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        植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵條件優(yōu)化

        2021-06-04 14:03:04楊江華韋宇拓
        中國釀造 2021年5期
        關(guān)鍵詞:植物生長優(yōu)化

        李 娜,楊江華,韋宇拓

        (廣西大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院 亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西 南寧 530004)

        乳酸菌是指發(fā)酵糖類后主要產(chǎn)物為乳酸的一類沒有芽孢的革蘭氏陽性細(xì)菌[1-2],因其具有耐膽鹽、耐酸、抑制有害微生物生長等益生功能,被廣泛應(yīng)用于發(fā)酵食品和飲料的生產(chǎn)中[2-3]。

        植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)是目前常用的益生菌之一,常見于奶油、肉類及許多蔬菜發(fā)酵制品中,而且在人體胃腸道也常發(fā)現(xiàn)它的存在[4-5],其具有抗衰老[6]、減輕腸道生態(tài)失調(diào)[7]、提高青貯有氧穩(wěn)定性[8]等功能。近幾年,國內(nèi)外研究學(xué)者陸續(xù)發(fā)現(xiàn)了植物乳桿菌的其他功能,如植物乳桿菌CCFM436可以減少錳離子在組織中的積累[9];植物乳桿菌H6可顯著降低高膽固醇血癥飲食小鼠的血清膽固醇水平[10];植物乳桿菌發(fā)酵顯著降低了水稻中鎘的水平,并且被認(rèn)為是開發(fā)無鎘大米食品的一種策略[11]。

        高細(xì)胞密度發(fā)酵(high cell density fermentation,HCDF)是指在一定的培養(yǎng)條件和體系內(nèi),在不影響胞內(nèi)產(chǎn)物積累的基礎(chǔ)上,盡可能多的積累生物量[12-14]。工業(yè)化生產(chǎn),需要用低成本的培養(yǎng)基發(fā)酵生產(chǎn)出更高的產(chǎn)物。高密度培養(yǎng)核心在于為菌體提供合適的營養(yǎng)成分和生長條件[15-16]。隨著食品、飼料等需規(guī)?;a(chǎn)的產(chǎn)品對發(fā)酵工藝的要求逐步提高,摸索發(fā)酵劑的高活力的保存便顯得更加重要[17-18]。本研究的主要目的是以植物乳桿菌ZJ316為研究對象,在MRS液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,采用單因素試驗(yàn)及響應(yīng)面試驗(yàn)對其高密度發(fā)酵的培養(yǎng)基組成及發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,為今后植物乳桿菌的保藏以及作為發(fā)酵劑奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 菌種和試劑

        1.1.1 菌種

        植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)ZJ316:由廣西大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室篩選并保藏。

        1.1.2 試劑

        蔗糖、牛肉膏、酵母粉、磷酸氫二鉀、七水硫酸鎂、四水硫酸錳、檸檬酸銨、三水合乙酸鈉、檸檬酸(均為分析純或生化試劑):上海生物工程有限公司;吐溫80(分析純):國藥集團(tuán)試劑有限公司;玉米漿干粉:北京鴻潤寶順有限公司。

        1.1.3 培養(yǎng)基

        MRS液體培養(yǎng)基[19]:葡萄糖20.00 g,蛋白胨10.00 g,牛肉膏5.00 g,酵母粉4.00 g,吐溫80 1.00 mL,七水磷酸氫二鉀2.00 g,七水硫酸鎂0.20 g,四水硫酸錳0.05 g,檸檬酸三銨2.00 g,三水合乙酸鈉5.00 g,加蒸餾水至1 000 mL,調(diào)節(jié)pH值為6.2。115 ℃高壓蒸汽滅菌15 min。固體培養(yǎng)基中添加15 g瓊脂粉。

        1.2 儀器與設(shè)備

        GNP-9160隔水式恒溫培養(yǎng)箱:上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;雷磁E-201-C pH計(jì):上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;U Quamt TM酶標(biāo)儀:美國Biotek公司;Eppendorf Centrifuge 5415D臺式離心機(jī):德國Eppendorf公司;BIOTECH-5BG-4 5L多聯(lián)發(fā)酵罐:上海保興生物設(shè)備工程有限公司。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        1.3.1 菌體密度的測定

        將發(fā)酵后的菌液稀釋至合適的倍數(shù),用紫外分光光度計(jì)測定菌液在波長600 nm處的吸光度值(OD600nm值)。

        1.3.2 活菌數(shù)的測定

        乳酸菌活菌數(shù)的測定方法按照國標(biāo)GB 4789.35—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品微生物學(xué)檢驗(yàn)乳酸菌檢驗(yàn)》[20]執(zhí)行。

        1.3.3 pH值的測定

        采用pH計(jì)在室溫條件下測定發(fā)酵后菌液的pH值。

        1.3.4 種子液的制備

        將在-80 ℃冰箱中甘油保存的菌種,在MRS固體培養(yǎng)基上劃線,挑取單菌落至MRS液體培養(yǎng)基中,放置37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)10 h,作為種子液。

        1.3.5 植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化單因素試驗(yàn)

        碳源種類及其添加量的確定:用20 g/L的麥芽糖、蔗糖、α-乳糖、淀粉依次代替MRS液體培養(yǎng)基的葡萄糖。按2%(V/V)的接種量接種于含有50 mL不同碳源培養(yǎng)基的250 mL的錐形瓶中,初始pH值為6.2,在37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中靜置發(fā)酵24 h,然后測定菌液的菌體密度。篩選出最適碳源后,考察碳源添加量(10 g/L、30 g/L、50 g/L、70 g/L、90 g/L)對菌體密度的影響。

        氮源種類及其添加量的確定:在優(yōu)化碳源的基礎(chǔ)上,用19 g/L的玉米漿干粉、酵母粉、蛋白胨、大豆蛋白胨、牛肉膏依次代替MRS液體培養(yǎng)基中的主要氮源(蛋白胨、牛肉膏、酵母粉),以優(yōu)化碳源后的MRS培養(yǎng)基作為對照。測定菌液的菌體密度,篩選出最適氮源。在此基礎(chǔ)上,考察氮源添加量(0、20 g/L、60 g/L、100 g/L、140 g/L)對菌體密度的影響。

        緩沖鹽種類及濃度的確定:在碳氮源優(yōu)化的基礎(chǔ)上,用NaH2PO4-Na2HPO4、KH2PO4-Na2HPO4、Na2HPO4-檸檬酸緩沖鹽體系依次代替MRS液體培養(yǎng)基中的緩沖鹽(乙酸鈉、磷酸氫二鉀、檸檬酸三銨),三種緩沖鹽體系的濃度分別選擇0、0.05 mol/L、0.10 mol/L、0.15 mol/L、0.20 mol/L。測定菌液的菌體密度,篩選出最適緩沖鹽。

        微量元素添加量的確定:在最適碳、氮源、緩沖鹽的基礎(chǔ)上,依次考察硫酸鎂添加量(0、0.2 g/L、0.4 g/L、0.8 g/L、1.2 g/L)、硫酸錳添加量(0.05 g/L、0.1 g/L、0.2 g/L、0.3 g/L、0.4g/L)、吐溫80添加量(0.5mL/L、1.0mL/L、2.0mL/L、3.0mL/L、4.0 mL/L)對菌體密度的影響。

        1.3.6 植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化響應(yīng)面試驗(yàn)

        根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,選取對菌體密度影響顯著的3個(gè)因素蔗糖添加量(A)、玉米漿干粉添加量(B)、Na2HPO4-檸檬酸濃度(C)為考察因素,以O(shè)D600nm值為響應(yīng)值,利用Design-Expert 12.0軟件的Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行3因素3水平的響應(yīng)面試驗(yàn),試驗(yàn)因素與水平見表1。

        表1 植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化Box-Behnken試驗(yàn)因素與水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken tests for Lactobacillus plantarum ZJ316 high-density fermentation medium optimization

        1.3.7 植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵培養(yǎng)條件的優(yōu)化

        采用優(yōu)化后的培養(yǎng)基,將初始pH值調(diào)為6.2,依次考察接種量(1%、2%、3%、4%和5%)、發(fā)酵溫度(20 ℃、25 ℃、30 ℃、35 ℃、40 ℃)、初始pH值(5.0、5.5、6.0、6.5、7.0)對菌體密度的影響。

        1.3.8 植物乳桿菌ZJ316生長曲線的測定

        將活化之后的植物乳桿菌ZJ316的種子液接種于3 L優(yōu)化培養(yǎng)基(5 L發(fā)酵罐),在優(yōu)化條件進(jìn)行發(fā)酵,每隔3 h取樣檢測其活菌數(shù)、OD600nm值,每個(gè)時(shí)間點(diǎn)做三個(gè)平行,以MRS液體培養(yǎng)基為對照,繪制出菌株在優(yōu)化培養(yǎng)基和MRS液體培養(yǎng)基的生長曲線。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化試驗(yàn)

        2.1.1 碳源的選擇

        碳源種類及其添加量對植物乳桿菌ZJ316生長的影響見圖1。

        圖1 不同碳源種類(a)及蔗糖添加量(b)對植物乳桿菌ZJ316生長的影響Fig.1 Effect of different carbon source types(a)and sucrose additions(b)on the growth of Lactobacillus plantarum ZJ316

        由圖1a可知,當(dāng)20 g/L的麥芽糖作為碳源時(shí),OD600nm值最高為2.31,蔗糖、α-乳糖次之,淀粉最低,說明植物乳桿菌ZJ316對麥芽糖的利用效率最好,這與DONG Z等[21]的研究結(jié)果一致。雖然植物乳桿菌ZJ316對麥芽糖利用效率最好,但是價(jià)格昂貴,根據(jù)節(jié)約成本原則,后續(xù)將選擇蔗糖作為培養(yǎng)基的最適碳源。

        由圖1b可知,當(dāng)蔗糖添加量為30 g/L時(shí),植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值最高達(dá)到2.30,繼續(xù)增加蔗糖添加量至90 g/L,OD600nm值下降至2.06。這可能是由于碳源濃度過高,抑制了植物乳桿菌ZJ316的生長代謝。因此,確定蔗糖的最適添加量為30 g/L。

        2.1.2 氮源的選擇

        氮源種類及其添加量對植物乳桿菌ZJ316生長的影響見圖2。

        圖2 不同氮源種類(a)及玉米漿干粉添加量(b)對植物乳桿菌ZJ316生長的影響Fig.2 Effect of different nitrogen source types(a)and corn syrup powder additions(b)on the growth of Lactobacillus plantarum ZJ316

        由圖2a可知,當(dāng)酵母粉作為氮源時(shí),植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值最高為2.55,其次是玉米漿干粉。NORO N等[22]研究表明,玉米漿干粉可在發(fā)酵過程中維持培養(yǎng)基的pH值在4.6~4.8之間,減小發(fā)酵時(shí)所產(chǎn)乳酸對發(fā)酵體系pH值的影響,減緩培養(yǎng)基pH值降低對菌體生長的抑制,為植物乳桿菌提供更好的生存環(huán)境,從而更有助于菌體的生長[23]。由于玉米漿干粉與酵母粉的結(jié)果不存在顯著性差異(P>0.05),考慮到經(jīng)濟(jì)因素,后續(xù)將選擇玉米漿干粉作為最適氮源。

        由圖2b可知,隨著玉米漿干粉添加量的增加,植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值呈先升高后降低的趨勢。當(dāng)玉米漿干粉添加量為60 g/L時(shí),植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值最高為2.47,由于添加量20 g/L和60 g/L對結(jié)果的影響沒有顯著性差異(P>0.05),考慮到經(jīng)濟(jì)因素,確定玉米漿干粉的最適添加量為20 g/L。

        2.1.3 緩沖鹽的選擇

        由圖3可知,在Na2HPO4-檸檬酸緩沖鹽體系中,植物乳桿菌ZJ316的菌體密度明顯高于其余兩組緩沖鹽,當(dāng)其濃度為0.1 mol/L時(shí),菌體密度最高,OD600nm能達(dá)到3.58。這可能與檸檬酸有很強(qiáng)的氧化能力有關(guān),它屬于有機(jī)酸,有機(jī)酸在發(fā)酵過程中被利用,會(huì)使發(fā)酵體系的pH值上升,尤其是有機(jī)酸鹽氧化會(huì)伴隨著堿性物質(zhì)的產(chǎn)生,使pH值進(jìn)一步上升,從而緩解了發(fā)酵過程中乳酸的產(chǎn)生對發(fā)酵液體系pH值的影響,更有利于菌體的生長[24]。因此,后續(xù)將選擇Na2HPO4-檸檬酸緩沖鹽作為最適緩沖鹽體系。

        圖3 不同緩沖鹽體系及濃度對植物乳桿菌ZJ316生長的影響Fig.3 Effect of different buffer salt systems and concentrations on the growth of Lactobacillus plantarum ZJ316

        2.1.4 微量元素添加量的選擇

        由圖4a可知,隨著硫酸鎂添加量的升高,植物乳桿菌ZJ316的菌體密度呈先升高后下降的趨勢。當(dāng)硫酸鎂添加量為0.2 g/L時(shí),植物乳桿菌ZJ316的菌體密度最高,為3.59。因此,確定硫酸鎂的最適添加量為0.2 g/L。

        圖4 不同MgSO4(a)、MnSO4(b)及吐溫80(c)添加量對植物乳桿菌ZJ316生長的影響Fig.4 Effect of different MgSO4(a),MnSO4(b) and Tween 80 (c)additions on the growth of Lactobacillus plantarum ZJ316

        由圖4b可知,當(dāng)培養(yǎng)基中硫酸錳的添加量為0.1 g/L時(shí),植物乳桿菌ZJ316的菌體密度最高,為3.61。當(dāng)硫酸錳添加量>0.1 g/L之后,菌密度有略微下降。可能是因?yàn)榕囵B(yǎng)基中過高的金屬離子錳,抑制了植物乳桿菌ZJ316的生長,從而導(dǎo)致菌體密度下降。因此,確定硫酸錳的最適添加量為0.1 g/L。

        由圖4c可知,當(dāng)吐溫80添加量為1 mL/L時(shí),植物乳桿菌ZJ316的菌密度最高,為3.64。當(dāng)吐溫80添加量>1mL/L之后,菌體密度下降。因此,確定吐溫80的最適添加量為1 mL/L。

        2.1.5 響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果

        利用Design Expert 12.0軟件對影響植物乳桿菌ZJ316生長的3個(gè)主要因素進(jìn)行3因素3水平的Box-Behnken試驗(yàn),試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見表2,方差分析結(jié)果見表3。

        表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Design and results of Box-Behnken tests

        表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of regression model

        通過Design Expert 12.0軟件對表2的試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,得到響應(yīng)值OD600nm值(Y)與蔗糖添加量(A)、玉米漿干粉添加量(B)、Na2HPO4/檸檬酸緩沖鹽濃度(C)的關(guān)系的多元二次回歸方程:

        由表3可知,模型的P值<0.000 1,極顯著;失擬項(xiàng)的P值=0.051 3>0.05,不顯著;并且模型的決定系數(shù)R2=0.986 8,調(diào)整決定系數(shù)R2adj=0.969 8,說明該模型可以很好的擬合實(shí)際情況,具有較高的可靠性。由表3亦可知,一次項(xiàng)A、B、交互項(xiàng)AC及二次項(xiàng)A2、B2、C2對結(jié)果影響極顯著(P<0.01),交互項(xiàng)AB對結(jié)果影響顯著(P<0.05),其他項(xiàng)對結(jié)果影響不顯著(P>0.05)。

        蔗糖、玉米漿干粉、Na2HPO4-檸檬酸三者的交互作用形成的響應(yīng)曲面和等高線圖見圖5。由圖5可知,AB、AC的等高線圖呈橢圓形,說明AB、AC交互作用明顯,該結(jié)果與方差分析結(jié)果一致。

        圖5 蔗糖、玉米漿干粉、Na2HPO4-檸檬酸交互作用對植物乳桿菌ZJ316生長影響的響應(yīng)面及等高線圖Fig.5 Response surface plots and contour lines of effects of interaction between sucrose,dried corn steep liquor powder and Na2HPO4-citric acid on the growth of Lactobacillus plantarum ZJ316

        2.1.6 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果的驗(yàn)證

        根據(jù)模型可以得出,當(dāng)蔗糖添加量為43.41 g/L,玉米漿干粉添加量為59.46 g/L,Na2HPO4-檸檬酸緩沖鹽濃度為0.12 mol/L時(shí),植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值最大理論預(yù)測值為4.004,在此條件下做驗(yàn)證試驗(yàn),重復(fù)3次試驗(yàn),得到植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值為4.065±0.020,與預(yù)測值相近,說明模型可靠,因此,該模型可用于預(yù)測植物乳桿菌ZJ316培養(yǎng)基菌體密度的變化。

        2.2 植物乳桿菌ZJ316高密度發(fā)酵培養(yǎng)條件的優(yōu)化

        由圖6a可知,隨著接種量的增大,植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值呈先升高后下降的趨勢。當(dāng)接種量為4%時(shí),植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值可達(dá)4.31;當(dāng)接種量>4%之后,OD600nm值下降,可能是因?yàn)槌跏冀臃N量太大,導(dǎo)致菌體大量生長,而培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質(zhì)不能滿足大量菌體同時(shí)生長,致使菌體密度發(fā)生下降。因此,確定最適接種量為4%,該結(jié)果與陳百瑩等[25]的研究結(jié)果一致。

        圖6 接種量(a)、發(fā)酵溫度(b)及初始pH值(c)對植物乳桿菌ZJ316生長的影響Fig.6 Effect of inoculum (a),fermentation temperature (b) and initial pH value (c) on the growth of Lactobacillus plantarum ZJ316

        由圖6B可知,隨著發(fā)酵溫度的升高,植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值呈先升高后下降的趨勢。當(dāng)發(fā)酵溫度為30 ℃時(shí),植物乳桿菌ZJ316的菌體密度最高達(dá)5.00,隨著培養(yǎng)溫度的升高,OD600nm值急劇下降,可能是因?yàn)楦邷貢?huì)使植物乳桿菌ZJ316的胞內(nèi)酶失活,從而影響菌體生長。因此,確定最適發(fā)酵溫度為30 ℃。

        由圖6c可知,當(dāng)初始pH值在5.0~6.5的范圍內(nèi)時(shí),隨著pH值的升高,植物乳桿菌ZJ316的菌體密度不斷提高;當(dāng)初始pH值為6.5時(shí),菌體密度到達(dá)峰值為5.17;當(dāng)初始pH值增加到7.0時(shí),菌體密度明顯下降,可能是過堿的環(huán)境不利于菌體的生長。因此,確定最佳初始pH值為6.5。

        2.3 植物乳桿菌ZJ316的生長曲線

        為了探索植物乳桿菌的工業(yè)化生產(chǎn)工藝路線,選擇了5 L發(fā)酵罐的小試發(fā)酵體系進(jìn)行放大實(shí)驗(yàn)。在優(yōu)化培養(yǎng)基以及培養(yǎng)條件的基礎(chǔ)上,對植物乳桿菌ZJ316進(jìn)行高密度發(fā)酵,同時(shí)以MRS培養(yǎng)基作為對照,測得的生長曲線見圖7。

        圖7 植物乳桿菌ZJ316的生長曲線Fig.7 Growth curve of Lactobacillus plantarum ZJ316

        由圖7可知,植物乳桿菌ZJ316在優(yōu)化培養(yǎng)基中的菌體密度遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于MRS液體培養(yǎng)基。在優(yōu)化培養(yǎng)基中,培養(yǎng)24 h后進(jìn)入穩(wěn)定期,OD600nm值達(dá)到5.13,對數(shù)生長期延長,更加有利于菌體的生長和產(chǎn)物的積累。

        3 結(jié)論

        在MRS液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,通過單因素及響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化得到植物乳桿菌ZJ316高密度培養(yǎng)的最優(yōu)培養(yǎng)基組分為蔗糖43.41 g/L、玉米漿干粉59.46 g/L、Na2HPO4-檸檬酸0.12 mol/L、MgSO4·7 H2O 0.20 g/L、MnSO4·H2O 0.10 g/L、吐溫80 1 ml/L;最優(yōu)培養(yǎng)條件為接種量4%、培養(yǎng)溫度30 ℃、初始pH值6.5。在此優(yōu)化條件下,經(jīng)發(fā)酵罐培養(yǎng)24 h,植物乳桿菌ZJ316的OD600nm值達(dá)到5.13,活菌數(shù)最高可達(dá)8.01×109CFU/mL,相比于MRS液體培養(yǎng)基分別提高1.65、3.44倍。優(yōu)化后的培養(yǎng)基采用蔗糖作為主要碳源,并且采用廉價(jià)的玉米漿干粉作為氮源,減少了經(jīng)濟(jì)成本,簡化了培養(yǎng)基的制備步驟。

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