葉 茂,鄧毛程,林凱旋,何雪瑩,尹愛國
(1.廣東輕工職業(yè)技術(shù)學(xué)院 食品與生物技術(shù)學(xué)院,廣東 廣州 510300;2.廣東省特色調(diào)味品工程技術(shù)開發(fā)中心,廣東 廣州 510300;3.廣東石油化工學(xué)院 生物與食品工程學(xué)院,廣東 茂名 525000)
羧肽酶(carboxypeptidases,CPs)是指能專一催化水解多肽鏈羧基末端氨基酸的一類外肽酶,是一種具有重要應(yīng)用潛力的工業(yè)酶制劑。羧肽酶的應(yīng)用主要涉及到生物、化學(xué)、醫(yī)學(xué)等多個學(xué)科領(lǐng)域。在食品和飼料工業(yè),可用于制備高F值寡肽[3],去除赭曲霉素[4],多肽脫苦、生物活性多肽的延長或特異性修飾[5];在生物學(xué)領(lǐng)域,可用于多肽的合成[6]及多肽氨基酸序列測定[7];在醫(yī)學(xué)用途方面,通過體內(nèi)羧肽酶的檢測達到診斷和治療疾病的目的[8-9]。近幾年,羧肽酶的新功能和新用途不斷被發(fā)現(xiàn)和拓展,使得羧肽酶具有更高的研究價值和更廣闊的應(yīng)用前景。
目前,羧肽酶酶制劑商品供應(yīng)主要來源于豬胰腺,但價格昂貴[10-11]。因此,利用微生物獲得大量的羧肽酶,具有重要的現(xiàn)實意義[12-13]。黑曲霉(Aspergillus niger)是國際上公認(rèn)的安全發(fā)酵微生物,且適合采用固態(tài)發(fā)酵的方式[14],而黑曲霉生產(chǎn)羧肽酶發(fā)酵工藝條件鮮見報道[15]。本研究是在前期篩選分離純化獲得的羧肽酶活力較高的黑曲霉(Aspergillus niger)H1-6的基礎(chǔ)上,利用固態(tài)發(fā)酵技術(shù),優(yōu)化其產(chǎn)酶發(fā)酵工藝參數(shù),并考察發(fā)酵粗酶液在醬油釀造發(fā)酵中的應(yīng)用效果,為實現(xiàn)羧肽酶的規(guī)?;a(chǎn)、降低成本來滿足商業(yè)化的需要,對推動我國相關(guān)產(chǎn)業(yè)發(fā)展具有重要意義。
1.1.1 菌株
黑曲霉(Aspergillus niger)H1-6:本實驗室篩選獲得,馬鈴薯培養(yǎng)基斜面保藏于4 ℃冰箱。
1.1.2 化學(xué)試劑
碳源(麩皮、玉米芯粉、甘蔗渣、米糠)、氮源(豆粕、花生粕、菜籽油餅、玉米粉):市售;羧肽酶底物(N-芐氧羰?;?L-苯丙氨酰-L-亮氨酸(N-carbobenzyloxy-L-phenylalanyl-L-leucine,N-CBZ-Phe-Leu)):美國Sigma-Aldrich公司。其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.3 培養(yǎng)基
斜面培養(yǎng)基:馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基,稱取PDA培養(yǎng)基干粉39 g,加入蒸餾水或去離子水1 000 mL,攪拌加熱煮沸至完全溶解,121 ℃高壓滅菌15 min。
固體發(fā)酵培養(yǎng)基:稱取一定量的碳源、氮源和無機鹽,加水,121 ℃高壓滅菌20 min。
SW-CJ-ZFD型雙人單面凈化工作臺:蘇州凈化設(shè)備有限公司;DHP-9162型電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海博迅實業(yè)有限公司;722N型可見分光光度計:上海精密科學(xué)儀器有限公司。
1.3.1 菌株的活化
將黑曲霉菌株H1-6接種于PDA培養(yǎng)基進行活化,30 ℃培養(yǎng)3~4 d,待長滿孢子后備用。
1.3.2 單孢子懸液的制備
取培養(yǎng)好的PDA斜面,加入無菌生理鹽水,用接種環(huán)刮下黑曲霉菌株H1-6孢子后轉(zhuǎn)移至裝有玻璃珠的無菌錐形瓶中,充分搖動使孢子散開,將孢子濃度調(diào)整到1×108CFU/mL,備用[16]。
1.3.3 固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)
500 mL三角瓶裝100 g固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基,固態(tài)培養(yǎng)基的具體配方根據(jù)單因素試驗和響應(yīng)面分析試驗設(shè)計,通過添加1 mol/L HCl或NaOH水溶液來調(diào)節(jié)培養(yǎng)基的初始pH值,然后121 ℃高壓滅菌20 min,待培養(yǎng)基冷卻到室溫(20~25)℃,按培養(yǎng)基質(zhì)量的比例接種孢子懸液(1×108CFU/mL),在32 ℃條件下,恒溫培養(yǎng)3 d后獲得成曲,培養(yǎng)期每天翻曲2次。試驗平行3次[17],結(jié)果取平均值。
1.3.4 粗酶液的制備
參考文獻[16],并略作修改。分別稱取10 g成曲,研磨后加入100 mL無菌水,40 ℃浸提1 h,期間攪拌2~3次。用中速定性濾紙過濾,濾液即為粗酶液。同時測定曲料水分,酶活力用曲料干基質(zhì)量表示,即mU/g[18]。
1.3.5 羧肽酶活力的測定方法
采用鎘-茚三酮法測定羧肽酶的活力[19]。羧肽酶酶活定義:在30 ℃,pH 3.7的條件下,每秒鐘產(chǎn)生1 mmol的酪氨酸所需的酶量為一個酶活單位(mU)。
1.3.6 羧肽酶粗酶液在醬油釀造中的應(yīng)用
結(jié)合固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)條件試驗結(jié)果,添加0~2.5 U/kg成曲羧肽酶,采用高鹽稀態(tài)發(fā)酵法釀造醬油,在成曲加18%鹽水前,先將羧肽酶粗酶液溶解到鹽水中,發(fā)酵后壓榨出油檢測氨基態(tài)氮含量[20]。
1.3.7 產(chǎn)酶條件優(yōu)化單因素試驗
按100 g固體發(fā)酵培養(yǎng)基,分別稱取45%碳源(麩皮、玉米芯、米糠及甘蔗渣),45%氮源(豆粕、花生粕、玉米粉及油菜籽粉),10%無機鹽(K2PO3、MgSO4、MnSO4·H2O、FeCl3·H2O和CaCl2),分別按40%、45%、50%、55%和60%加入蒸餾水,置于500 mL三角瓶,調(diào)節(jié)培養(yǎng)基的初始pH值分別至5.0、5.5、6.0、6.5和7.0,121 ℃滅菌20 min,待培養(yǎng)基冷卻,按培養(yǎng)基質(zhì)量的比例接種黑曲霉菌株H1-6孢子懸液(1×108CFU/mL)0.5%、1.0%、1.5%和2.0%,在32 ℃條件下,恒溫培養(yǎng)3 d獲得成曲,成曲按照方法1.3.4提取粗酶液并按照1.3.5方法測定羧肽酶活力。所有的試驗平行3次[17],結(jié)果取平均值。
1.3.8 產(chǎn)酶條件優(yōu)化響應(yīng)面試驗
(1)Plackett-Burman(PB)試驗設(shè)計
在單因素試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以羧肽酶酶活為響應(yīng)值,利用PB試驗分析麩皮添加量(X1)、豆粕添加量(X2)、NaCl添加量(X3)、初始pH值(X4)、水分含量(X5)、接種量(X6)等6個因素,每個因素取2個水平,PB試驗設(shè)計因素與水平見表1。
表1 Plackett-Burman試驗設(shè)計因素與水平Table 1 Factors and levels of Plackett-Burman tests design
(2)最陡爬坡試驗
依據(jù)PB試驗結(jié)果,以各個顯著影響因素效應(yīng)的大小設(shè)定變化步長;依據(jù)變化的梯度方向確定爬坡方向,快速逼近最佳值區(qū)域;確定主要影響因素為麩皮添加量、水分含量和接種量,將此3個因素進行最陡爬坡試驗。
(3)Box-Behnken 試驗設(shè)計
根據(jù)Box-Behnken 試驗設(shè)計原理(中心組合試驗設(shè)計原理),進行3因素3水平15個試驗組的響應(yīng)面試驗,分析每個因素主效應(yīng)與交互效應(yīng),繪制響應(yīng)曲面,求出最佳值,獲得最佳產(chǎn)酶條件。以羧肽酶酶活力(Y)為響應(yīng)值,優(yōu)化麩皮添加量(A)、水分含量(B)和接種量(C),Box-Behnken試驗設(shè)計因素與水平見表2。
表2 Box-Benhnken試驗設(shè)計因素及水平Table 2 Factors and levels of Box-Benhnken tests design
1.3.9 數(shù)據(jù)處理
所有試驗結(jié)果以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差”形式表示。利用SPSS 22.0軟件進行方差分析(analysis of variance,ANONA)檢驗,P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。采用Design-Expert 8.0.7軟件進行響應(yīng)面試驗數(shù)據(jù)分析[21]。
由表3可知,當(dāng)碳源為麩皮時,羧肽酶的固態(tài)發(fā)酵酶活力最高(640±32)mU/g,其他依次為玉米芯粉、米糠和甘蔗渣;當(dāng)?shù)礊槎蛊蓵r,羧肽酶的酶活力最高(703±11)mU/g,其他依次為花生粕、玉米粉和菜籽油餅;無機鹽中的NaCl對羧肽酶的固態(tài)發(fā)酵酶活力有正相關(guān)性,其他的K2PO3、MgSO4、MnSO4·H2O、FeCl3·H2O和CaCl2則沒有影響;黑曲霉接種量為1.0%時,羧肽酶的固態(tài)發(fā)酵酶活力達到最高(746±22)mU/g;初始pH值為6.5時,羧肽酶的固態(tài)發(fā)酵酶活力最高(773±16)mU/g;水分含量為55%時,羧肽酶的固態(tài)發(fā)酵酶活力最高(826±23)mU/g。
表3 產(chǎn)酶條件優(yōu)化單因素試驗結(jié)果Table 3 Results of single factor tests for optimization of enzymeproduction conditions
因此,選用麩皮為碳源,添加量為45%;豆粕為氮源,添加量為45%;氯化鈉為無機鹽,添加量為10%,并調(diào)節(jié)初始pH值為6.5、黑曲霉H1-6接種量為1.0%,水分含量為55%。
在上述單因素試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以羧肽酶酶活為響應(yīng)值,利用Plackett-Burman試驗設(shè)計分析麩皮添加量(X1)、豆粕添加量(X2)、NaCl添加量(X3)、初始pH值(X4)、水分含量(X5)、接種量(X6)等6個因素的顯著性,每個因素取2個水平,每個試驗重復(fù)3次。為了估計試驗誤差,另設(shè)3個虛擬變量。PB試驗設(shè)計及結(jié)果見表4,方差分析見表5。
表4 Plackett-Burman 試驗設(shè)計及結(jié)果Table 4 Design and results of Plackett-Burman tests
表5 Plackett-Burman試驗結(jié)果方差分析Table 5 Variance analysis of Plackett-Burman tests results
由表5可知,此模型P=0.020 7<0.05,說明回歸方程顯著;該模型的決定系數(shù)R2為0.9015,調(diào)整決定系數(shù)R2為0.7833,表明多項式模型擬合較好。影響黑曲霉H1-6固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)羧肽酶的顯著因素分別是麩皮添加量X1(P=0.021 5)、水分含量X5(P=0.008 5)和接種量X6(P=0.013 0),P值均<0.05,可以作為進一步優(yōu)化的因素,其他因素對結(jié)果影響不大,在下一步研究中,取中間值。因此,選用麩皮添加量、水分含量以及黑曲霉H1-6接種量作為最陡爬坡試驗因素。
根據(jù)Plackett-Burman試驗結(jié)果確定的3個主要顯著因素,其中麩皮添加量(A)對酶活力表現(xiàn)為正效應(yīng),水分含量(B)和黑曲霉H1-6接種量(C)對酶活力表現(xiàn)為負(fù)效應(yīng),根據(jù)這3個顯著影響因素效應(yīng)的大小確定試驗的爬坡方向和變化步長,以最快的速度逼近最大響應(yīng)值(酶活力)的區(qū)域[22]。其余因素則依據(jù)效應(yīng)關(guān)系,分別選擇對應(yīng)的水平[23]。最陡爬坡試驗設(shè)計與結(jié)果見表6。
表6 最陡爬坡試驗設(shè)計和結(jié)果Table 6 Design and results of the steepest ascent tests
由表6可知,隨著3個主要影響因素含量的變化,羧肽酶活力呈現(xiàn)先升高后降低,羧肽酶活力在試驗第5組的條件下,羧肽酶活力最高(867±12)mU/g。因此,選擇試驗第5組的條件作為響應(yīng)面設(shè)計因素水平的中心點,即麩皮添加量(A)、水分含量(B)和接種量(C)分別為40%、55%和1.2%。
根據(jù)Box-Behnken 試驗設(shè)計原理(中心組合試驗設(shè)計原理),設(shè)計3因素5水平共20個試驗點的響應(yīng)面分析試驗,其中有14個析因點,6個零點重復(fù),以羧肽酶酶活力(Y)為響應(yīng)值,以估計試驗誤差,分析黑曲霉H1-6固態(tài)發(fā)酵羧肽酶活力的最佳條件。Box-Behnken試驗設(shè)計與結(jié)果見表7,方差分析結(jié)果見表8。
表7 Box-Behnken試驗設(shè)計與結(jié)果Table 7 Design and results of Box-Behnken tests
續(xù)表
表8 回歸模型的方差分析Table 8 Variance analysis of regression model
以羧肽酶活力為響應(yīng)值,運用Design-Expert 8.0.7軟件進行回歸擬合,得到酶活力(Y)與麩皮含量(A)、含水量(B)與接種量(C)的二次多項回歸方程:
由表7可以看出,在α=0.01水平時,H1-6菌株產(chǎn)羧肽酶響應(yīng)面試驗?zāi)P突貧w極顯著(P<0.000 1),并且失擬項不顯著(P=0.285 0>0.05),表明該方程對試驗數(shù)據(jù)擬合良好。該模型決定系數(shù)R2=0.968 4,說明96.84%的試驗數(shù)據(jù)可用該模型解釋,調(diào)整決定系數(shù)R2Adj=0.939 9,證明該模型可以很好的擬合試驗數(shù)據(jù)。根據(jù)各因素P值大小,一次項A、B、C,二次項A2、B2、C2對羧肽酶活力影響極顯著(P<0.01)。
根據(jù)Box-Behnken試驗結(jié)果,應(yīng)用Design-Expert 8.0.7軟件對數(shù)據(jù)進行分析擬合,得到各因素交互作用對羧肽酶活力影響的響應(yīng)面及等高線見圖1。由圖1可知,麩皮添加量(A)、水分含量(B)和接種量(C)3個因素之間互有交互作用,但對結(jié)果均無顯著影響(P>0.05)。
圖1 麩皮添加量、含水量及接種量對黑曲霉H1-6固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)羧肽酶活力的響應(yīng)面及等高線Fig.1 Response surface polts and contour lines for effects of interaction between bran addition,moisture and inoculum on carboxypeptidase activity produced by Aspergillus niger H1-6 with solid-state fermentation
為了驗證該模型預(yù)測的可靠性與準(zhǔn)確性,通過單因素試驗與響應(yīng)面試驗最優(yōu)產(chǎn)酶條件為:得到A=-0.769、B=0.318、C=0.331,即麩皮添加量為36.16%,水分含量為56.59%,接種量為1.27%。此條件下模型預(yù)測的羧肽酶活力理論值為950.39 mU/g。考慮到實際操作的便利性,將最優(yōu)產(chǎn)酶條件修正為:麩皮添加量為36%,含水量為56.6%,接種量為1.3%(即1.3×106CFU/g)。在此優(yōu)化條件下,制曲培養(yǎng)3 d,測定成曲中羧肽酶活力,3次平行試驗羧肽酶活力實際值為938.33 mU/g,與預(yù)測值接近,說明實驗值與預(yù)測值有較好的擬合性,所得產(chǎn)酶條件可以用于指導(dǎo)實際發(fā)酵。
氨基酸態(tài)氮含量指的是以氨基酸形式存在的氮元素的含量,醬油中的香味就是各種氨基酸的自然效果,該指標(biāo)越高,說明醬油中氨基酸含量越高,鮮味越好[24]。已經(jīng)證實羧肽酶能夠水解多肽和蛋白質(zhì)C端的氨基酸,應(yīng)用于氨基酸生產(chǎn)以及食品工業(yè)中的脫苦和風(fēng)味提升等方面[25]。因此,將不同添加量的羧肽酶添加到發(fā)酵醬醪中,然后進行發(fā)酵、壓榨出油檢測,不同羧肽酶添加量對醬油中氨基態(tài)氮含量的影響結(jié)果見圖2。
圖2 不同羧肽酶添加量對醬油中氨基酸態(tài)氮含量的影響Fig.2 Effect of different carboxypeptidase addition on amino nitrogen contents in soy sauce
由圖2可知,與對照樣品相比較,添加0~2.5 U/kg成曲的羧肽酶粗酶液后氨基態(tài)氮都有所提高,這可能是添加羧肽酶后,醬醪中更多的多肽被水解成氨基酸。此外,隨著羧肽酶添加量的增加,氨基態(tài)氮含量顯著增加,但羧肽酶添加量到一定程度(1.5 U/kg成曲),氨基態(tài)氮含量增加不顯著。因此建議羧肽酶的添加量控制在1.5 U/kg成曲。
本研究考察了不同碳源、氮源、初始pH值、多種無機鹽、水分含量及接種量對黑曲霉H1-6固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)羧肽酶的影響。在單因素試驗及Plackett-Burman試驗的基礎(chǔ)上,采用中心組合響應(yīng)面法對產(chǎn)酶條件進行優(yōu)化,并建立了酶活力與麩皮、水分含量及接種量之間的二次多項回歸模型,得出最優(yōu)發(fā)酵條件為:麩皮添加量36%,豆粕添加量50%、NaCl添加量10%、初始pH值為6.0、含水量56.6%,接種量為1.3%(即1.3×106CFU/g)。在此優(yōu)化條件下,羧肽酶的酶活力達到938.33 mU/g。在最優(yōu)發(fā)酵條件下獲得的發(fā)酵羧肽酶粗酶液添加到醬油釀造中,能有效提高醬油中氨基態(tài)氮的含量,進而提高其鮮味,并且最佳添加量為1.5 U/kg成曲。該研究結(jié)果為羧肽酶生產(chǎn)應(yīng)用的研究提供實驗基礎(chǔ)。下一步研究將繼續(xù)在合適的生物反應(yīng)器進行放大試驗生產(chǎn),以促進羧肽酶固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)實現(xiàn)工業(yè)化。