金 鑫,孫永海
1 空軍特色醫(yī)學(xué)中心 麻醉科,北京 100142;2 解放軍總醫(yī)院第二醫(yī)學(xué)中心 綜合治療科,北京 100853
疼痛作為第五大生命體征,不同程度地影響著患者們的生活質(zhì)量,其中慢性病理性疼痛患者占比較大,是臨床上最棘手的癥狀之一。目前,臨床上常用的治療方案為地塞米松聯(lián)合其他藥物單次注射,雖然效果尚可,但長(zhǎng)期大量使用激素容易產(chǎn)生不良反應(yīng)及并發(fā)癥,如高血壓、高血糖、股骨頭壞死、真菌感染、消化道潰瘍,嚴(yán)重者可出現(xiàn)精神癥狀。磁性微球是近年來出現(xiàn)的一種靶向給藥技術(shù),不僅能局部給藥,達(dá)到控釋或緩釋的給藥效果,還能改善藥物對(duì)注射部位的刺激反應(yīng),減少藥物不良反應(yīng)的發(fā)生率。本研究擬制作一種可在局部用藥的地塞米松聚乳酸羥基乙酸(poly lactic-co-glycolic acid,PLGA)磁性微球,能夠逐步緩慢地釋放地塞米松,且可維持有效的治療濃度。而糖皮質(zhì)激素的局部應(yīng)用是慢性病理性疼痛最常用的治療方法,如地塞米松與其他藥物聯(lián)合的單次注射,其優(yōu)點(diǎn)是療效較好,缺點(diǎn)是長(zhǎng)期應(yīng)用并發(fā)癥較多,如骨質(zhì)疏松,消化道潰瘍,真菌感染、糖脂代謝障礙及精神狀況的改變。
近年來,由于緩釋技術(shù)的發(fā)展,磁性PLGA微球作為一種緩/控釋藥物的理想載體出現(xiàn)在大家面前。其不僅能控制藥物的釋放速度,且相容性也較好,還能局部給藥。如果制成糖皮質(zhì)激素微球,不僅可減少藥物的總用量,還可降低給藥頻次,從而減少激素總體的使用量。理論上,地塞米松制成該種微球可以降低激素使用者的并發(fā)癥,改善長(zhǎng)期預(yù)后。因此,本研究擬自制地塞米松PLGA磁性微球,期望為臨床上治療局部疼痛提供一種新的手段。
1 試劑與設(shè)備 1)藥品、試劑及耗材:地塞米松標(biāo)準(zhǔn)品(德國(guó)Sigma公司),PLGA(50/50)(山東省藥學(xué)科學(xué)院),聚乙烯醇(日本可樂麗公司),色譜柱(德國(guó)Thermo公司),甲醇(色譜純),其余均為分析純,弗氏完全佐劑(德國(guó)Sigma公司)。2)設(shè)備儀器:恒溫水浴震蕩儀(上海精宏有限公司),2120型號(hào)血細(xì)胞分析儀(德國(guó)拜耳醫(yī)療設(shè)備有限公司),CR3i型號(hào)高速離心機(jī)(德國(guó)Thermo公司),ZS-MV小動(dòng)物麻醉機(jī)專用氧源(北京眾實(shí)迪創(chuàng)發(fā)展有限責(zé)任公司),ZS-MV小動(dòng)物麻醉機(jī)(北京眾實(shí)迪創(chuàng)發(fā)展有限責(zé)任公司),Von Frey纖維絲(美國(guó)生物器械公司),LS-50B型號(hào)熒光/磷光分光光度計(jì)(美國(guó) Perkin Elmer 公司),大鼠吸入麻醉箱(軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院)。
2 微球的制備 根據(jù)前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果按地塞米松/藥物總和=1∶4、PLGA/Fe3O4=4∶1的投料比標(biāo)準(zhǔn),微球以固相(solid phase,S)/油相(oil phase,O)/水相(water phase,W)方法制作而成。具體步驟:將適量PLGA放入3 mL二氯甲烷中(O),3 000 r/min渦旋3 min左右,直至完全溶解。并按比例將納米Fe3O4粉末放入以上溶液中,超聲震蕩1 min。再將100 mg地塞米松粉劑(S)溶于二氯甲烷(O)中,超聲震蕩1 min,3 000 r/min渦旋2 min左右,直至完全溶解。之后,將以上混合溶液用滴管按30 drops/min的速度緩慢滴入濃度為2%的PVA溶液(W,O/W=1∶10)——該溶液此前已冰浴1 h。溶液揮發(fā)4 h,轉(zhuǎn)速1 800 r/min,直至二氯甲烷完全揮發(fā)。微球固化后,經(jīng)0.20 μm濾膜真空負(fù)壓過濾,收集微球,去離子水洗滌后凍干。
3 微球評(píng)價(jià)指標(biāo) 根據(jù)陶利軍等[1]的研究,微球質(zhì)量的評(píng)估采用以下公式:
S代表微球質(zhì)量的求和值;S1表示微球直徑,即跨距;S2表示微球的產(chǎn)率;S3表示微球的包封率;S4表示載藥量。
1)跨距(S1)與磁響應(yīng)性:將自制載藥微球(n≥500)涂于載玻片,使用雙蒸水將其分散,于光鏡下(400×)拍照并測(cè)定多個(gè)微球的跨距,統(tǒng)計(jì)后得出平均值[1]。磁響應(yīng)性:取自制載藥微球微球5 mg,用100 mL雙蒸水配成標(biāo)準(zhǔn)溶液;將微球溶液置于4 000 GS的磁場(chǎng)下,光鏡下(400×) 觀察其運(yùn)動(dòng)及分布。并在干燥后,稱取未吸附及吸附的微球根據(jù)以下公式算出磁吸附率(%):
吸附率=吸附微球 /(吸附微球+未吸附微球)×100%。
2)產(chǎn)率(S2)、包封率(S3)及載藥量(S4)計(jì)算公式[1]如下:
S2=wt(已包裹DXM+Fe)/wt(已投入DXM+Fe)×100%
S3=wt(已包裹DXM+Fe)/ wt(已投入所有成分)×100%
S4=wt(已包裹DXM)/wt(已投入所有成分)×100%
DXM表示“地塞米松”,F(xiàn)e表示“納米Fe3O4粉末”,wt表示藥物的“質(zhì)量”。
4 微球相關(guān)參數(shù)測(cè)定方法 1)色譜條件Hypersil C18 色譜柱(150 mm×4.6 mm,5μm)。流動(dòng)相乙腈:磷酸鹽緩沖液(25 mmol/L,pH=3.0,45∶55);流速1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)240 nm;柱溫:30℃。2) 對(duì)照品溶液的制備:精密稱取地塞米松對(duì)照品5 mg,與20 mL乙腈配成0.5 mg/mL溶液(D溶液)。3)標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:精密吸取10 μL、100 μL、200 μL、300 μL、400 μL、500 μL的D溶液,用流動(dòng)相稀釋并定容至5 mL,使其分別配成1倍、10倍、20倍、30倍、40倍、50倍濃度為百萬分之一的對(duì)照品溶液,并各取50 μL其溶液注入液相色譜儀,計(jì)算峰面積。以峰面積×對(duì)藥物濃度Y(mg/L)進(jìn)行線性回歸。4)回收率實(shí)驗(yàn):精密移取D溶液一定體積各5份,置于10 mL容量瓶中,用流動(dòng)相稀釋并定容。取50 μL注入液相色譜儀,根據(jù)峰面積算出回收率。5) 精密度實(shí)驗(yàn): 取地塞米松對(duì)照品(D溶液)1 mL,置于10 mL容量瓶,根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求,用不同容積的流動(dòng)相稀釋并定容。重復(fù)進(jìn)樣5次,記錄色譜圖,依據(jù)峰面積,算出相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差(relative standard deviation,RSD)。6)重復(fù)性實(shí)驗(yàn):取相同批號(hào)的地塞米松PLGA磁性微球若干,精密稱取5份,記錄色譜圖,依據(jù)峰面積,算出RSD數(shù)值。7) 樣品檢測(cè)方法:精密稱取地塞米松PLGA磁性微球10 mg,置于10 mL容量瓶中,用乙腈溶解定容后,過濾器過濾,移取濾液1 mL置于50 mL容量瓶中,流動(dòng)相稀釋并定容。取50 μL該溶液注入液相色譜儀,根據(jù)色譜圖峰面積得出最終濃度。
5 體外釋放 分別精密稱取投料比為1∶3、1∶4、1∶5的地塞米松PLGA磁性微球各10 mg,分別置于具塞燒瓶中,其中放入50 mL的PBS溶液(磷酸緩沖鹽,pH=7.4)。將燒瓶放入恒溫水浴震蕩儀中,水位超過PBS溶液平面。震蕩條件:36℃~37℃,100~120 min。在0.5 h、1.0 h、1.5 h、2.0 h、2.5 h、3.0 h之后,每間隔24 h采取上清液,直至第14天。每次移取樣本2 mL,每次采樣后等量填充,所采集樣本儲(chǔ)存于4℃冰箱保存。用前述的高效液相檢測(cè)其藥物濃度,并計(jì)算該藥物的釋放百分比,公式:
其中Q為該微球的累計(jì)釋放量(%),Ct為t時(shí)的PBS溶液里地塞米松的藥物濃度(μg/mL),V為藥物稀釋體積(mL),m為每瓶中地塞米松的總質(zhì)量。
6 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn) 將不同投料比的微球(n ≥ 500)分別置于EP管中,并將其放入4℃~8℃的冰箱中3個(gè)月,分別在放入后即刻和第1個(gè)月、第2個(gè)月、第3個(gè)月的第1天觀察其物理特征(光鏡下粒徑及外觀)是否改變,同時(shí)使用前述方法檢測(cè)其載藥量。
7 體外溶血實(shí)驗(yàn) 移液槍精確移取不同濃度的供試品各3份(0.3 mL/份)。A受試品:紅細(xì)胞懸液2.5 mL+ 0.9%氯化鈉注射液2.2 mL+X溶液0.3 mL;B陰性對(duì)照:紅細(xì)胞懸液2.5 mL+0.9%氯化鈉注射液2.5 mL;C陽性對(duì)照:紅細(xì)胞懸液2.5 mL+蒸餾水2.5 mL。將A+B+C溶液混勻,立即恒溫(36℃ ~ 37 ℃)水浴孵育3 h。將上述處理溶液離心(3 000 r/min,5 min)后,移取上清液,室溫靜置30 min。以B溶液(陰性對(duì)照)的上清液為空白標(biāo)準(zhǔn),根據(jù)540 nm處光譜掃描得出的吸光值,溶血率(%)計(jì)算公式:
HL%=At/Apc100%
At:受試樣品吸光值;Apc:陽性對(duì)照吸光值。
陰性對(duì)照吸光度≤0.03,陽性對(duì)照吸光度范圍(0.8±0.3),溶血率(%)<5%,說明該受試樣品無溶血作用[2]。2.2 mL+X溶液0.3 mL。B陰性對(duì)照:紅細(xì)胞懸液2.5 mL+0.9%氯化鈉注射液2.5 mL。C陽性對(duì)照:紅細(xì)胞懸液2.5 mL+蒸餾水2.5 mL。將以上A+B+C樣品混勻,立即置于恒溫水浴震蕩儀中孵育3 h,水溫為36℃~37℃。將上述處理的受試樣品離心,3 000 r/min、5 min,移取上清液,室溫靜置30 min。以陰性對(duì)照上清液為空白,根據(jù)540 nm處光譜掃描得出的吸光值,計(jì)算溶血率(%)公式:
HL%=At/Apc×100%
At受試樣品吸光值;Apc陽性對(duì)照吸光值。
陰性對(duì)照吸光度 ≤ 0.03,陽性對(duì)照吸光度范圍0.8±0.3,溶血率<5%,說明該受試樣品無溶血作用[2]。
8 體內(nèi)血液相容性實(shí)驗(yàn) 取9只清潔度為SD級(jí)別的成年雄性大鼠,體質(zhì)量為220 ~ 250 g,稱重后將上述供試品母液根據(jù)體質(zhì)量按照高劑量(0.8 mL/100 g)、中劑量(0.5 mL/100 g)及低劑量(0.2 mL/100 g)的標(biāo)準(zhǔn)經(jīng)尾靜脈注射入大鼠體內(nèi)[3-4]。且于注射前及注射后0.5 h、6 h、12 h、24 h眼眶靜脈輪流取血0.5 mL,置于抗凝管中并行血常規(guī)檢查。。
9 組織相容性實(shí)驗(yàn) 取6只清潔度為SD級(jí)別的成年雄性大鼠,體質(zhì)量為220 ~ 250 g,七氟醚吸入麻醉(3只/組)后,剃除背部毳毛,對(duì)照組皮下注射1 mL 0.9%氯化鈉注射液,實(shí)驗(yàn)組皮下注射供試品母液1 mL。第10天后取注射部位皮膚及皮下組織做HE染色。
10 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)數(shù)樣本比較采用χ2檢驗(yàn),計(jì)量資料組間兩兩比較采用配對(duì)t檢驗(yàn),組內(nèi)多樣本比較采用單因素方差分析。 P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1 微球形態(tài)與質(zhì)量評(píng)估 本實(shí)驗(yàn)自制地塞米松微球?yàn)榍蛐?、黑色、微小顆粒,在光鏡下(400×)多呈圓形,該微球求和值(S)為167.47±4.15;跨距(S1)為(29.66±10.02) μm。產(chǎn) 率(S2)為(87.25±3.14)%,包封率(S3)為(78.89±2.42)%,載藥量(S4)為(30.33±2.01)%。見圖1。
圖1 磁性微球光鏡下形態(tài)(1∶4)Fig.1 Optical microscope image of magnetic microspheres (1∶4)
2 磁響應(yīng)性 在磁場(chǎng)強(qiáng)度為4 000 GS時(shí),光學(xué)顯微鏡(400×)下見該地塞米松微球在乙醚溶液中的運(yùn)動(dòng)方向朝向磁鐵并呈不規(guī)則路線。其運(yùn)動(dòng)距離約為(80.0±5.0) mm直至瓶壁。
3 地塞米松標(biāo)準(zhǔn)曲線及色譜圖 標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為Y=1.241 63e-006X - 0.176 918 (R=0.999 9)。地塞米松峰值約為180 v,出峰時(shí)間約5 min (圖2)。
圖2 地塞米松色譜圖Fig.2 Dexamethasone chromatogram
4 回收率、精密度及重復(fù)性實(shí)驗(yàn) 1)回收率:該方法回收率≥90%,RSD為0.3%~1.1%。2)精密度:按照色譜圖,根據(jù)其峰面積算出精密度RSD為1.98%(n=5)。3)重復(fù)性實(shí)驗(yàn):測(cè)得地塞米松平均含量為81.33%,RSD為2.05%。以上結(jié)果均提示本實(shí)驗(yàn)采用的藥物檢測(cè)方法精密度好,準(zhǔn)確性高。
5 體外釋放 第2天地塞米松微球的體外累積釋放率為32.91%,第7天62.74%,第14天66.99%,其體外釋藥模型為Q=4.084 4t1/2+6.660 2 (R2=0.977),釋放曲線見圖3。
圖3 微球體外釋放線性趨勢(shì)Fig.3 In vitro release linear trend of microspheres
6 地塞米松PLGA磁性微球的穩(wěn)定性 置入4℃ ~8℃冰箱中的微球投料比雖然不同,但其載藥量及粒徑的變化均無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,物理性質(zhì)光鏡下也無明顯改變,說明穩(wěn)定性置于冰箱(4℃ ~ 8℃) 中的微球雖然批次不同,但形狀、跨距及載藥量在3個(gè)月內(nèi)均無明顯變化。
7 體外溶血實(shí)驗(yàn) 所有樣本經(jīng)過本實(shí)驗(yàn)得出濃度分別為 1 mg/mL、2 mg/mL、4 mg/mL的樣品吸光度為0.006、0.011、0.032;溶血率為0.5%、1.2%、3.3%(陽性對(duì)照和陰性對(duì)照的吸光度分別為0.802及0.003;溶血率分別為99.9%及0),按照溶血率≤5%為無溶血作用的標(biāo)準(zhǔn),以上樣本均無致溶血作用(表1)。
表1 不同待測(cè)樣品的吸光值及溶血率(n=3)Tab.1 Absorbance and hemolysis rate of different samples to be tested (n=3)
8 對(duì)大鼠血常規(guī)的影響 與大鼠給藥前的紅細(xì)胞、白細(xì)胞及血小板的計(jì)數(shù)及體積進(jìn)行比較,各組大鼠的注射不同劑量微球供試品后0.5 h、6 h、12 h、24 h的紅細(xì)胞、白細(xì)胞及血小板的計(jì)數(shù)及體積的變化均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。但與給藥前白細(xì)胞分類(%)比較,各組大鼠注射后6 h、12 h、24 h的中性粒細(xì)胞(%)明顯降低;而淋巴細(xì)胞(%)的變化則反之;單核細(xì)胞(%)則在12 h、24 h的變化有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異;嗜酸性粒細(xì)胞(%)在注射后0.5 h、6 h、12 h、24 h均明顯減少(P < 0.01);嗜堿性粒細(xì)胞的變化無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見表2。
表2 不同劑量微球?qū)Υ笫蟀准?xì)胞分類的影響(%)Tab.2 Effects of different dosages of microspheres on leukocytes (%)
9 組織相容性 局部注射后兩組大鼠背部皮膚第10天均無病理性改變。兩者無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。見圖4。
圖4 實(shí)驗(yàn)組(A)和對(duì)照(B)組大鼠微球注射10 d前后病理切片對(duì)比(400×)Fig.4 Comparison of pathological sections between the experimental group (A) and the control group (B) of rats before and after microspheres injection for 10 days (400×)
PLGA磁性微球作為靶向給藥時(shí)一種較好的藥物載體,其特點(diǎn)是為緩釋時(shí)間長(zhǎng)、突釋量小、載藥量高[5-6]。本實(shí)驗(yàn)自制的地塞米松微球(1∶4)其包封率、產(chǎn)率及磁響應(yīng)性均較好,該特性對(duì)于磁場(chǎng)引導(dǎo)下的靶向治療非常有利。該微球已獲批發(fā)明專利,專利號(hào)為201810537459.3,專利人為孫永海、孫暢、金鑫。
PLGA磁性微球體外代謝根據(jù)釋放速度分為兩個(gè)階段——突釋相和緩釋相。本實(shí)驗(yàn)自制微球體外釋放的突釋相,第2天累計(jì)釋放率為32.91%,約為總量的1/3;而后釋放速度逐漸減緩,即為緩釋相,至第14天釋放了66.99%,即總量的2/3。說明該微球在第2~14天又釋放了1/3,其緩釋性較好。比我們前期實(shí)驗(yàn)所做投料比為1∶3及1∶5的微球緩釋性更好。
可能影響藥物突釋的原因。1)微球制作過程中部分沒有完全包裹進(jìn)去的藥物停留在微球的表面、近表面或者內(nèi)部空洞周圍,在釋放初期形成突釋相。2) PLGA的質(zhì)量及純度,負(fù)荷藥物的理化性質(zhì)及載藥量,微球制備方法及儀器參數(shù)等均是影響因素[7-8]。Bao等[9]的研究結(jié)果表明體外累積釋放率與PLGA分子之間自我降解的程度與速度相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)在初期選材時(shí),就PLGA/PLA比例的選擇參考了于力等[10]的研究,其研究報(bào)道PLGA含量較高時(shí)微球親水性較差,但降解速度較PLA更快,二者適當(dāng)比例混合可取長(zhǎng)補(bǔ)短。其中以75/25和50/50比例制作出來的微球較好,但預(yù)實(shí)驗(yàn)時(shí)PLGA/PLA(75/25)跨距約100 μm,而PLGA/PLA (50/50)跨距約30 μm。因不是在同一時(shí)間所測(cè),其差異不排除與制作參數(shù)及流程日益成熟有關(guān)。
關(guān)于生物相容性方面,溶血性實(shí)驗(yàn)是唯一由國(guó)家規(guī)定標(biāo)準(zhǔn)流程的檢驗(yàn)方法[11]。其影響因素有微球的跨距、形狀及濃度等。Tomic等[12]的研究表明在相同濃度下,微球的跨距與溶血率成反比,即跨距越大溶血率越小[13]。該現(xiàn)象可能與細(xì)胞的吞噬相關(guān),尤其是微球跨距≤10 μm時(shí)更容易被外周巨細(xì)胞及巨噬細(xì)胞所吞噬加速其降解[11]。但微球跨距較大不容易通過注射器的針頭,使其臨床應(yīng)用受限,所以微球跨距要適中。形狀規(guī)則圓整的微球也與降低溶血率相關(guān)性較高[14-15]。本實(shí)驗(yàn)中的自制載藥微球因其跨距為25 ~ 30 μm,不易被吞噬,并且形狀規(guī)則圓整,通針率較高,對(duì)血細(xì)胞的破壞性較小。另外,濃度也是一重要影響因素,即不同濃度的微球溶液的溶血率也不同。Zhang等[16]的研究顯示1.5 mg/mL的微球溶液溶血率較其他組別更低。該現(xiàn)象或許與溶液的滲透壓或張力有關(guān)。目前,本研究自制的微球所配制不同濃度的溶液,其溶血率均未超過5%,說明該自制微球符合國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。
體內(nèi)血液相容性實(shí)驗(yàn)顯示該自制微球注入大鼠體內(nèi)后,白細(xì)胞、紅細(xì)胞和血小板的體積及計(jì)數(shù)與之前比較無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。但在白細(xì)胞分類方面卻有明顯影響,如大鼠注射微球6 h后,淋巴細(xì)胞占比明顯升高,而中性粒細(xì)胞則反之。在大鼠注射微球12 h后,單核細(xì)胞占比也明顯升高,而嗜酸粒細(xì)胞則反之。以上表象均可能與微球進(jìn)入體內(nèi)后被大鼠身體當(dāng)作異物,從而導(dǎo)致白細(xì)胞的吞噬行為有關(guān)。Soliman等[17]的研究也提示了該現(xiàn)象,但并不能因此簡(jiǎn)單推斷該微球的生物相容性欠佳,該現(xiàn)象卻是大鼠身體對(duì)異物正常反應(yīng)的結(jié)果。通常當(dāng)微球進(jìn)入體內(nèi)后身體會(huì)出現(xiàn)一系列反應(yīng),主要分為三個(gè)階段[18]。第一階段:當(dāng)微球剛進(jìn)入體內(nèi)時(shí),體內(nèi)的排異反應(yīng)使藥物與組織交界處發(fā)生炎癥反應(yīng),且以嗜酸粒細(xì)胞與中性粒細(xì)胞浸潤(rùn)為主,本研究結(jié)果也與此類似。第二階段:當(dāng)微球進(jìn)入體內(nèi)14天后,在組織與藥物交界處會(huì)發(fā)現(xiàn)纖維包裹現(xiàn)象。其出現(xiàn)與維持時(shí)間和微球降解速度有關(guān)。第三階段:主要為微球降解后期,也就是微球已經(jīng)逐漸降解為小顆粒之后的階段。在本研究中,大鼠注射微球后第10天,皮下組織的病理切片并無炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)及其他皮膚組織病理性改變,另外注射部位的外觀亦無明顯變化,大鼠的行為學(xué)也無變化。所以并未做之后的病理切片。因?yàn)槲⑶蜻M(jìn)入體內(nèi)時(shí),與病毒、細(xì)菌一樣都會(huì)被認(rèn)為是異物,引發(fā)細(xì)胞啟動(dòng)自身免疫系統(tǒng),但微球?qū)C(jī)體的治療作用大于其啟動(dòng)免疫應(yīng)答而引發(fā)的炎癥反應(yīng),利大于弊。并且隨著時(shí)間推移免疫反應(yīng)會(huì)逐漸減弱直至消失。綜上所述,該自制微球組織的相容性良好,注射后并未導(dǎo)致明顯的炎癥反應(yīng)及其他不良表現(xiàn)。
總之,本研究自制的地塞米松PLGA磁性微球(1∶4),從跨距、包封率、產(chǎn)率、載藥量方面評(píng)價(jià)均為良好,其血液及組織相容性也符合國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。因此該自制磁性微球?yàn)橐环N較理想的靶向給藥載體。但本研究并未做體內(nèi)釋放試驗(yàn),但初步推測(cè)由于身體內(nèi)環(huán)境復(fù)雜因素的影響會(huì)導(dǎo)致體內(nèi)釋放速度和方式較體外釋放均不同[19-20]。