聶 振,林思芹,林元山
(湖南農(nóng)業(yè)大學生物科學技術(shù)學院,湖南 長沙 410128)
長期不合理施用無機磷肥易生成難溶性沉淀,使我國南方水稻耕作底層土壤板結(jié)硬化的問題日益突出[1]。研究表明,土壤微生物可有效改善土壤質(zhì)量;水稻根際接中微生物復(fù)合肥,水稻根際固氮菌、磷細菌及解鉀菌的菌數(shù)高于土體1~2 個數(shù)量級[2]。解磷菌范圍廣泛,霉菌、放線菌、細菌均有分布,其中細菌解磷效果較好,種類多,如芽胞桿菌、假單胞菌、洋蔥伯克霍爾德菌等[3-4]。假單胞菌JP2-3 在土壤中具有顯著的解磷和硝態(tài)氮去除效應(yīng),并能促進黃瓜植株生長。解磷菌劑的應(yīng)用能減少農(nóng)田土壤磷素的流失[5]。解磷細菌的解磷機制十分復(fù)雜,其中,分泌小分子有機酸、無機酸溶解難溶性磷酸鹽的“溶磷”為主,也有解磷菌分泌磷酸酶解磷,還有底物降解釋放磷[6]。為此,深入研究解磷菌及其應(yīng)用對水稻生產(chǎn)和土壤保護具有及其重要現(xiàn)實意義。
1.1.1 培養(yǎng)基(1)有機磷篩選培養(yǎng)基[7]:蛋白胨10.0 g,氯化鈉0.5 g,雞蛋黃20.0 g,葡萄糖20.0 g,瓊脂粉20.0 g,加蒸餾水至1 000 mL,調(diào)pH 值 7.0~7.5,121℃滅菌25 min。(2)無機磷篩選培養(yǎng)基[8]:葡萄糖20.0 g,磷酸三鈣10.0 g,氯化鎂5 g,硫酸銨5.0 g,氯化鉀0.5 g,瓊脂粉20.0 g,加蒸餾水至1 000 mL,調(diào)pH 值 7.0~7.5,121℃滅菌25 min。(3)斜面培養(yǎng)基:酵母浸膏 5.0 g,氯化鈉 5.0 g,葡萄糖10.0 g,可溶性淀粉10.0 g,瓊脂粉20.0 g,加蒸餾水至1 000 mL,調(diào)pH 值 7.0~7.5,121℃滅菌25 min。(4)解磷基本培養(yǎng)基:葡萄糖2.0 g,硫酸銨0.5 g,磷酸三鈣1.0 g,硫酸鎂0.05 g,氯化鈉0.05 g,氯化鉀0.05 g,七水硫酸亞鐵0.005 g,一水硫酸錳0.003 g,加蒸餾水至100 mL,調(diào)pH值 7.0~7.5,121℃滅菌25 min。(5)阿須貝無氮培養(yǎng)基:甘露醇10.0 g,碳酸鈣 5.0 g,七水硫酸鎂 0.2 g,磷酸二氫鉀 0.2 g,硫酸鈣 0.1 g,氯化鈉 0.2 g,瓊脂粉20.0 g,加蒸餾水至1 000 mL,調(diào)pH 值 7.0~7.5,121℃滅菌25 min。(6)解鉀培養(yǎng)基:三氯化鐵0.005 g,碳酸鈣0.1 g,磷酸氫二鈉2.0 g,七水硫酸鎂0.5 g ,硫酸銨1.0 g,蔗糖5.0 g,鉀長石粉0.1 g,瓊脂20 g,加蒸餾水至1 000 mL,調(diào)pH 值7.0~7.5。121℃滅菌25 min。
1.1.2 水稻根際土壤通過GPS 定位經(jīng)緯度,在湖南省農(nóng)業(yè)科學院至湖南農(nóng)業(yè)大學一帶水稻田大田(東經(jīng)113°4′35″~113°4′47″,北緯28°11′41″~28°11′54″) 范圍內(nèi),均勻分布采集根際土若干份,取樣深度 5~30 cm,每份樣品濕重200~300 g,置于無菌封口袋中,準確標記,盡快帶回實驗室進行土壤解磷菌株的分離。
1.2.1 解磷菌的初步篩選取10 g 新鮮土加入90 mL無菌水至250 mL 無菌三角瓶中, 在200 r/min 恒溫振蕩30 min 后,按10 倍稀釋法依次配制10-3、10-4、10-5、10-6、10-7的土壤懸浮液,吸取100 μL 均勻涂布于有機或無機磷分離培養(yǎng)基的90 mm 培養(yǎng)皿中,每梯度設(shè)3~6 個重復(fù),37℃培養(yǎng)3~7 d,觀察是否出現(xiàn)解磷圈,測量解磷圈直徑(D)和菌落直徑(d),并計算溶磷圈的直徑和菌落直徑的比值(D/d),并接種斜面,4℃冰箱保存。
1.2.2 解磷菌的搖瓶復(fù)篩將初篩菌株接種于解磷基本培養(yǎng)基中,于37℃恒溫搖床、200 r/min 的條件下培養(yǎng)6 d,發(fā)酵液在分離因素10 000 g 離心 5 min,以不接種培養(yǎng)基作為空白對照,上清液用鉬銻抗比色法[9]測定可溶性磷含量,每處理設(shè)3 個重復(fù)。菌體磷按釩鉬銻抗比色法測定[10]。
1.2.3 解磷細菌的鑒定(1)解磷菌形態(tài)、生理生化特征按平板觀察。常規(guī)染色顯微觀察,參照《伯杰細菌鑒定手冊》的方法進行。(2)16S rDNA 測序分析。高活性解磷菌株送蘇州金唯智生物科技有限公司,進行16S rDNA 測序,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,確定種屬。
1.2.4 菌株解鉀能力鑒定將菌株接種至解鉀培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4~7 d,觀察是否有解鉀圈。
1.2.5 菌株固氮能力鑒定將菌株接種至阿須貝培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4~7 d,觀察菌株能否生長。
從水稻田中取回12 份土壤樣品,分別進行無機磷降解菌和有機磷降解菌的單菌落分離,分別獲得具有水解圈的無機磷降解菌79 株,有水解圈的有機磷降解菌287 株。經(jīng)形態(tài)初步判斷,無機磷降解菌以細菌為主,少量放線菌,霉菌和酵母菌未曾發(fā)現(xiàn);有機磷降解菌種類分布較廣,以細菌和霉菌為主,其次為放線菌,少量酵母菌。部分篩選菌落直觀圖片見圖1。從圖1a 可知,無機磷篩選培養(yǎng)基,以無機氮硫酸銨為氮源,營養(yǎng)匱乏,解磷菌在無機磷平板上菌落和溶磷圈較小,土壤無機磷降解菌菌落總數(shù)維持在(5.0±0.5)×107CFU/g 土壤;相反,從圖1b 可知,因養(yǎng)分充足,在有機磷篩選平板上的菌落較大,水解圈也大,土壤有機磷降解菌菌落總數(shù)達(8.0±0.5)×108CFU/g。溶磷圈直徑與菌落的直徑之比(D/d)在1~2 之間,特別是無機磷培養(yǎng)基的溶磷圈難以測定,需要復(fù)篩確定解磷水平。由于耕地土壤板結(jié)主要是無機磷板結(jié)危害影響大,因而,重點研究無機磷的降解菌更有實際意義。
圖1 解磷菌的平板初篩及顯微觀察
將初篩菌株進一步接種于解磷基本培養(yǎng)基,于37℃恒溫搖床、200 r/min 的條件下培養(yǎng)6 d 后,測定發(fā)酵液的可溶性磷含量,盡管平板初篩獲得較多的單菌落,但搖瓶復(fù)篩的差異很大,有的菌落難以在解磷基本培養(yǎng)基中有效生長繁殖,有的解磷活性很低,甚至檢測不出。解磷活性較高的部分菌株解磷能力結(jié)果見表1。從表1 可以看出,菌體磷在55 μg/mL 以內(nèi),發(fā)酵液水溶性磷均低于30 μg/mL,說明菌體在苛刻條件下,主要用于菌體磷的合成,用于自身代謝需要。發(fā)酵液的pH 值普遍低于初始培養(yǎng)基pH 值,一般處于pH 值 5.0~6.8,說明在現(xiàn)有培養(yǎng)基條件下,改變酸堿度的能力有限,但發(fā)酵液的pH 值高低與水溶性磷和菌體磷不成正相關(guān)關(guān)系,可能與菌體分泌小分子酸的強弱有關(guān),其具體小分子酸的種類和強度有待進一步確定。菌株LSQ31 和NZ 204 的菌體磷和水溶性磷較高,特別菌株LSQ31 菌體磷達52.4 μg/mL,水溶性磷達26.9 μg/mL,總磷達79.3 μg/mL。有望深入基礎(chǔ)研究、探索應(yīng)用潛力。
表1 解磷菌對無機磷的降解利用分析
由于無機磷培養(yǎng)基中有機氮源匱乏,菌體生長較少,而且周期長。在水稻耕作施肥的情形下,水稻田既有有機肥也有無機肥,肥料中的氮源對解磷菌的生長繁殖及解磷效果有影響。圖2 顯示,在搖瓶發(fā)酵條件下,維持基本培養(yǎng)基不變(葡萄糖2.0%),單一更換不同的氮源,菌株LSQ31 在有機氮源的發(fā)酵液中的菌體磷、水溶性磷和總磷差異顯著(P<0.05,下同);發(fā)酵液pH 值總體呈酸性。其中菌株LSQ31 在黃豆粕中的菌體磷達102.5 μg/mL,水溶性磷達44.8 μg/mL,總磷達147.3 μg/mL;發(fā)酵液渾濁度更深,pH 值 5.5,顯示更多的生物量。菜籽粕是其次好的一種氮源,有利于解磷菌生長、解磷。
碳源是微生物菌體合成、產(chǎn)物合成和能量代謝的重要成分,也是構(gòu)成菌體小分子有機酸的碳架。圖3顯示,在搖瓶發(fā)酵條件下,變更基本培養(yǎng)基中氮源為黃豆粕(0.5%),同時更換不同的碳源,菌株LSQ31在不同碳源發(fā)酵液中的菌體磷、水溶性磷和總磷差異較大,影響解磷效果降序次序是葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖、果糖及可溶性淀粉。其中菌株在葡萄糖中的菌體磷達98.4 μg/mL,水溶性磷達46.8 μg/mL,總磷達145.2 μg/mL;葡萄糖和蔗糖二者的影響差異不大,麥芽糖、果糖和乳糖也比較接近。比較氮源、碳源對解磷的影響,顯然有機氮源的影響更為明顯。
圖3 碳源對菌株LSQ31 解磷的影響
2.5.1 LSQ31菌株形態(tài)學觀察將LSQ31 菌株接種于LB 培養(yǎng)基平板上進行培養(yǎng)24~72 h,菌落呈圓形,淺黃色不透明,表面粗糙、濕潤、有暈環(huán)、無凸起;在顯微鏡下觀察該菌為球狀,無芽孢產(chǎn)生,運動,不產(chǎn)孢;經(jīng)革蘭氏染色觀察其為革蘭氏陰性菌株,如圖1c 所示。
2.5.2 LSQ31菌株的16S rRNA序列分析LSQ31
菌株經(jīng)測序以及在GenBank 進行BLAST 比對分析,LSQ31 菌株與Vogesella urethralisYM-1(NR169490.1)的同源性達99%。結(jié)果見圖4,初步鑒定菌株LSQ31為Vogesella屬,并且命名為Vogesellasp. LSQ31(福格斯氏菌LSQ31)。
圖4 LSQ31 菌株系統(tǒng)發(fā)育樹
LSQ31 菌株能在LB 培養(yǎng)基上能生長良好,最適生長溫度為37℃,生物量24 h 達到峰值;在pH 值 5.5~7.5,33~37℃能很好地生長,能好利用葡萄糖、麥芽糖、蔗糖、乳糖、阿拉伯糖、果糖、淀粉;能利用明膠、干酪素以及常規(guī)的有機氮源。菌株在LB 液體培養(yǎng)基培養(yǎng)15 d,仍然有生物活性;在LB 斜面培養(yǎng)基上4℃冰箱保存90 d 仍然存活;在LB 斜面培養(yǎng)基上室溫保存40 d 仍然存活,90 d 后全部死亡。LSQ31 菌株能在無氮培養(yǎng)基上,可能有固氮功能;也能在解鉀培養(yǎng)基上生長,也說明該菌具有一定的解鉀能力。
從水稻根際土壤中篩選出一株解磷活性較高的菌株LSQ31。該菌為革蘭氏陰性球菌,無芽孢。經(jīng)16S rDNA 測序分析,菌株LSQ31 鑒定為Vogesella 屬,并且命名為福格斯氏菌(Vogesella sp.)LSQ31。該菌能利用多種碳源和有機氮源,具有與有機肥相互作用有效解磷,并改善土壤退化的潛力。
福格斯氏菌(Vogesella)的解磷作用,國內(nèi)外鮮見報道。目前,土壤退化較為突出的問題為土壤鹽漬化、土壤酸化、土壤板結(jié)和土壤重金屬污染[11]。添加石灰治理土壤酸化、微生物、有機質(zhì)可以有效修復(fù)土壤鹽漬化、板結(jié)和重金屬污染[12-13]。試驗篩選的福格斯氏菌LSQ31 菌株能更好的利用黃豆粕、菜籽粕等有機氮源,以發(fā)揮解磷功效,預(yù)示該菌株與有機肥可以實現(xiàn)相互作用實現(xiàn)土壤修復(fù),特別在土壤板結(jié)和重金屬污染方面。該菌的解磷活性與不動桿菌解磷活性(143 μg/mL)相當[6],具有進一步研究和應(yīng)用的潛力。