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        一株產(chǎn)果膠酶蘆葦內(nèi)生真菌的分離、鑒定及酶學(xué)性質(zhì)研究

        2021-07-04 01:32:06李碧嬋肖國(guó)利黃星星
        中國(guó)釀造 2021年6期
        關(guān)鍵詞:果膠酶果膠內(nèi)生

        李碧嬋,肖國(guó)利,黃星星,張 敏

        (1.武夷學(xué)院 生態(tài)與資源工程學(xué)院,福建 武夷山 354300;2.福建省生態(tài)產(chǎn)業(yè)綠色技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建 武夷山 354300)

        果膠酶是能降解果膠物質(zhì)的一類酶的總稱[1]。果膠酶在食品、醫(yī)藥、紡織、造紙、動(dòng)物飼料生產(chǎn)以及廢水處理等領(lǐng)域有廣泛應(yīng)用,是生物技術(shù)領(lǐng)域最具商業(yè)價(jià)值的酶之一[2]。果膠酶可由微生物或其他生物如植物、線蟲(chóng)和昆蟲(chóng)等自然產(chǎn)生[2]。其中,微生物果膠酶以其具有廣泛的底物特異性、誘導(dǎo)性、多功能性以及可作用于多種果膠物質(zhì)的能力,成為許多工業(yè)過(guò)程中重要的生物催化劑[3]。據(jù)報(bào)道,微生物來(lái)源的果膠酶占全球食品和工業(yè)酶銷售額的25%,其市場(chǎng)仍在不斷增長(zhǎng)[4]。目前,曲霉屬、歐文氏菌屬、芽孢桿菌屬和青霉屬已被廣泛應(yīng)用于果膠酶的商業(yè)生產(chǎn)中[1,5]。隨著果膠酶的應(yīng)用越來(lái)越廣泛,對(duì)其穩(wěn)定性、高活性和特異性的要求也在迅速增加,篩選具有新特性、更高酶活性和大規(guī)模生產(chǎn)果膠酶的微生物的具有重要意義。

        內(nèi)生菌通常是指無(wú)癥狀地生活在植物組織內(nèi)的細(xì)菌、真菌和放線菌[6]。生活于健康植物組織的內(nèi)生真菌對(duì)植物有著深遠(yuǎn)的影響。一方面,內(nèi)生真菌可以產(chǎn)生生物活性化合物,起到化學(xué)防御并促進(jìn)植物生長(zhǎng)的作用;另一方面,內(nèi)生真菌還能產(chǎn)生如果膠酶[7-9]、纖維素酶[10-11]、脂肪酶[12]、淀粉酶[13-15]和蛋白酶[16-17]等多種酶類,幫助其侵入并定植于宿主植物組織中。這些真菌酶在生物降解中發(fā)揮重要作用,在洗滌劑和紡織工業(yè)、食品加工、醫(yī)療、制藥以及農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域有廣闊的應(yīng)用前景[18-20]。BEZERR J D P等[21]從仙人掌中分離到兩株具有分解果膠能力的內(nèi)生真菌日本曲霉(Aspergillus japonicus)和產(chǎn)氣櫟生青霉(Penicillium glandicola)。SOPALUN K等[22]從泰國(guó)蘭花中發(fā)現(xiàn)有25株內(nèi)生真菌具有果膠酶活性,其中茶擬盤(pán)多毛孢(Pseudopestalotiopsis theae)DapR 02具有高產(chǎn)果膠酶的潛力,通過(guò)發(fā)酵條件優(yōu)化,所產(chǎn)果膠酶的酶活達(dá)到1.524 U/mL。

        本研究通過(guò)十六烷基三甲基溴化胺(cetyltrimethylammonium bromide,CTAB)沉淀法,從蘆葦?shù)闹仓曛蟹蛛x篩選出高產(chǎn)果膠酶的菌株,結(jié)合菌落形態(tài)特征、光學(xué)顯微鏡觀察以及內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(internal transcribed space,ITS)序列分析對(duì)篩選菌株進(jìn)行鑒定,采用3,5-二硝基水楊酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS)法測(cè)定其發(fā)酵液的酶活,并對(duì)該菌株所產(chǎn)果膠酶的酶學(xué)特性進(jìn)行了分析,為采用該菌株生產(chǎn)果膠酶的后續(xù)研究及應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 樣品采集

        蘆葦健康植株采自福建武夷山天心湖邊。

        1.1.2 化學(xué)試劑

        果膠、D-半乳糖醛酸:上海麥克林生化科技有限公司;十六烷基三甲基溴化胺、3,5-二硝基水楊酸、磷酸氫二鉀、磷酸二氫鉀、七水合硫酸鎂、硝酸鈉、硫酸銨(均為分析純):國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

        1.1.3 培養(yǎng)基

        真菌分離培養(yǎng)基采用馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基[9]:馬鈴薯200 g,蔗糖20 g,瓊脂15~20 g,蒸餾水1 000 mL,自然pH。121 ℃滅菌20 min。

        細(xì)菌分離培養(yǎng)基:蛋白胨10 g,酵母浸膏粉5 g,氯化鈉10 g,瓊脂粉15~20 g,蒸餾水1 000 mL。121 ℃滅菌20 min。

        篩選培養(yǎng)基:果膠2 g,K2HPO41 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.01 g,MgSO40.5 g,NaNO33 g,瓊脂15 g,蒸餾水1 000 mL,pH 5.5。121 ℃滅菌20 min。

        發(fā)酵培養(yǎng)基:桔皮粉1 g,KH2PO43.8 g,K2HPO4·3H2O 0.2 g,(NH4)2SO42 g,蒸餾水1 000 mL,pH 5.5。121 ℃滅菌20 min。

        1.2 儀器與設(shè)備

        SHA-B恒溫振蕩器:常州國(guó)華電器有限公司;SUP-080生化培養(yǎng)箱:上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;Neofuge15R高速冷凍離心機(jī):上海力申科學(xué)儀器有限公司;UV-1100紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):上海美譜達(dá)儀器有限公司;CX23正置生物顯微鏡:奧林巴斯工業(yè)有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 植物樣品的預(yù)處理

        將新采集的蘆葦植株剪成3~4 cm長(zhǎng),用洗潔精清洗3次,自來(lái)水沖洗30 min,紫外燈照射30 min,然后用體積分?jǐn)?shù)為70%的乙醇浸泡30 s,無(wú)菌水沖洗3次,接著用2.5%的次氯酸鈉溶液浸泡5 min,無(wú)菌水沖洗3次。

        1.3.2 內(nèi)生菌的分離與純化

        將植物的外表皮剝離,取根的中間部分,切成0.5 cm×0.5 cm大小,分別插入到真菌分離培養(yǎng)基和細(xì)菌分離培養(yǎng)基中培養(yǎng)(真菌28 ℃,細(xì)菌37 ℃)。待在植物組織處長(zhǎng)出菌落后,及時(shí)挑取外觀不同的菌落轉(zhuǎn)移至相應(yīng)的新鮮分離培養(yǎng)基上,直至純化。

        1.3.3 產(chǎn)果膠酶內(nèi)生真菌的篩選

        (1)初篩

        將1.3.2分離純化得到的內(nèi)生菌接種至果膠酶篩選培養(yǎng)基上,分別在37 ℃或28 ℃條件下培養(yǎng)3 d。加入10 mL 1%CTAB溶液,靜置5 min后傾去,再加入1%NaCl溶液,靜置5 min。測(cè)量透明圈的直徑(Dp)與菌落直徑(Dc)的比值(Dp/Dc),選擇Dp/Dc值較大的菌株進(jìn)行搖瓶實(shí)驗(yàn)。

        (2)復(fù)篩

        將純化后的菌株接種至50mL液體發(fā)酵培養(yǎng)基中,28℃、180 r/min搖瓶培養(yǎng)72 h,發(fā)酵液于8 000 r/min、4 ℃條件下離心15 min,收集上清液,即為粗酶液,用于果膠酶活力測(cè)定,根據(jù)粗酶液中果膠酶的活性,確定產(chǎn)酶最優(yōu)的菌株。

        1.3.4 果膠酶活性測(cè)定

        果膠酶活力測(cè)定參考張飛等[23]的方法,并稍加改進(jìn)。取1 mL pH 5.0的1%果膠溶液,50 ℃預(yù)熱5 min;加入1 mL預(yù)熱過(guò)的適當(dāng)稀釋的粗酶液,立即搖勻,50 ℃水浴保溫30 min,加入2 mL的蒸餾水及2.5 mL的DNS試劑,混勻,于沸水浴中煮沸10 min,流水冷卻后加蒸餾水定容;同時(shí)以經(jīng)煮沸滅活的粗酶液作對(duì)照,于波長(zhǎng)540 nm處測(cè)定吸光度值。

        果膠酶酶活定義:1 mL酶液在50 ℃、pH 5.0的條件下,1h分解果膠產(chǎn)生1mg半乳糖醛酸為一個(gè)酶活力單位(U/mL)。

        1.3.5 菌種鑒定

        (1)形態(tài)學(xué)觀察

        將分離得到的產(chǎn)果膠酶的內(nèi)生真菌接種到PDA培養(yǎng)基平板上,28 ℃培養(yǎng),觀察菌落特征,通過(guò)顯微鏡觀察菌株的菌絲、分生孢子囊以及分生孢子的特征。

        (2)ITS序列分析

        ITS序列分析委托北京信諾金達(dá)生物科技有限公司進(jìn)行。將所測(cè)得的序列提交到美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(national center of biotechnology information,NCBI),通過(guò)基本局部比對(duì)搜索工具(basiclocalalignmentsearchtool,BLAST)與已知的序列進(jìn)行比對(duì)分析。

        1.3.6 菌株產(chǎn)果膠酶的酶學(xué)特性研究

        (1)酶反應(yīng)的最適溫度

        將適當(dāng)稀釋的粗酶液分別在不同溫度(30 ℃、35 ℃、40 ℃、45 ℃、50 ℃、55 ℃、60 ℃、65 ℃、70 ℃)條件下進(jìn)行酶反應(yīng),反應(yīng)時(shí)間30 min,測(cè)定酶活力,以測(cè)得的最高酶活為100%,計(jì)算各溫度條件下的相對(duì)酶活,獲得果膠酶的最適反應(yīng)溫度。

        (2)酶的熱穩(wěn)定性試驗(yàn)

        將稀釋的粗酶液分別在20 ℃、30 ℃、40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃保溫2 h后在最適反應(yīng)條件下測(cè)定酶活力,考察果膠酶的溫度穩(wěn)定性。

        (3)酶反應(yīng)最適pH值

        將稀釋的粗酶液分別在不同pH(3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0)條件下進(jìn)行酶反應(yīng),反應(yīng)時(shí)間30 min,測(cè)定酶活力,以測(cè)得的最高酶活為100%,計(jì)算不同pH值下的相對(duì)酶活,獲得果膠酶的最適反應(yīng)pH值。

        (4)酶的pH穩(wěn)定性試驗(yàn)

        將粗酶液分別用不同pH值(2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0)的緩沖液稀釋,在常溫放置24 h,然后在最適反應(yīng)條件下測(cè)定酶活力,考察果膠酶的pH穩(wěn)定性。

        (5)底物濃度對(duì)酶促反應(yīng)的影響

        將果膠底物的終質(zhì)量濃度分別調(diào)整為0.40 mg/mL、0.80mg/mL、1.25mg/mL、1.50mg/mL、2.00mg/mL、2.50mg/mL。以DNS法測(cè)定酶促反應(yīng)所產(chǎn)生還原糖的量來(lái)計(jì)算酶促反應(yīng)初速度,計(jì)算該酶分解果膠的米氏常數(shù)Km和最大酶解速率Vmax。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 高產(chǎn)果膠酶內(nèi)生菌的分離篩選

        從蘆葦中共分離得到9株內(nèi)生菌,通過(guò)果膠酶篩選培養(yǎng)基平板初篩,獲得4株透明圈明顯的菌株,編號(hào)為z1~z4,通過(guò)液體發(fā)酵培養(yǎng)測(cè)定果膠酶活力復(fù)篩,結(jié)果見(jiàn)表1。由表1可知,分離篩選獲得一株產(chǎn)果膠酶活力最高的菌株z4,提交至中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心保藏,保藏編號(hào)為:CCTCC M 2019946。菌株z4所產(chǎn)果膠酶活力可達(dá)到40.52 U/mL,遠(yuǎn)高于王齊瑋等[8]從大麻籽中篩選到的產(chǎn)果膠酶的內(nèi)生細(xì)菌發(fā)酵所產(chǎn)生的果膠酶(酶活最高為28.1 U/mL)以及尹樂(lè)斌等[24]從臍橙果園土壤中篩選到的尖孢鐮刀菌所產(chǎn)的421 U/L果膠酶酶活,但低于趙曉璐等[9]從荷葉中分離的內(nèi)生真菌炭疽菌屬HY2所產(chǎn)的62.9 U/mL的果膠酶酶活。

        表1 產(chǎn)果膠酶菌株的初篩及復(fù)篩Table 1 Primary and secondary screening of pectinase-producing strains

        2.2 內(nèi)生菌株z4的鑒定

        2.2.1 形態(tài)學(xué)觀察

        菌株z4在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng),其菌落形態(tài)及顯微形態(tài)特征見(jiàn)圖1。由圖1可知,菌落開(kāi)始為白色絨毛狀,幾天后菌落中央變?yōu)辄S色,之后整個(gè)菌落變?yōu)辄S色呈半絨毛狀,繼續(xù)培養(yǎng),菌落中央及邊沿變?yōu)槟G色,之后整個(gè)菌落變?yōu)槟G色。菌株z4在顯微鏡下觀察,可見(jiàn)其孢子囊呈球形或近燒瓶形,分生孢子呈近球形或橢圓形。形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果初步鑒定菌株z4為霉菌。

        圖1 菌株z4的菌落形態(tài)及顯微形態(tài)特征Fig.1 Colony morphology and micro-morphological characteristics of strain z4

        2.2.2 ITS序列分析

        ITS序列分析結(jié)果由北京信諾金達(dá)生物科技有限公司提供。菌株z4的ITS序列長(zhǎng)602 bp(GenBank 登錄號(hào)為MW275931)。將z4菌株的ITS序列在NCBI中進(jìn)行BLAST比對(duì),所獲得的同源序列均為曲霉屬的ITS序列。將ITS序列與下載的相關(guān)菌株序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù),結(jié)果見(jiàn)圖2。

        圖2 菌株z4基于rDNA-ITS序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.2 Phylogenetic trees of strain z4 based on rDNA-ITS sequence analysis

        由圖2可知,多基因系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析表明,菌株z4與紅綬曲霉在系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)中聚為一支。菌株z4的ITS序列與Aspergillus nomiusKS10(DQ467991.1,GenBank)和Aspergillus nomiusNN20(DQ467990.1,GenBank)的基因序列同源性達(dá)98%。結(jié)合菌落和顯微形態(tài)特征,菌株z4被鑒定為紅綬曲霉(Aspergillus nomius)。

        2.3 酶學(xué)特性研究

        2.3.1 溫度對(duì)果膠酶活性的影響

        果膠酶的活性和熱穩(wěn)定性對(duì)其在生物技術(shù)過(guò)程以及食品工業(yè)中的應(yīng)用至關(guān)重要。研究表明,果膠酶在很寬的溫度范圍內(nèi)(30~80 ℃)都是穩(wěn)定且有活性的[25]。由圖3A可知,由Aspergillus nomiusz4產(chǎn)生的果膠酶在30~70 ℃均有活性,其中,最適反應(yīng)溫度為45 ℃,當(dāng)溫度低于45 ℃時(shí),果膠酶活力隨溫度升高而上升,超過(guò)45 ℃酶活力迅速下降,但是在50~70 ℃范圍內(nèi)仍保持50%以上酶活力。由圖3B可知,通過(guò)對(duì)該酶的熱穩(wěn)定性研究發(fā)現(xiàn),在溫度30~40 ℃范圍內(nèi)保溫2 h,其果膠酶活力仍保留80%以上;在20~40 ℃范圍內(nèi)保溫2 h酶活力保留60%;當(dāng)溫度高于50 ℃時(shí),酶活迅速下降,但是在70 ℃條件下保溫2 h,仍具有一定的酶活力。以上結(jié)果說(shuō)明,該酶最適反應(yīng)溫度為45 ℃,并且具有較好的溫度穩(wěn)定性。

        圖3 溫度對(duì)果膠酶活性的影響(A)及熱穩(wěn)定性(B)Fig.3 Effect of temperature on pectinase activity (A) and thermal stability (B)

        2.3.2 pH對(duì)果膠酶活性的影響

        由Aspergillus nomiusz4產(chǎn)生的果膠酶在不同pH下的酶活力變化如圖4A所示,該酶在pH 3.0~7.0范圍內(nèi)具有活性,在pH 6.0時(shí)酶活力最高,低于pH 5.5或高于pH 6.5的條件下酶活均明顯下降,說(shuō)明該果膠酶在弱酸性條件下顯示出較高的活性。酶的pH穩(wěn)定性結(jié)果如圖4B所示,該酶在pH 5.0~6.0條件下放置24 h后酶活力保留85%以上,說(shuō)明在此pH范圍內(nèi)酶活穩(wěn)定;而在pH4.0以下或pH 7.0以上保存24 h,酶活力迅速下降。

        圖4 pH值對(duì)酶活力的影響(A)及pH穩(wěn)定性(B)Fig.4 Effect of pH value on pectinase activity (A) and pH stability (B)

        2.3.3 酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)測(cè)定

        以果膠濃度的倒數(shù)(1/S)為橫坐標(biāo),酶促反應(yīng)速度的倒數(shù)(1/V)為縱坐標(biāo),制作Lineweaver-Rurk雙倒數(shù)曲線。由圖5可知,Aspergillus nomiusz4所產(chǎn)果膠酶對(duì)果膠的水解作用符合米氏方程。標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程為y=0.016x+0.01(相關(guān)系數(shù)R2=0.991 2),說(shuō)明曲線擬合良好。由回歸方程計(jì)算得到果膠酶的表觀米氏常數(shù)Km為1.60 mg/mL,最大反應(yīng)速率Vmax為100 mg/(mL·h)。與現(xiàn)有文獻(xiàn)報(bào)道相比,Aspergillus nomiusz4所產(chǎn)果膠酶具有更高的底物親和力[5,26]。

        圖5 雙倒數(shù)法測(cè)定紅綬曲霉z4所產(chǎn)果膠酶的動(dòng)力學(xué)參數(shù)Fig.5 Kinetic parameters of pectinase from Aspergillus nomius z4 by Lineweaver-Burk determination

        3 結(jié)論

        本研究采用以果膠為唯一碳源的培養(yǎng)基進(jìn)行平板分離,通過(guò)CTAB沉淀法從健康蘆葦植株中篩選出產(chǎn)果膠酶的內(nèi)生真菌,通過(guò)搖瓶培養(yǎng)測(cè)定各菌株所產(chǎn)果膠酶活力復(fù)篩,選出一株高產(chǎn)果膠酶的菌株z4,在28 ℃、150 r/min條件下培養(yǎng)72 h,其果膠酶酶活可達(dá)到40.52 U/mL。根據(jù)形態(tài)學(xué)特征和ITS序列分析,將z4菌株鑒定為紅綬曲霉(Aspergillus nomius)。該菌株已于2019年11月18日保藏于中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心,保藏編號(hào)為CCTCCM 2019946。該菌株所產(chǎn)果膠酶的最適反應(yīng)溫度為45 ℃,在30~40 ℃范圍內(nèi)保溫2 h,酶活力保留80%以上,說(shuō)明該酶具有較好的熱穩(wěn)定性;該酶的最適作用pH值為6.0,在pH 5.0~6.0條件下放置24 h,酶活力保留85%以上,說(shuō)明該酶在此pH范圍內(nèi)穩(wěn)定性較好。該酶對(duì)果膠具有較高親和力,以果膠為底物時(shí),米氏常數(shù)(Km)值和最大反應(yīng)速率(Vmax值)分別為1.60 mg/mL和100 mg/(mL·h)。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,蘆葦內(nèi)生真菌z4具有良好的果膠酶生產(chǎn)能力,今后可進(jìn)一步研究?jī)?yōu)化其培養(yǎng)基和發(fā)酵條件以高效地生產(chǎn)果膠酶。

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