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        pBBR1MCS2-Tac-EGFP廣宿主載體適宜標(biāo)記Ralstonia solanacearum

        2021-08-04 18:26:40肖熙鷗林文秋陳卓鄒春香金輝鄒華芬
        熱帶作物學(xué)報(bào) 2021年6期

        肖熙鷗 林文秋 陳卓 鄒春香 金輝 鄒華芬

        摘? 要:利用標(biāo)記基因追蹤病原菌在植物體內(nèi)的入侵和定殖,是研究病原菌-寄主互作的重要手段。本研究利用電轉(zhuǎn)化法將廣宿主載體pBBR1MCS2-Tac-EGFP導(dǎo)入青枯雷爾氏菌(Ralstonia solanacearum)GMI1000菌株中,獲得了青枯雷爾氏菌帶綠色熒光標(biāo)記的轉(zhuǎn)化子。轉(zhuǎn)接試驗(yàn)結(jié)果表明,轉(zhuǎn)化子的抗生素抗性和綠色熒光強(qiáng)度有良好的遺傳穩(wěn)定性。pBBR1MCS2-Tac-EGFP不影響GMI1000菌株的致病力,且EGFP蛋白能夠在植物中穩(wěn)定表達(dá)。灌根法接種試驗(yàn)結(jié)果表明,病原菌在第1天即完成對(duì)根系的侵染,并在第6天擴(kuò)散至其他組織,隨后造成植株萎蔫。研究結(jié)果表明所獲轉(zhuǎn)化子可用于后續(xù)的病原菌侵染機(jī)理等方面的研究。

        關(guān)鍵詞:青枯雷爾氏菌;綠色熒光標(biāo)記;侵染動(dòng)態(tài);pBBR1MCS2-Tac-EGFP載體

        中圖分類號(hào):S432.4????? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A

        Wide-host Vector pBBR1MCS2-Tac-EGFP Suitable for the Labeling of Ralstonia solanacearum

        XIAO Xiou1,2,3, LIN Wenqiu1,2, CHEN Zhuo1, ZOU Chunxiang4, JIN Hui1,2*, ZOU huafen1

        1. South Subtropical Crop Research Institute, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences, Zhanjiang, Guangdong 524091, China; 2. Key Laboratory of Tropical Fruit Biology of Ministry of Agriculture & Rural Affairs, Zhanjiang, Guangdong 524091, China; 3. College of Agronomy, Gansu Agricultural University, Lanzhou, Gansu 730070, China; 4. Guagnzhou Landscape Architecture Company, Guangzhou, Guangdong 510180, China

        Abstract: It is an important method to trace the invasion and colonization of pathogens in plants by marker genes. In the present study, the wide-host vector pBBR1MCS2-Tac-EGFP was transformed into the Ralstonia solanacearum GMI1000 strains by electroporation. Then the GFP expression and the GMI1000 pathogenicity were analyzed. The GMI1000-Tac-EGFP strains emitted GFP fluorescence under the 440 nm excitation light. After the susceptible eggplant was inoculated by wild type GMI1000 and GMI1000-Tac-EGFP, there was no difference between the GMI1000 and the GMI1000-Tac-EGFP in the disease index. The result suggested that GMI1000-Tac-EGFP didnt influence the pathogenicity of GMI1000. After inoculating eggplants and potatoes by GMI1000-Tac-EGFP, the eggplant root, potato root and potato stem emitted GFP fluorescence under the 440 nm excitation light. The result suggested that GMI1000-Tac-EGFP could express EGFP in the eggplant and potato. To monitor the moment of R. solanacearum cells in potato, potato was inoculated with GMI1000-Tac-EGFP. The result showed that GMI1000-Tac-EGFP invaded the root 1 d after inoculation, spreaded to the stem 6 d after inoculation. In conclusion, the wide-host vector pBBR1MCS2-Tac-EGFP is suitable for the labeling of R. solanacearum and an important tool to trace the invasion and colonization of R. solanacearum strains in plants.

        Keywords: Ralstonia solanacearum; GFP marker; infection dynamic; pBBR1MCS2-Tac-EGFP vector

        DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2021.06.027

        青枯雷爾氏菌(Ralstonia solanacearum)寄主范圍廣泛,能夠引起200多種植物感染青枯病[1]。青枯病是茄子和馬鈴薯等茄科作物生產(chǎn)中主要的病害之一,該病害能造成嚴(yán)重的損失,甚至可以導(dǎo)致絕收。在我國,除西藏、黑龍江和內(nèi)蒙古外,其余省份均有青枯菌的報(bào)道,尤其是在熱帶和亞熱帶地區(qū),青枯病危害更為嚴(yán)重[2]。到目前為止,尚無有效的方法對(duì)其進(jìn)行防控。而研究青枯菌的致病機(jī)理對(duì)防控青枯病具有重要意義。利用標(biāo)記基因追蹤病原菌在植物體內(nèi)的入侵、定殖等侵染途徑,是研究病原菌致病機(jī)理的有效手段和方法[3-7]。目前在R. solanacearum中使用的標(biāo)記基因有GFP[8-10]、LUX[9, 12]和GUS[13]等。標(biāo)記基因在R. solanacearum中的表達(dá)主要有2種方式,一種是利用Tn5轉(zhuǎn)座子將外源基因定點(diǎn)插入到R. solanacearum的染色體中[14],該方法插入的外源基因能穩(wěn)定存在于R. solanacearum染色體中,不會(huì)由于環(huán)境條件的影響而丟失,但是該方法操作較為繁瑣,且可能由于片段的插入導(dǎo)致R. solanacearum的基因功能喪失。Monteiro等[10]根據(jù)R. solanacearum演化型I和演化型II染色體序列特點(diǎn),設(shè)計(jì)了特異引物開發(fā)了pRC系列載體,將標(biāo)記基因定點(diǎn)插入到染色體中的假基因區(qū)域,直觀地研究了R. solanacearum在馬鈴薯、番茄中的浸染途徑。第二種方法是將含有標(biāo)記基因的廣宿主質(zhì)粒轉(zhuǎn)化R. solanacearum,以游離質(zhì)粒表達(dá)標(biāo)記基因,該方法操作簡單且不會(huì)由于定點(diǎn)插入導(dǎo)致R. solanacearum的基因功能喪失[11]。但是目前報(bào)道適宜R. solanacearum的載體較少。

        本研究將廣宿主載體pBBR1MCS2-Tac- EGFP通過電轉(zhuǎn)化法將其導(dǎo)入R. solanacearum中,分析pBBR1MCS2-Tac-EGFP在R. solanacearum中的穩(wěn)定性以及R. solanacearum的致病力,研究結(jié)果將為進(jìn)一步研究R. solanacearum在植物體內(nèi)的入侵、定殖提供適宜的標(biāo)記載體工具。

        1? 材料與方法

        1.1? 菌株

        R. solanacearum菌株GMI10000(間接來源于已故法國農(nóng)科院的Philippe Prior研究員的實(shí)驗(yàn)室)。廣寄主載體pBBR1MCS2-Tac-EGFP由本實(shí)驗(yàn)保存,該質(zhì)粒在工程菌中具有卡拉霉素(kan)抗性,由Tac啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)EGFP的表達(dá)(圖1)。

        1.2? pBBR1MCS2-Tac-EGFP電擊轉(zhuǎn)化及檢測

        利用電轉(zhuǎn)化方法將pBBR1MCS2-Tac-EGFP轉(zhuǎn)化R. solanacearum GMI1000菌株。GMI1000感受態(tài)的制備和電轉(zhuǎn)化方法參考張治飛[13]的方法。電擊轉(zhuǎn)化后取100 μL的菌液涂布于含有50 mg/L卡拉霉素的NA固體培養(yǎng)基上(葡萄糖5.0 g/L,蛋白胨10.0 g/L,牛肉浸膏3 g/L,瓊脂粉7 g/L),30 ℃培養(yǎng)48 h。

        利用LUYOR-3415RG雙波長熒光蛋白激發(fā)光源在440 nm激發(fā)光下檢測轉(zhuǎn)化子EGFP的表達(dá)。根據(jù)EGFP最大開放閱讀框抗性基因設(shè)計(jì)引物(EGFPF:ATGAGTAAAGGAGAAGAACTTT TC,EGFPR:TTATTTGTAGAGCTCA TCCATGC C)并且委托廣州天一輝遠(yuǎn)基因科技有限公司進(jìn)行合成。PCR體系為:2×PCR Mix(康為世紀(jì))12.5 μL,EGFPF(10 μmol/L)1 μL,EGFPR(10 μmol/L)1 μL,無菌水9.5 μL,菌液1 μL。PCR反應(yīng)程序:95 ℃ 5 min,95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min,PCR產(chǎn)物電泳檢測。將陽性克隆命名為GMI1000-Tac-EGFP。

        1.3? 遺傳穩(wěn)定性評(píng)價(jià)

        將GMI1000-Tac-EGFP轉(zhuǎn)接至不含卡拉霉素的NA培養(yǎng)基上,連續(xù)轉(zhuǎn)接培養(yǎng)20次,分析pBBR1MCS2-Tac-EGFP在GMI1000的遺傳穩(wěn)定性。在第2次、第10次和第20次轉(zhuǎn)接培養(yǎng)時(shí),將GMI1000-Tac-EGFP從平板上用無菌水沖洗,懸浮至OD600=0.8左右,然后利用Tecan Spark測定熒光強(qiáng)度,激發(fā)波長485 nm,發(fā)射波長為535 nm,其中Gain值設(shè)定為80。

        1.4? 熒光強(qiáng)度測定

        將GMI1000-Tac-EGFP轉(zhuǎn)接至NA液體培養(yǎng)基中,28 ℃過夜培養(yǎng)至OD600=0.8左右,6 000 r/min離心10 min,收集菌液,用無菌水進(jìn)行重懸浮至OD600=1.0。然后用無菌水進(jìn)行4倍梯度稀釋。利用Tecan Spark測定熒光強(qiáng)度,激發(fā)波長485 nm,發(fā)射波長為535 nm,其中Gain值設(shè)定為80。使用Excel軟件進(jìn)行線性回歸分析。

        將苗齡為20 d左右的‘隴薯7號(hào)組培苗移栽于7 cm × 7 cm的營養(yǎng)缽中,25~28 ℃培養(yǎng)20 d左右后用于人工接種GMI1000-Tac-EGFP。在接種后7 d,取馬鈴薯莖基上1 cm莖段用于R. solanacearum數(shù)量分析。將莖段在75%酒精消毒后置于0.2 mL的無菌水中浸泡1 h。取200 μL測定熒光強(qiáng)度,分析R. solanacearum的克隆數(shù)。同時(shí)取500 μL利用平板稀釋法統(tǒng)計(jì)菌落數(shù),具體方法參考郜剛[15]的方法。3次生物學(xué)重復(fù)。

        1.5? 致病力分析

        將苗齡為20 d左右的‘隴薯7號(hào)組培苗移栽于7 cm × 7 cm的營養(yǎng)缽中,25~28 ℃培養(yǎng)20 d左右后用于人工接種。將GMI1000-Tac-EGFP和野生型GMI1000用無菌水稀釋至1×108 CFU/mL,進(jìn)行傷根接種,每株接種20 mL菌液。同時(shí)以無菌水為對(duì)照。每次處理10株,3次生物學(xué)重復(fù)。接種后置于培養(yǎng)箱,28~30 ℃光照培養(yǎng),統(tǒng)計(jì)萎蔫癥狀出現(xiàn)的時(shí)間。

        1.6? 利用GMI1000-Tac-EGFP分析R. solanacearum動(dòng)態(tài)侵染過程

        馬鈴薯‘隴薯7號(hào)組培苗培養(yǎng)20 d后進(jìn)行接種。接種后置于培養(yǎng)箱,28~30 ℃光照培養(yǎng)。在接種后每24 h利用LUYOR-3415RG雙波長熒光蛋白激發(fā)光源在440 nm激發(fā)下檢測EGFP表達(dá),并且拍照記錄。

        2? 結(jié)果與分析

        2.1? pBBR1MCS2-Tac-EGFP成功轉(zhuǎn)入GMI1000

        本研究通過電轉(zhuǎn)化法成功地將pBBR1MCS2- Tac-EGFP轉(zhuǎn)入到GMI1000中。通過PCR在GMI1000-Tac-EGFP中擴(kuò)增出750 bp左右的片段,與預(yù)期大小一致,而GMI1000中未擴(kuò)增出相應(yīng)片段(圖2)。同時(shí)在LUYOR-3415RG雙波長熒光蛋白激發(fā)光源的藍(lán)光下,GMI1000-Tac-EGFP能夠發(fā)出綠色熒光,而野生型GMI1000未發(fā)出熒光(圖3)。研究結(jié)果證明pBBR1MCS2-Tac-EGFP成功轉(zhuǎn)入到GMI1000中,并且能夠在GMI1000中表達(dá)EGFP蛋白。

        2.2? GMI1000-Tac-EGFP穩(wěn)定表達(dá)EGFP熒光

        為進(jìn)一步分析pBBR1MCS2-Tac-EGFP在GMI1000中的遺傳穩(wěn)定性,將不同移植時(shí)間的菌液涂布于平板上,培養(yǎng)觀察綠色熒光的表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)在移殖培養(yǎng)2次、10次和20次后,其熒光強(qiáng)度之間差異不顯著(圖4)。結(jié)果表明,pBBR1MCS2- Tac-EGFP載體能夠在GMI1000中穩(wěn)定遺傳。

        2.3? EGFP熒光值與GMI1000-Tac-EGFP數(shù)量線性相關(guān)

        與平板稀釋法相比,利用EGFP熒光定量分析細(xì)菌的克隆數(shù)具有高效快捷的優(yōu)點(diǎn)。圖5結(jié)果表明,在4.0×106~1.0×109 CFU/mL的范圍內(nèi),EGFP的熒光強(qiáng)度值與GMI1000-Tac-EGFP的數(shù) 量呈線性相關(guān)關(guān)系,R2為0.9954。當(dāng)GMI1000- Tac-EGFP稀釋至約9.0×105 CFU/mL時(shí),EGFP熒光值接近于無菌水的熒光值,此時(shí)EGFP的熒光強(qiáng)度較弱,未能進(jìn)行有效檢測。因此在4.0×106~1.0×109 CFU/mL范圍內(nèi),可以利用EGFP熒光值計(jì)算R. solanancearum的數(shù)量。

        根據(jù)EGFP熒光值與GMI1000-Tac-EGFP數(shù)量的線性關(guān)系,統(tǒng)計(jì)得到GMI1000-Tac-EGFP數(shù)量為9.75×108 CFU/g,而平板計(jì)數(shù)法統(tǒng)計(jì)得到的數(shù)量為8.95×108 CFU/g(圖6)。雖然利用EGFP熒光值估算的GMI1000-Tac-EGFP數(shù)量大于平板計(jì)數(shù)法統(tǒng)計(jì)得到的數(shù)量,但是二者差異不顯著。因此可以利用EGFP熒光值計(jì)算R. solanancearum的數(shù)量。

        2.4? pBBR1MCS2-Tac-EGFP不影響GMI1000致病力

        通過致病力試驗(yàn),發(fā)現(xiàn)GMI1000-Tac-EGFP和GMI1000接種馬鈴薯6 d后,葉片開始出現(xiàn)萎蔫狀(圖7),而無菌水對(duì)照葉片正常。結(jié)果表明,pBBR1MCS2-Tac-EGFP不影響GMI1000的致病力。

        2.5? R. solanacearum侵染馬鈴薯動(dòng)態(tài)變化過程

        通過GFP熒光能夠動(dòng)態(tài)直觀地觀察R. so

        lanacearum在馬鈴薯中的動(dòng)態(tài)變化過程(圖8A)?!]薯7號(hào)接種1 d后,在其根部能觀察到微弱的熒光,證明在接種1 d后,R. solanacearum已經(jīng)進(jìn)入到馬鈴薯根部(圖8B)。隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加,GFP熒光強(qiáng)度越來越強(qiáng),并且分布的部位也越來越廣,R. solanacearum在馬鈴薯植株內(nèi)不斷繁殖和擴(kuò)散。接種后第4天,在馬鈴薯的莖部檢測到GFP熒光,表明R. solanacearum已經(jīng)進(jìn)入到馬鈴薯莖部;接種后6 d整個(gè)莖均有GFP的分布,接種后7 d,葉片的葉脈也有GFP熒光,此時(shí)R. solanacearum在整個(gè)植株內(nèi)均有分布。在接種后5 d馬鈴薯的部分葉片出現(xiàn)萎蔫癥狀,接種后7 d整個(gè)植株萎蔫。這是由于R. solanacearum在馬鈴薯的維管束中大量積累,堵塞導(dǎo)管水分的運(yùn)輸,最終導(dǎo)致馬鈴薯萎蔫。

        3? 討論

        利用標(biāo)記基因標(biāo)記病原菌是動(dòng)態(tài)分析病原菌侵染植物過程的重要手段。由于GFP的發(fā)光不需要底物,能夠無損地觀察病原菌侵染植株的動(dòng)態(tài)變化過程,因此在多種病原菌上得到了廣泛應(yīng)用[16-19]。目前成功標(biāo)記R. solanacearum的載體有pUT gfp/luxAB載體[8]、pRC系列載體[10]、pBBR1MCS-5[11]、pH7C-PpsbA載體[13]和?RSS1載體[20]等。

        本研究利用電轉(zhuǎn)化法成功將pBBR1MCS2- Tac-EGFP廣寄主載體導(dǎo)入R. solanacearum GMI1000菌株中,并且GMI1000-Tac-EGFP能夠在馬鈴薯中穩(wěn)定表達(dá)。趙志文等[11]以pBBR1MCS-5載體為骨架構(gòu)建了pBBR1MCS5- pRipAK-GFP載體,將其轉(zhuǎn)化R. solanacearum、番茄細(xì)菌性斑點(diǎn)病菌和柑橘潰瘍病菌,結(jié)果表明該載體能夠在這3種病原菌中穩(wěn)定表達(dá)。同時(shí)在熒光顯微鏡下,GMI1000-Tac-EGFP整個(gè)細(xì)胞呈現(xiàn)綠色,棒狀,近橢圓形[9, 11]。標(biāo)記基因是否影響病原菌對(duì)植物的致病力是標(biāo)記基因能否應(yīng)用于病原菌的首要條件之一。而由于馬鈴薯組培苗較為幼嫩,在植株的根和莖稈均能檢測到強(qiáng)烈GFP熒光。因此以pBBR1MCS為骨架載體適宜標(biāo)記R. solanacearum。

        啟動(dòng)子對(duì)下游基因的表達(dá)起著關(guān)鍵的調(diào)控作用。目前利用在R. solanacearum上使用的標(biāo)記基因主要為R. solanacearum內(nèi)源啟動(dòng)子,如RipAK、hrpG、hrpB、Exopolysaccharid等基因的啟動(dòng)

        子[10-11, 21],植物葉綠體PsbA啟動(dòng)子[9]以及細(xì)菌的lac啟動(dòng)子[11]。這些啟動(dòng)子均能驅(qū)動(dòng)標(biāo)記基因的高效表達(dá),而其他外源啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)標(biāo)記基因在R. solanacearum中的表達(dá)尚未見報(bào)道。Tac啟動(dòng)

        子是一個(gè)由lac和trp啟動(dòng)子人工構(gòu)建的雜合啟動(dòng)子,在大腸桿菌中有高效的表達(dá)效率。在本研究中,GMI1000-Tac-EGFP在培養(yǎng)基上和植物體內(nèi)均能發(fā)出顯著的GFP熒光,證明Tac在R. solanacearum中也有較強(qiáng)的啟動(dòng)活性,可以用于驅(qū)動(dòng)外源基因在R. solanacearum的表達(dá)。而這些啟動(dòng)子的表達(dá)效率的比較尚未見報(bào)道。在魚腥藻中,PsbA啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)效率與Tac啟動(dòng)子無明顯差異[22],但是在R. solanacearum中的表達(dá)效率是否有差異有待進(jìn)一步的研究。

        利用GFP標(biāo)記R. solanacearum在植物病原菌互作中得到了應(yīng)用。首先是分析R. solanacearum在浸染植物的過程。在自然條件下R. solanacearum通過傷口等侵染植株,然后通過木質(zhì)部向地上部分運(yùn)輸,并且在導(dǎo)管中大量繁殖,最終導(dǎo)致植物萎蔫[4, 12, 21]。R. solanacearum大量粘附在其根系表面,并在皮層形成浸染點(diǎn),或者通過根尖、側(cè)根和根部傷口侵入植株根部(接種后1 d);然后迅速進(jìn)入根部維管束組織(接種后2~3 d),并向上浸染,進(jìn)入莖部維管束組織和葉片(接種后4~5 d),導(dǎo)致馬鈴薯導(dǎo)管堵塞,最終導(dǎo)致表現(xiàn)出萎蔫(接種后6~7 d)[5, 13, 22-23]。本研究中,‘隴薯7號(hào)接種1 d后,在其根部能觀察到微弱的熒光,在接種后第4天馬鈴薯的莖部檢測到GFP熒光,第7天時(shí)葉片的葉脈也有GFP熒光,這與前人的研究結(jié)果基本一致[5, 13, 22-23]。其次是利用GFP熒光值分析病原菌的細(xì)胞數(shù)量。與傳統(tǒng)的平板稀釋法[23]、QPCR定量法[24]相比,該方法具有簡單、快捷、時(shí)間短和成本低等優(yōu)勢。本研究中,在4.0×106~1.0×109 CFU/mL范圍內(nèi),EGFP的熒光強(qiáng)度值與GMI1000-Tac-EGFP的數(shù)量呈線性相關(guān)關(guān)系,并且熒光強(qiáng)度計(jì)數(shù)法與平板稀釋法二者計(jì)算的R. solanacearum克隆數(shù)之間差異不顯著,因此可以利用EGFP熒光值分析R. solanacearum的細(xì)胞數(shù)量。

        參考文獻(xiàn)

        [696]?? Allen C, Prior P, Hayward A C. Bacterial Wilt Disease and the Ralstonia solanacearum Species Complex[M]. American Phytopathological Society Press, St. Paul, MN, U.S.A., 2005.

        [697]?? Jiang G F, Wei Z, Xu J, et al. Bacterial wilt in China: History, current status, and future perspectives[J]. Frontiers in Plant Science, 2017, 8: 1549.

        [698]?? Nakazawa-NasuY, Kitanosono S, Suzuki K, et al. A new method for the selection of tomato plants resistant to bacterial wilt using bioluminescence from lux-marked Ralstonia solanacearum[J]. Japanese Journal of Phytopathology, 1999, 65(4): 470-474.

        [699]?? Hikichi Y, Nakazawa-Nasu Y, Kitanosono S, et al. The behavior of lux-marked Ralstonia solanacearum in grafted tomato cultivars resistant or susceptible to bacterial wilt[J]. Japanese Journal of Phytopathology, 1999, 65(6): 597-603.

        [700]?? CruZ Z A P, Ferreira V, Pianzzola M J, et al. A novel, sensitive method to evaluate potato germplasm for bacterial wilt resistance using a luminescent Ralstonia solanacearum reporter strain[J]. Molecular Plant-microbe Interactions, 2014, 27(3): 277-285.

        [701]?? Wang H J, Hu J X, Lu Y, et al. A quick and efficient hydroponic potato infection method for evaluating potato resistance and Ralstonia solanacearum virulence[J]. Plant Methods, 2019, 15: 145.

        [702]?? Planas-Marquès M, Kressin J P, Kashyap A, et al. Four bottlenecks restrict colonization and invasion by the pathogen Ralstonia solanacearum in resistant tomato[J]. Journal of Experimental Botany, 2019, 71(6): 2157-2171

        [703]?? Kawasaki T, Satsuma H, Fujie M, et al. Monitoring of phytopathogenic Ralstonia solanacearum cells using green fluorescent protein-expressing plasmid derived from bacteriophage RSS1[J]. Journal of Bioscience & Bioengineering, 2007, 104(6): 451-456.

        [704]?? 車建美, 藍(lán)江林, 劉? 波. 轉(zhuǎn)綠色熒光蛋白基因的青枯雷爾氏菌生物學(xué)特性[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2008(11): 3626-3635.

        [705]?? Monteiro F, Solé M, van DI, et al. A chromosomal insertion toolbox for promoter probing, mutant complementation, and pathogenicity studies in Ralstonia solanacearum[J]. Molecular Plant-microbe Interactions, 2012, 25(4): 557-568.

        [706]?? 趙志文, 李艷嬌, 戶? 勛, 等. 用于植物病原細(xì)菌標(biāo)記的pBB-GFP載體構(gòu)建及應(yīng)用[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2018, 34(3): 136-141.

        [707]?? Monteiro F, Genin S, van Dijk I, et al. A luminescent reporter evidences active expression of Ralstonia solanacearum type III secretion system genes throughout plant infection[J]. Microbiology, 2012, 158(Pt_8): 2107-2116.

        [708]?? 張治飛. 青枯菌的基因標(biāo)記及馬鈴薯青枯病抗性相關(guān)信號(hào)途徑探究[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2016.

        [709]?? Boucher C A, Barberis P A, Trigalet E P, et al. Transposon mutagenesis of Pseudomonas solanacearum: Isolation of Tn5-induced avirulent mutants[J]. Journal of General Microbiology, 1989, 131(9): 2449-2457.

        [710]?? 郜? 剛. 青枯菌誘導(dǎo)的馬鈴薯防衛(wèi)相關(guān)基因克隆與表達(dá)[D]. 北京: 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院, 2008.

        [711]?? 王? 麗. 中國馬鈴著青巧茵致病力和遺傳多樣性研究[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2016.

        [712]? 賈娜娜, 翟立峰, 白? 晴, 等. 腐爛病菌的GFP標(biāo)記及其在梨葉片組織中的侵染和擴(kuò)展觀察[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2015, 32(6): 1195-1200, 1316-1317.

        [713]?? 劉曉妹, 楊永利, 張? 賀, 等. GFP標(biāo)記杧果露水斑病病原菌及其侵染部位的確定[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào), 2018, 39(11): 2235-2240.

        [714]?? 胡? 展, 雷? 平, 郭照輝, 等. 生防放線菌Ahn75的熒光標(biāo)記及其在水稻中的定殖[J]. 微生物學(xué)通報(bào), 2019, 46(10): 2612-2619.

        [715]?? Wang K R, Kang L, Anand A, et al. Monitoring in planta bacterial infection at both cellular and whole‐plant levels using the green fluorescent protein variant GFPuv[J]. New Phytologist, 2007, 174(1): 212-223.

        [716]?? Didier A, Belen B, Christian B, et al. A bacterial sensor of plant cell contact controls the transcriptional induction of Ralstonia solanacearum pathogenicity genes[J]. The EMBO Journal, 2000, 19(10): 2304-2314.

        [717]?? 寧文艷, 吳先敏, 王春梅, 等. 啟動(dòng)子Ptac與PsbA在魚腥藻7120中表達(dá)hG-CSF的效率比較[J]. 微生物學(xué)雜志, 2014, 34(3): 36-41.

        [718]?? Fujie M, Takamoto H, Kawasaki T, et al. Monitoring growth and movement of Ralstonia solanacearum cells harboring plasmid pRSS12 derived from bacteriophage phiRSS1[J]. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2010, 109(2): 153-158.

        [719]?? 王? 帥, 徐? 進(jìn), 許景升, 等. PMA-qPCR定量檢測青枯菌活菌方法的建立[J]. 植物保護(hù), 2018, 44(6): 122-128, 135.

        責(zé)任編輯:謝龍蓮

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