周巧麗,付 強,王 琪,胡夢琪,金 岳,趙豐麗,2*
(1.廣西師范大學 生命科學學院,廣西 桂林 541006;2.珍稀瀕危動植物生態(tài)與環(huán)境保護教育部重點實驗室,廣西 桂林 541006)
糖尿病已經(jīng)成為嚴重危害人類健康的重大公共衛(wèi)生問題。據(jù)國際糖尿病聯(lián)盟最新數(shù)據(jù)顯示,目前有4.63億成年人患有糖尿病[1],2019年有420萬名20~79歲的成年人死于糖尿病[2]。全球糖尿病的直接健康支出為7 600億美元,其中中國的糖尿病年度健康支出為1 090億美元[3]。糖尿病及其并發(fā)癥對個人、家庭以及國民經(jīng)濟具有重大的影響。因此,有效地預(yù)防和治療糖尿病及其并發(fā)癥至關(guān)重要[4]。
α-葡萄糖苷酶抑制劑(α-glucosidase inhibition,α-GI)通過抑制α-葡萄糖苷酶,可有效地延緩腸道碳水化合物的消化吸收以維持餐后血糖正常,已廣泛應(yīng)用于2型糖尿病的治療[5]。目前臨床上該類藥品有阿卡波糖、伏格列波糖和米格列醇等,在國內(nèi)外均具有可觀的市場銷量[6],但存在藥物種類少、價格高、胃腸道反應(yīng)大、不良反應(yīng)發(fā)生率高等問題[7-8]。因此,開發(fā)安全高效的新型α-GI具有廣泛的前景[9-10]。
羅漢果具有降糖作用[11-12],基于共生理論,其內(nèi)生菌可能也會產(chǎn)生降糖類物質(zhì)[13]。龍楚媚等[14-15]從羅漢果內(nèi)生菌中篩選出產(chǎn)α-淀粉酶抑制劑的菌株,羅漢果內(nèi)生菌作為降糖活性物質(zhì)篩選來源尚有待探究。本研究從羅漢果內(nèi)生菌中篩選出產(chǎn)α-葡萄糖苷酶抑制劑的菌株,對其進行形態(tài)學觀察及分子生物學鑒定,采用單因素試驗及正交試驗優(yōu)化菌株發(fā)酵條件,并對其活性部位進行追蹤,以期為羅漢果內(nèi)生菌來源的α-GI的開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 菌種
羅漢果內(nèi)生菌株:廣西師范大學發(fā)酵工程實驗室保藏。
1.1.2 主要試劑
α-葡萄糖苷酶(酶活50 U/mg)、對硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(p-nitrophenyl-α-D-glucopyranoside,PNPG)(純度99%):上海源葉生物科技有限公司;阿卡波糖:杭州中美華東制藥有限公司;葡萄糖、氯化鈉、碳酸鈉(均為分析純):西隴化工股份有限公司。
1.1.3 培養(yǎng)基
種子培養(yǎng)基:酵母粉5 g/L,蛋白胨10 g/L,NaCl 5 g/L,蒸餾水1 000 mL,121 ℃滅菌30 min。
發(fā)酵培養(yǎng)基:取去皮土豆200 g,切塊煮沸30 min,八層紗布過濾,加入20 g葡萄糖,定容至1 L,pH自然,121 ℃滅菌30 min。
馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:同發(fā)酵培養(yǎng)基,另加20 g瓊脂,pH自然,121 ℃滅菌30 min。
YM75型立式壓力蒸汽滅菌鍋:上海三申醫(yī)療器械有限公司;ZD-85型恒溫振蕩器:國華儀器制造有限公司;HP400S型生化培養(yǎng)箱:武漢瑞華儀器設(shè)備有限責任公司;BX63型熒光成像分析系統(tǒng)顯微鏡:日本Olympus公司;Infinite M200Pro酶標儀:帝肯貿(mào)易有限公司。
1.3.1 菌株活化與發(fā)酵培養(yǎng)
取36株保藏的羅漢果內(nèi)生菌株,分別劃線接種于PDA平板培養(yǎng)基上,28 ℃靜置培養(yǎng)3 d。挑取單菌落一環(huán)接種于裝100 mL種子培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中,置于28℃、160 r/min搖床培養(yǎng)3 d,按1%接種量轉(zhuǎn)接至發(fā)酵培養(yǎng)基中,28 ℃、160 r/min條件下振蕩培養(yǎng)7 d,得發(fā)酵液用于目的菌株的篩選。
1.3.2α-葡萄糖苷酶抑制劑產(chǎn)生菌的篩選
采用對硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG)法進行篩選,參照LIMA R A T等[16-17]的方法具體如下:在96孔酶標板上,樣品組(發(fā)酵原液)依次加入50 μL樣液和100 μL的α-葡萄糖苷酶溶液(0.125 U/mL),37℃保溫10 min,加入50μL的PNPG(5 mmol/L)混勻,37 ℃反應(yīng)20 min,最后加入50 μL 0.2 mol/L的Na2CO3溶液中止反應(yīng),酶標儀(檢測波長405 nm)測其吸光度值。1 μg/mL的阿卡波糖溶液作陽性對照組,樣品空白組中用相同體積的磷酸緩沖液代替酶液,其余與樣品組相同。對照組中不加發(fā)酵液,用磷酸緩沖液補齊。對照空白組中不加酶液,其余與對照組相同,用磷酸緩沖液補齊。樣品對α-葡萄糖苷酶抑制率的計算公式如下:
式中:A樣品為樣品組的吸光度值;A樣品空白為樣品空白組的吸光度值;A對照為對照組的吸光度值;A對照空白為對照空白組的吸光度值。
1.3.3 菌株鑒定
形態(tài)觀察:采用平板劃線分離法將所篩目的菌株接種到PDA培養(yǎng)基上,置37 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)1 d,觀察菌落形態(tài),初步確認為細菌后進行革蘭氏染色和芽孢染色[18]觀察。
分子生物學鑒定:由武漢華大基因科技有限公司對菌株進行16S核糖體RNA基因(16S ribosomal DNA,16S rDNA)測序,使用基于局部比對算法的搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)將測序結(jié)果與美國國立生物技術(shù)信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)的GenBank數(shù)據(jù)庫已知序列進行比對,并利用MEGA7.0軟件中的鄰接法(neighbor-joining,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.3.4 目的菌株搖瓶發(fā)酵條件優(yōu)化
單因素試驗:設(shè)置基本發(fā)酵條件為pH自然,按1%的接種量將目的菌株的種子液接入裝液量為100 mL/250 mL的發(fā)酵培養(yǎng)基中,于28 ℃、160 r/min條件下振蕩培養(yǎng)3 d。以此為基礎(chǔ),調(diào)整各因素水平,研究不同pH值、裝液量、發(fā)酵時間、發(fā)酵溫度以及接種量對產(chǎn)酶抑制劑的影響,其因素與水平見表1。
表1 單因素試驗的因素與水平Table 1 Factors and levels of single factor tests
正交試驗:根據(jù)單因素試驗結(jié)果,選取對試驗結(jié)果影響大的因素進行正交試驗設(shè)計。
1.3.5 目的菌株活性部位的追蹤
取目的菌株發(fā)酵液于4 ℃、10 000 r/min 離心10 min,得上清液(胞外物)和沉淀,沉淀進一步用磷酸緩沖液(0.1 mol/L,pH 6.8)沖洗3次,超聲波破碎細胞,破碎液于4 ℃、10 000 r/min 離心10 min,得上清液即為菌體胞內(nèi)物[19],分別測定胞內(nèi)物和胞外物對α-葡萄糖苷酶的抑制率,初步得到活性部位。
將所得目的菌株的1 L胞外物濃縮至500 mL,依次使用石油醚、三氯甲烷、乙酸乙酯和正丁醇4種有機溶劑分別等體積萃取3次,萃取液合并后減壓濃縮得到各相浸膏。將浸膏配制成1 mg/mL的待測液,采用PNPG法檢測各萃取相對α-葡萄糖苷酶的抑制活性[20],以質(zhì)量濃度為1 μg/mL的阿卡波糖溶液作為陽性對照組。
采用PNPG法對產(chǎn)α-GI的內(nèi)生菌株進行篩選,結(jié)果見表2。由表2可知,得到8株內(nèi)生菌其發(fā)酵原液的抑制率在20%以上,其余菌株的抑制率均在20%以下,結(jié)果省略。在8株菌株中,菌株P(guān)D-14的發(fā)酵原液對α-葡萄糖苷酶的抑制率最高達到60.70%,雖比陽性對照阿卡波糖(98.67%)的低,但仍顯示出較高的活性。因此,選擇菌株P(guān)D-14進行進一步鑒定。
表2 α-葡萄糖苷酶產(chǎn)生菌篩選結(jié)果Table 2 Screening results of α-glucosidase inhibitor-producing strains
2.2.1 形態(tài)觀察
由圖1A可知,菌株P(guān)D-14在PDA培養(yǎng)基上生長良好,37 ℃培養(yǎng)15 h就可以形成明顯的菌落,菌落呈圓形、不透明、濕潤、表面光滑凸起。由圖1B可知,經(jīng)革蘭氏染色、芽孢染色、鏡檢,菌株P(guān)D-14為革蘭氏陽性菌,細胞呈桿狀。由圖1C可知,菌株P(guān)D-14有芽孢且位于菌體中間,芽孢呈橢圓形。根據(jù)菌株形態(tài)學觀察結(jié)果,初步鑒定該菌株屬于芽孢桿菌(Bacillus)。
圖1 菌株P(guān)D-14的菌落形態(tài)(A)、革蘭氏染色(B)及芽孢染色圖(C)Fig.1 Colony morphology (A),gram staining (B) and spore staining (C)of strain PD-14
2.2.2 分子生物學鑒定
由武漢華大基因科技有限公司測得菌株P(guān)D-14的16SrDNA基因序列堿基長度為1 465 bp。根據(jù)16SrDNA序列,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果如圖2所示。由圖2可知,菌株P(guān)D-14與Bacillus velezensis同屬一個分支,與已知菌株Bacillus velezensisLZLJ01的同源性達到100%。結(jié)合菌株P(guān)D-14的形態(tài)觀察結(jié)果和分子生物學鑒定結(jié)果,確定菌株P(guān)D-14為貝萊斯芽孢桿菌(Bacillus velezensis)。
圖2 菌株P(guān)D-14基于16S rDNA基因序列的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.2 Phylogenetic tree of strain PD-14 based on 16S rDNA gene sequences
由表3可知,隨著pH值、裝液量、發(fā)酵溫度、接種量的升高,抑制率均先升后降,分別在初始pH值為7,裝液量為125 mL/250 mL,發(fā)酵溫度為30 ℃,接種量為5%時,發(fā)酵液對α-葡萄糖苷酶的抑制率最高。隨著發(fā)酵時間的增加α-葡萄糖苷酶抑制率逐漸增高,到第3天后趨于平穩(wěn),因此選擇最優(yōu)發(fā)酵時間為3 d。在上述各因素最佳發(fā)酵條件下,α-葡萄糖苷酶抑制率在61.00%~87.85%。
表3 菌株P(guān)D-14發(fā)酵條件優(yōu)化的單因素試驗結(jié)果Table 3 Results of single factor tests for strain PD-14 fermentation conditions optimization
以單因素試驗為依據(jù),固定初始pH值為7,選取裝液量(A)、發(fā)酵時間(B)、發(fā)酵溫度(C)和接種量(D)4個影響因素,以各因素對α-葡萄糖苷酶的抑制率為評價指標,采用L9(34)正交設(shè)計研究不同因素對菌株產(chǎn)α-GI的影響,正交試驗設(shè)計及結(jié)果分析如表4所示,方差分析見表5。
表4 菌株P(guān)D-14發(fā)酵條件優(yōu)化的正交試驗結(jié)果與分析Table 4 Results and analysis of orthogonal tests for strain PD-14 fermentation conditions optimization
表5 正交試驗結(jié)果方差分析Table 5 Variance analysis of orthogonal tests results
由表4可知,4個因素對菌株P(guān)D-14產(chǎn)α-GI的影響不同,根據(jù)極差大小,各因素影響強弱排序為A>B>C>D,即裝液量>發(fā)酵時間>發(fā)酵溫度>接種量,其產(chǎn)α-GI最佳發(fā)酵條件組合為A1B3C2D3,即裝液量100 mL/250 mL、發(fā)酵時間4 d、發(fā)酵溫度30 ℃、接種量7%。在此優(yōu)化條件下進行3次平行驗證試驗,α-葡萄糖苷酶的抑制率為91.05%,與陽性對照1 μg/mL阿卡波糖溶液的抑制率98.67%接近。由表5可知,因素A(裝液量)對結(jié)果影響達到極顯著水平(P<0.01),而發(fā)酵時間、溫度和接種量對結(jié)果影響不顯著(P>0.05)。
按照1.3.5方法追蹤活性部位,測定菌株P(guān)D-14胞內(nèi)胞外物以及發(fā)酵液各萃取相對α-葡萄糖苷酶的抑制率的影響。結(jié)果表明,菌株P(guān)D-14的胞內(nèi)物對α-葡萄糖苷酶的抑制率較低,而胞外上清液的抑制率達到60.70%,說明α-GI主要集中在胞外即發(fā)酵液中。菌株P(guān)D-14發(fā)酵液中抑制α-葡萄糖苷酶的有效相為正丁醇相和水相,抑制率分別為77.60%和76.70%(質(zhì)量濃度為1 mg/mL),陽性對照組的抑制率為95.01%(質(zhì)量濃度為1 μg/mL)。
從羅漢果內(nèi)生菌中篩選出一株高產(chǎn)α-GI的菌株P(guān)D-14,經(jīng)形態(tài)學和分子生物學鑒定為貝萊斯芽孢桿菌(Bacillus velezensis)。通過單因素試驗和正交試驗優(yōu)化得到該菌株產(chǎn)α-GI的最佳發(fā)酵條件為初始pH值為7,裝液量100 mL/250 mL,發(fā)酵時間4 d,發(fā)酵溫度30 ℃,接種量7%。此優(yōu)化條件下,其發(fā)酵液對α-葡萄糖苷酶的抑制率達到91.05%,是優(yōu)化前的1.5倍。發(fā)酵液經(jīng)萃取后,正丁醇相和水相對α-葡萄糖苷酶的抑制率較高,分別為77.61%和76.70%。