細胞形態(tài)。

        1.3.2 流式細胞儀檢測DC細胞CD80、CD86含量:使用0.5%乙二胺四乙酸消化DC細胞,離心收集細胞,加入流式細胞緩沖液100 μl重懸細胞,加入PE標記抗人-CD11c/CD80抗體(英國Abcam公司)2.5 μl,F(xiàn)ITC標記抗人-MHC-Ⅱ/CD86抗體(英國Abcam公司)2 μl,冰上放置30 min,避光染色,中間混勻1次,加入染色緩存液1 ml,終止染色,離心收集細胞,加入PBS重懸細胞200 μl,過篩網(wǎng)后上流式細胞儀(上海然哲儀器設(shè)備有限公司,型號NovoCyt)檢測,用標記的百分率表示其含量。

        1.3.3 蛋白免疫印跡法檢測Tim-3蛋白表達水平:收集培養(yǎng)的DC細胞,加入細胞裂解液500 μl,冰浴30 min,離心30 min后吸取上清至EP管。用BCA法(試劑盒購自美國賽默飛公司)測定全細胞裂解液蛋白濃度,每孔取40 μg進行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳,一抗(Tim-3、GAPDH,英國Abcam公司)均1∶1 000孵育4℃過夜,羊抗人二抗(英國Abcam公司)1∶10 000室溫孵育2 h,增強化學發(fā)光顯色,以Quantlty One軟件分析其灰度值。

        1.4 隨訪 通過門診復查或打電話的方式對患者進行為期3年的隨訪,隨訪起始時間為收治患者入院之日,隨訪截止時間為患者死亡或到截止日期,記錄患者3年內(nèi)生存率。

        2 結(jié) 果

        2.1 2組外周血PBMC誘導成熟DC細胞比例比較 觀察組外周血PBMC誘導成熟DC細胞的平均比例為(71.56±9.14)%,顯著高于健康對照組的(44.13±7.46)%,差異有統(tǒng)計學意義(t=18.461,P=0.000),見圖1。

        2.2 2組DC細胞中Tim-3蛋白及CD80、CD86比例比較 與健康對照組比較,觀察組外周血PBMC誘導成熟DC細胞中Tim-3蛋白表達水平及CD80、CD86比例均升高(P<0.05),見表2、圖2。

        表2 2組受試者外周血PBMC誘導成熟DC細胞中Tim-3蛋白表達水平及CD80、CD86比例比較

        2.3 各亞組MDS患者DC細胞中Tim-3蛋白及CD80、CD86比例比較 低危亞組、中危亞組、高危亞組DC細胞中Tim-3蛋白表達水平及CD80、CD86比例依次升高(P均<0.01),見表3。

        注:PBMC.外周血單個核細胞;DC.樹突狀細胞;Tim-3.T細胞免疫球蛋白黏蛋白分子-3;GAPDH.3-磷酸甘油醛脫氫酶圖2 2組外周血PBMC誘導成熟DC細胞中Tim-3蛋白表達印跡圖

        表3 各亞組MDS患者外周血PBMC誘導成熟DC細胞中Tim-3蛋白表達水平及CD80、CD86比例比較

        2.4 DC細胞中Tim-3蛋白及CD80、CD86分別與MDS患者骨髓指標相關(guān)性分析 MDS患者DC細胞中Tim-3蛋白分別與環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例、骨髓涂片原始細胞呈正相關(guān)(P<0.05),與PLT、RBC呈負相關(guān)(P<0.05);CD80與環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例、骨髓涂片原始細胞呈正相關(guān)(P<0.01),與PLT呈負相關(guān)(P<0.01);CD86與環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例呈正相關(guān)(P<0.01),見表4。

        表4 DC細胞中Tim-3蛋白及CD80、CD86分別與MDS患者骨髓指標相關(guān)性分析

        2.5 各亞組MDS患者生存率比較 MDS患者3年累積生存率比較,低危亞組(91.67%,44/48)高于中危亞組(70.97%,22/31)高于高危亞組(36.00%,9/25),差異有統(tǒng)計學意義(χ2=25.360,P=0.000),見圖3。

        注:MDS.骨髓增生異常綜合征圖3 各亞組MDS患者生存率比較

        2.6 影響MDS患者預后的多因素Logistic回歸分析 多因素Logistic回歸分析顯示,Tim-3蛋白、CD80、CD86水平升高是MDS患者不良預后的獨立危險因素(P<0.05),見表5。

        表5 影響MDS患者預后的多因素Logistic回歸分析

        3 討 論

        MDS作為一組克隆性造血干細胞疾病,其特征在于無效的造血功能導致血細胞減少,并具有發(fā)展為急性髓性白血病(acute myeloid leukemia,AML)的風險[7-9]。當干細胞受損導致子代血液細胞發(fā)生復雜變化,包括細胞分化、增殖/成熟缺陷時,MDS就會啟動[10]。在過去的幾十年中,對MDS的認識和治療迅速發(fā)展,病理生物學的主要部分已被闡明,一些診斷和預后判斷的工具得到實施,新的治療方法被發(fā)現(xiàn)。但是MDS仍然是一種具有廣泛異質(zhì)性和不明確診斷的疾病,臨床對MDS的診斷確定性,患者是否有AML轉(zhuǎn)化或骨髓衰竭的危險均不可知,因此,對MDS的發(fā)病機制及其預后影響因素進行研究,可能有助于臨床醫(yī)生對MDS的防治。

        流式細胞術(shù)免疫表型分析可以識別異常增加或減少的良性及惡性漿細胞數(shù)量,以及成熟或不成熟譜系標記的異常表達,因此,流式細胞術(shù)已經(jīng)成為MDS診斷、預后和檢測病程的重要工具[11]。DC細胞作為天然免疫和適應性免疫之間的橋梁,在識別病原體和激活B、T淋巴細胞方面起著至關(guān)重要的作用。郭含夢等[12]發(fā)現(xiàn),與正常人比較,MDS患者白介素-17、白介素-2、干擾素-γ(interferon-γ,IFN-γ)等多種細胞因子水平升高,猜測MDS患者可能存在DC細胞含量增加,并促進細胞因子的分泌。本研究發(fā)現(xiàn),MDS患者外周血PBMC誘導成熟DC細胞的平均比例高于健康對照組,提示MDS患者外周血DC可能參與了MDS的病理變化。MDS患者的造血功能可通過改變抗原表達、細胞亞群頻率和散射特性而與正常人不同。免疫表型改變在MDS患者的診斷、危險分層和治療指導方面已被證明有應用價值[13]。Tim-3是TIM家族蛋白成員,編碼基因位于人類染色體帶5q33.2上,在分泌IFN-γ、CD8+T細胞、DC和巨噬細胞等的CD4+T細胞中表達[14-15]。因此,Tim-3的治療靶向可能通過作用于多種細胞類型來調(diào)節(jié)免疫反應。王方方等[16]發(fā)現(xiàn),MDS患者Tim-3表達水平可能參與MDS的發(fā)病,并可能成為臨床鑒別再生障礙性貧血與MDS的標志物。CD80是CD86活化T淋巴細胞時的協(xié)同刺激因子,在自身免疫監(jiān)控、體液免疫應答及移植反應中發(fā)揮重要作用[17-18]。Tcvetkov等[19]在對55例MDS患者的3年隨訪中發(fā)現(xiàn),CD80高表達患者中有72.9%的患者疾病發(fā)生了惡化,而CD80低表達患者有52.1%發(fā)生了惡化,差異顯著。本研究發(fā)現(xiàn),與健康對照組比較,觀察組外周血PBMC誘導成熟DC細胞Tim-3蛋白表達水平及CD80、CD86比例均升高;與低危亞組比較,中危亞組、高危亞組DC細胞Tim-3蛋白表達水平及CD80、CD86比例也依次升高,提示高表達的Tim-3、CD80、CD86可能與MDS的發(fā)生發(fā)展有關(guān),與姚丹丹等[20]研究結(jié)果一致。本研究結(jié)果還顯示,MDS患者DC細胞中Tim-3蛋白分別與環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例、骨髓涂片原始細胞呈正相關(guān),與PLT、RBC呈負相關(guān);而CD80與環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例、骨髓涂片原始細胞呈正相關(guān),與PLT呈負相關(guān);CD86與環(huán)狀鐵粒幼紅細胞占有核紅細胞比例呈正相關(guān),此結(jié)果說明Tim-3、CD80、CD86與MDS患者骨髓指標均有一定的相關(guān)性,進一步說明Tim-3、CD80、CD86可能是影響MDS發(fā)生發(fā)展的因素。本研究結(jié)果也顯示,低危亞組、中危亞組、高危亞組MDS患者3年累積生存率依次降低。提示IPSS評分越高生存率越低,可能與Tim-3、CD80、CD86的異常高表達有關(guān)。進一步經(jīng)多因素Logistic回歸分析顯示,Tim-3蛋白、CD80、CD86水平升高是MDS患者不良預后的獨立危險因素,提示Tim-3、CD80、CD86異常表達與MDS的預后有關(guān),猜測可能是Tim-3、CD80、CD86異常表達導致DC細胞免疫功能障礙,不能有效地遞呈抗原給T淋巴細胞和B淋巴細胞,因而造成機體功能免疫紊亂,可能作為潛在的臨床治療靶標。

        綜上所述,MDS患者外周血PBMC誘導成熟DC細胞比例及DC細胞中Tim-3蛋白、CD80、CD86水平均升高,與MDS患者預后不良有關(guān),可能作為潛在的防治靶標。本研究未對MDS患者炎性反應水平進行檢測分析,下一步可以結(jié)合MDS患者炎性反應水平探究Tim-3蛋白、CD80、CD86水平與MDS的相關(guān)性。

        利益沖突:所有作者聲明無利益沖突

        作者貢獻聲明

        余娟:設(shè)計研究方案,實施研究過程,論文撰寫;嚴曉琴:提出研究思路,課題設(shè)計,分析試驗數(shù)據(jù),論文審核;鄒夏:實施研究過程,資料搜集整理,論文修改;華芳:收集資料和修改論文,進行統(tǒng)計學分析

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