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        小鼠骨骼肌纖維類型定量PCR 內(nèi)參基因的篩選

        2021-04-26 01:23:10張靜熊燕華永琳郭玉熊顯榮字向東李鍵
        生物技術(shù)通報(bào) 2021年2期
        關(guān)鍵詞:內(nèi)參貨號肌纖維

        張靜 熊燕 華永琳 郭玉 熊顯榮 字向東 李鍵

        (1. 青藏高原動物遺傳資源保護(hù)與利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,成都 610041;2. 西南民族大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院,成都 610041)

        不同部位骨骼肌代謝方式及功能存在較大差異,并且骨骼肌在運(yùn)動、損傷等生理病理?xiàng)l件下,根據(jù)不同的代謝和功能需求進(jìn)行持續(xù)的重塑[1]。對于家畜而言,不同的肌纖維類型組成,將影響家畜肉品質(zhì)。骨骼肌的這些差異主要是由于肌纖維類型的組成不同。因此,檢測骨骼肌纖維類型的組成對于研究骨骼肌的功能及家畜肉品質(zhì)顯得尤為重要。目前已經(jīng)使用多種標(biāo)準(zhǔn)對肌纖維進(jìn)行分型,包括組織化學(xué)方法[2]、收縮速度[3]、疲勞性、顯性酶途徑和肌球蛋白重鏈(Myosin heavy chain,MyHC 或Myh)亞型表達(dá)[4]。其中MyHC 亞型是肌纖維類型的分子標(biāo)記,檢測MyHC 亞型表達(dá)是最常用的分類標(biāo)準(zhǔn)。小鼠的肌肉纖維含有4 種MyHC 異構(gòu)體,分別為I 型(Myh7),IIA 型(Myh2),IIB(Myh4)型 和IIX 型(Myh1),單根肌纖維通常表達(dá)單個(gè)MyHC 異構(gòu)體[5-6]。其中I型纖維收縮速度慢,被稱為慢肌纖維,以氧化代謝產(chǎn)生能量。IIB 型和IIX 型纖維收縮速度快,被稱為快肌纖維,主要通過糖酵解途徑代謝葡萄糖。IIA 型纖維為中間型纖維,收縮速度快,屬于糖酵解/氧化磷酸化混合代謝類型[7]。近年來,為了從RNA水平研究肌肉組織肌纖維類型差異變化,闡明肌肉代謝和功能的分子機(jī)制,普遍采用靈敏度高,特異性好的逆轉(zhuǎn)錄熒光實(shí)時(shí)定量PCR(RT-qPCR)技術(shù)。

        使用RT-qPCR 方法檢測RNA 表達(dá)時(shí),控制實(shí)驗(yàn)誤差至關(guān)重要。目前RT-qPCR 檢測技術(shù)以穩(wěn)定的內(nèi)參基因?yàn)閰⒄?,檢測基因的相對表達(dá)量,降低實(shí)驗(yàn)誤差對分析結(jié)果的影響[8]。然而,近年來研究表明常用管家基因肌動蛋白(Actb)和甘油醛-3-磷酸脫 氫 酶(Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,Gapdh)可能不適合作為所有基因檢測的內(nèi)參基因。已有文獻(xiàn)報(bào)道在山羊肌內(nèi)前體脂肪細(xì)胞誘導(dǎo)分化不同時(shí)期[9]、子宮內(nèi)膜異位[10]和水牛心肝肌肉等20 種組織中[11]Gapdh和Actb均不是最佳內(nèi)參基因。在大鼠坐骨神經(jīng)粉碎模型中,以Actb作為內(nèi)參基因時(shí),實(shí)驗(yàn)組靶基因表達(dá)發(fā)生顯著變化,進(jìn)一步分析表明發(fā)生實(shí)質(zhì)變化是Actb而不是靶基因[12]。此外,越來越多的研究報(bào)道不同的組織、物種以及實(shí)驗(yàn)條件,穩(wěn)定的內(nèi)參基因具有特異性。例如,C57BL/10 小鼠股四頭肌中表達(dá)穩(wěn)定的內(nèi)參基因?yàn)閮?nèi)質(zhì)網(wǎng)滯留蛋白1(Retention in endoplasmic reticulum sorting receptor 1,Rer1)[13]。Hildyard 等[14]指 出,次黃嘌呤-鳥嘌呤磷酸核糖轉(zhuǎn)移酶1(Hypoxanthine phosphoribosyltransferase 1,Hprt1)、琥珀酸脫氫酶亞基A(Succinate dehydrogenase complex flavoprotein subunit A,Sdha)和核糖體蛋白L13a(Ribosomal protein L13a,Rpl13a)是犬股外側(cè)肌相對穩(wěn)定的內(nèi)參基因。McBryan 等[15]用geNorm 法分析豬背最長肌中β2-微球蛋白(Beta-2-microglobulin,B2m)為穩(wěn)定的內(nèi)參基因。綜上所述,盡管在某一肌肉中的穩(wěn)定內(nèi)參基因已有研究報(bào)道,但是不同物種、不同部位肌肉組織穩(wěn)定的內(nèi)參均存在差異?;赗TqPCR 技術(shù)的肌纖維分型是肌肉功能研究的重要手段,但迄今為止在肌纖維類型的研究中,穩(wěn)定的內(nèi)參基因尚不清楚。因此,有必要篩選肌纖維類型檢測的穩(wěn)定內(nèi)參基因。

        本研究以小鼠肌纖維類型組成差異較大的腓腸?。℅astrocnemius muscle,GAS)、比目魚?。⊿oleus,SOL)、脛骨前肌(Tibialis anterior muscle,TA)和趾長伸?。‥xtensor digitorum longus,EDL)為試驗(yàn)材料,采 用RT-qPCR 技 術(shù)、geNorm[16]、NormFinder[17]、BestKeeper[18]和RefFinder[19]程序?qū)apdh、Actb、Rer1、Hprt1和肽基脯氨酰異構(gòu)酶A(Peptidylprolyl isomerase A,Ppia)、核糖體蛋白L7(Ribosomal protein L7,Rpl7)、B2m、Sdha和核糖體蛋白L27(Ribosomal protein L27,Rpl27)等9 個(gè)內(nèi)參基因在4種肌肉組織表達(dá)的穩(wěn)定性進(jìn)行分析,旨在獲得小鼠骨骼肌纖維檢測的最佳內(nèi)參基因,為后續(xù)骨骼肌纖維類型定量檢測提供試驗(yàn)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 本試驗(yàn)所需實(shí)驗(yàn)鼠及小鼠標(biāo)準(zhǔn)化飼料均采購于成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動物有限公司,6 周齡雌性C57BL/6 小鼠5 只,自由采食,12 h 黑暗,12 h 光照,斷頸法處死小鼠,采集腓腸?。℅AS)、比目魚?。⊿OL)、脛骨前肌(TA)和趾長伸?。‥DL),將肌肉組織立即置于RNAiso Plus 中,使用眼科剪剪碎成每塊1 cm3左右,反復(fù)凍融2 次,破碎細(xì)胞,然后儲存于-80℃用于后續(xù)的實(shí)驗(yàn)。

        1.1.2 主要試劑 RNAiso Plus(貨號D9109)、PrimeScript RT reagent 反轉(zhuǎn)錄試劑盒( 貨號RR047A)、SYSR?Premix Ex TaqTMⅡ( 貨號RR036A) 購自TaKaRa( 美國);一抗:Myh2 MyHC- ⅡA( 貨 號2F7)、Myh4 MyHC- ⅡB( 貨號10F5)和Myh7 MyHC-I(貨號BA-F8)均購自Developmental Studies Hybridoma Bank(美國);二抗:Goat anti-Mouse IgG1,Alexa Fluor 568( 貨 號A-21124)、Goat anti-Mouse IgM,Alexa Fluor 488(貨號A-21042) 和Goat anti-Mouse IgG2b,Alexa Fluor 488(貨號A-21141)均購自Thermo Fisher Scientific(美國);山羊血清(貨號005-000-121)購自Jackson ImmunoResearch(美國);Bovine serum albumin(BSA)(貨號700-105P)購自Gemini Bio(美國);Triton X-100(貨號 X100)購自Sigma-Aldrich(美國)。

        1.2 方法

        1.2.1 總RNA 提取和cDNA 的合成 按照RNAiso Plus 試劑盒的使用說明提取腓腸肌(GAS)、比目魚肌(SOL)、脛骨前肌(TA)和趾長伸?。‥DL)的總RNA,利用紫外分光光度計(jì)檢測RNA 樣品的核酸濃度及A260nm/A280nm值(該值在1.8-2.1 的樣品才可進(jìn)行下步實(shí)驗(yàn))。使用反轉(zhuǎn)錄酶試劑盒,以總RNA 為模板按照說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,將獲得的cDNA 置于-20℃保存。

        1.2.2 熒光定量RCR 引物設(shè)計(jì)及標(biāo)準(zhǔn)曲線的構(gòu)建 本試驗(yàn)選取Gapdh、Actb、Rer1、Hprt1、Ppia、Rpl7、B2m、Sdha和Rpl27等9 個(gè)基因作為內(nèi)參基因,利用NCBI 中BLAST 軟件,根據(jù)GenBank 上9 個(gè)基因在小鼠中的基因序列設(shè)計(jì)熒光定量PCR 引物引物(表1),由成都擎科梓熙生物技術(shù)有限公司合成引物。將cDNA 模板按10 倍進(jìn)行稀釋,選取10-1-10-5稀釋倍數(shù)樣品進(jìn)行RT-qPCR,構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.2.3 實(shí)時(shí)熒光定量PCR RT-qPCR 反應(yīng)體系為15 μL:SYSR?Premix Ex TaqTMⅡ 7.5 μL,上游引物(10 μmol/L)1 uL,下游引物(10 μmol/L)1 μL,cDNA 2 μL,補(bǔ)充ddH2O 至15 μL。反應(yīng)程序:95℃ 3 min;95℃ 10 s,60℃ 30 s,72℃ 45 s 共40 個(gè)循環(huán)。每種骨骼肌纖維組織樣品設(shè)置2 個(gè)重復(fù)。

        表1 9 個(gè)候選內(nèi)參基因的引物序列

        1.2.4 免疫熒光染色 實(shí)驗(yàn)方案參照Wang 等[20],采用Leica-CM1850 冰凍切片機(jī),OCT 包埋,溫度設(shè)定-20℃,切片厚度10 μm 制作冰凍切片,用封閉液(含5% 山羊血清、2% BSA 和0.2%的Triton X-100的PBS 溶液)室溫孵育樣品30 min。用封閉緩沖液稀釋一抗(Myh2、Myh4 和Myh7 抗體以1∶300的比例稀釋),4℃孵育過夜。PBS 洗5 次,每次5 min。用PBS 以1∶1 000 的比例稀釋二抗,室溫孵育50 min 后,PBS 洗5 次,每 次5 min。用mount medium 封片,避免氣泡的產(chǎn)生,并用指甲油封蓋玻片四周,防封片劑溢出并固定蓋坡片。

        1.2.5 數(shù)據(jù)分析 熒光定量數(shù)據(jù)獲得自Bio-Rad CFX Manager 軟 件(Bio-Rad,F(xiàn)oster City,CA,USA),導(dǎo)出格式為Excel,使用5 軟件對該基因的表達(dá)穩(wěn)定性進(jìn)行評估。Delta CT 法是根據(jù)ΔCT 的標(biāo)準(zhǔn)差的平均值對內(nèi)參基因進(jìn)行穩(wěn)定性排列;geNorm 和NormFinder 的分析均基于基因的相對表達(dá)量,即首先計(jì)算內(nèi)參基因的△CT(預(yù)評估基因的CT 值減去同一樣品中某一基因的最低CT 值),再根據(jù)公式2-△CT計(jì)算該基因的相對表達(dá)量,其中g(shù)eNorm 分析要求所有內(nèi)參照基因的M 值均低于1.5,具有最低M 值的基因具有最穩(wěn)定的表達(dá);NormFinder 方法,穩(wěn)定性值越小變異系數(shù)越小,因此基因的表達(dá)穩(wěn)定性較高;BestKeeper 則根據(jù)計(jì)算出的標(biāo)準(zhǔn)差(Std)、變異系數(shù)(CV)和相關(guān)系數(shù)(R)判斷穩(wěn)定性,其中R 值越大,Std 越小或者CV 值越小,內(nèi)參基因的穩(wěn)定性越好;RefFinder 法是在4 種方法的基礎(chǔ)上使用幾何平均數(shù)算法計(jì)算穩(wěn)定性。

        2 結(jié)果

        2.1 引物特異性的檢測及標(biāo)準(zhǔn)曲線的構(gòu)建

        采集小鼠后肢骨骼肌組織(GAS、SOL、TA和EDL)提取總RNA,A260nm/A280nm的比值范圍為1.85-2.09,表明RNA 純度符合PCR 實(shí)驗(yàn)要求。對候選內(nèi)參引物進(jìn)行熒光PCR 實(shí)驗(yàn),獲得擴(kuò)增及溶解曲線。如圖1 所示,溶解曲線均呈現(xiàn)單峰表明設(shè)計(jì)引物特異性較好。同時(shí)以樣品濃度的對數(shù)為橫坐標(biāo),CT 值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,按照E=10-1/Slope-1 計(jì)算擴(kuò)增效率(其中Slope 為標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率)。經(jīng)10 倍稀釋得到的9 個(gè)基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線(表2),其線性關(guān)系良好,擴(kuò)增效率為94.4%-114.5%,R2決定系數(shù)為0.982 6-0.994 5,其均符合qPCR 實(shí)驗(yàn)對引物的要求。

        2.2 內(nèi)參基因的循環(huán)閾值

        在4 種骨骼肌中,通過RT-qPCR 分析獲得9 個(gè)候選內(nèi)參基因的循環(huán)閾值(CT)值(圖2)。結(jié)果顯示,9 個(gè)候選內(nèi)參基因的平均CT 值位于16-26 個(gè)循環(huán)之間,其中Hprt1循環(huán)閾值最高(26.63±0.86),Gapdh最低(16.28±0.36)。

        2.3 內(nèi)參基因在骨骼肌中的表達(dá)穩(wěn)定性的評估

        根據(jù)9 個(gè)候選內(nèi)參基因在不同部位骨骼肌的 循 環(huán) 閾 值,用Delta CT、geNorm、NormFinder、BestKeeper 和RefFinder 五種方法綜合評估9 個(gè)內(nèi)參基因表達(dá)的穩(wěn)定性。如表3 和圖3 所示,以Delta CT 法 分 析 穩(wěn) 定 性 前3 個(gè) 基 因 為Rpl7>Actb>Rer1,以NormFinder 法分析穩(wěn)定性前3 個(gè)基因?yàn)镽pl7>Rer1>Actb,以BestKeeper 法分析穩(wěn)定性前3 個(gè)基因?yàn)镽pl7>Gapdh>Actb。盡管geNorm 法分析穩(wěn)定性前3 個(gè)基因?yàn)锳ctb>B2m>Rpl27,但以上3 種方法均得出在不同部位骨骼肌中Rpl7內(nèi)參基因最穩(wěn)定。為了綜合評價(jià)以上分析結(jié)果,本實(shí)驗(yàn)采用RefFinder法計(jì)算上述4 種方法結(jié)果序列進(jìn)行的幾何平均數(shù),顯示內(nèi)參基因的穩(wěn)定性排序?yàn)镽pl7>Actb>B2m>Rer1>Rpl27>Gapdh>Sdha>Hprt1>Ppia,且5 種方法中Ppia均為最不穩(wěn)定的內(nèi)參基因。

        2.4 穩(wěn)定內(nèi)參基因在肌纖維類型分型定量的驗(yàn)證

        研究表明EDL 和SOL 分別是以快肌和慢肌纖維為主的骨骼肌,同時(shí)也是肌纖維類型研究的經(jīng)典骨骼肌[20],本研究以EDL 和SOL 免疫熒光的肌纖維分型的結(jié)果為參照,驗(yàn)證上述篩選穩(wěn)定內(nèi)參Rpl7的可靠性。免疫熒光分型結(jié)果顯示SOL 中主要的肌纖維類型為I 型,所占比例約55%,其次為IIa(圖4-A,4-B),而EDL 中主要的肌纖維類型為IIB,所占比例約為60%,IIA 所占的比例較少,僅為10%左右(圖4-A,4-C),表明本研究采集樣本可靠。同時(shí)以最穩(wěn)定的Rpl7基因及最不穩(wěn)定的Ppia為內(nèi)參基因,對Type IIA(Myh2),IIB(Myh4) 和IIX(Myh1) 進(jìn)行qPCR 定量分析。然后計(jì)算免疫熒光及qPCR 檢測方法獲得IIA,IIB+IIX 肌纖維類型在EDL 和SOL肌肉中的比值,并對這兩種分析方法獲得的結(jié)果進(jìn)行比較。通過免疫熒光方法檢測顯示SOL 中IIA 肌纖維類型約為EDL 中的2 倍,以Rpl7為內(nèi)參基因,qPCR 定量檢測SOL/EDL 的比值約為2.2,獲得的結(jié)果與上述免疫熒光的結(jié)果一致,而以Ppia的定量結(jié)果顯示IIA 肌纖維SOL/EDL 的比值約為1.2 倍(圖4-D)。同理,以Rpl7為內(nèi)參基因,IIB+IIX 肌纖維在EDL/SOL 的比值與免疫熒光一致,而Ppia為內(nèi)參基因的定量結(jié)果與免疫熒光分析方法差異較大(圖4-E)。因此,通過上述分析方法獲得的穩(wěn)定內(nèi)參可靠,可廣泛作為骨骼肌纖維類型分型的內(nèi)參基因。

        圖1 骨骼肌中9 個(gè)管家基因的Real-time PCR 溶解曲線

        表2 內(nèi)參基因標(biāo)準(zhǔn)曲線方程、決定系數(shù)R2 和擴(kuò)增效率

        圖2 骨骼肌中9 個(gè)候選內(nèi)參基因的循環(huán)閾值

        表3 九種候選內(nèi)參基因在小鼠骨骼肌組織中的表達(dá)穩(wěn)定性

        圖3 九種候選內(nèi)參基因在小鼠骨骼肌組織中的表達(dá)穩(wěn)定性

        圖4 內(nèi)參基因的穩(wěn)定性驗(yàn)證

        3 討論

        RT-qPCR 是分析基因RNA 相對表達(dá)的首選方法[21-22]。即使是對于轉(zhuǎn)錄豐度較低的基因它也可以快速、準(zhǔn)確地實(shí)時(shí)分析基因表達(dá)模式[23]。而內(nèi)參基因的選擇對其結(jié)果的準(zhǔn)確性至關(guān)重要。目前,研究者多采用Delta CT、geNorm、NormFinder、BestKeeper 中的一種或兩種評估穩(wěn)定地內(nèi)參基因。其中 Delta CT[24]根據(jù)基因表達(dá)差異的重復(fù)性對內(nèi)參基因的穩(wěn)定性進(jìn)行排名,geNorm[18]根據(jù)內(nèi)參基因之間的平均配對變異V 值確定最穩(wěn)定的參考基因,并根據(jù)其表達(dá)穩(wěn)定性值(M)對基因進(jìn)行排序。而NormFinder[25]計(jì)算所有樣本中內(nèi)參基因表達(dá)的總體變化,以及組內(nèi)和組間的變化,根據(jù)內(nèi)參基因的穩(wěn)定值(SV)對其進(jìn)行排序,值越低表示基因表達(dá)穩(wěn)定性越高,反之亦然。BestKeeper[26]則根據(jù)內(nèi)參基因的標(biāo)準(zhǔn)偏差(SD)和變異系數(shù)(CV)對內(nèi)參基因的穩(wěn)定性進(jìn)行排名。本研究用上述4 種方法分別評估所測候選內(nèi)參基因的穩(wěn)定性,同時(shí)采用RefFinder[19]計(jì)算每個(gè)候選內(nèi)參基因在上述4 種方法中的幾何平均值進(jìn)行綜合排名,提高了內(nèi)參基因穩(wěn)定性評估的可靠性。

        盡管上述5 種運(yùn)算原理存在差異,導(dǎo)致內(nèi)參基因的穩(wěn)定性排序略有不同[27-28],但本試驗(yàn)采用RefFinder 軟件綜合分析骨骼肌中較為適合的參考基因?yàn)镽pl7,最不穩(wěn)定的基因?yàn)镻pia。Rpl7是一種多功能核糖體蛋白,在翻譯控制和轉(zhuǎn)錄調(diào)控中起作用[29-30]。已有研究報(bào)道Rpl7基因是在小鼠股四頭肌中穩(wěn)定表達(dá)的內(nèi)參基因[13]。Ppia是一種肽基脯氨酸異構(gòu)酶,催化寡肽中脯氨酸亞胺肽鍵的順反異構(gòu)化反應(yīng)[31]。與本研究結(jié)果一致,Gong 等[32]分析12 種內(nèi)參基因在能量限飼小鼠股四頭肌中最不穩(wěn)定的內(nèi)參基因是Ppia。并且本研究以免疫熒光檢測肌纖維分型的數(shù)據(jù)為參照,驗(yàn)證了以表達(dá)最穩(wěn)定的Rpl7作為內(nèi)參基因,采用qPCR 檢測肌纖維類型組成的可靠性,表明Rpl7可廣泛的應(yīng)用于qPCR 檢測骨骼肌肌纖維分型的內(nèi)參基因。

        近年來,研究者在不同實(shí)驗(yàn)條件下對某一特定部位骨骼肌的內(nèi)參基因進(jìn)行了篩選,這些特定部位的骨骼肌主要集中在股四頭肌和腓腸肌。研究表明高脂和高糖飼養(yǎng)小鼠腓腸肌穩(wěn)定的內(nèi)參基因?yàn)锳ctb>Ywhaz9(色氨酸5-單加氧酶激活蛋白)>Gapdh[33]。能量限制小鼠內(nèi)參基因在股四頭肌中穩(wěn)定性位于前三的為Gapdh>Hprt>Tubα(微管蛋白α)[32]。然而,在不同飼料硒水平飼養(yǎng)股四頭肌中Ppia和B2m較為穩(wěn)定[34]。已有研究報(bào)道不同部位骨骼肌,快慢肌纖維類型差異較大[35]。本研究選取EDL、SOL、TA 和GAS 四個(gè)部位的肌肉,其中EDL主要由快肌纖維組成,而SOL 主要由慢肌纖維組成,分別是機(jī)體內(nèi)典型的快骨骼肌和慢骨骼肌,因此用這些樣品篩選肌纖維類型分型的穩(wěn)定內(nèi)參基因,更具有代表性。并且本研究所篩選的穩(wěn)定內(nèi)參基因可用于不同部位骨骼肌的基因表達(dá)比較分析,但是否能適用于其他組織,需要進(jìn)一步的研究。

        4 結(jié)論

        本研究通過9 個(gè)常見內(nèi)參基因首次分析在快肌和慢肌纖維為主的骨骼肌的表達(dá)穩(wěn)定性,結(jié)果表明,Rpl7表達(dá)最穩(wěn)定,Ppia最不穩(wěn)定。Rpl7可作為出生后小鼠骨骼肌纖維類型檢測的穩(wěn)定內(nèi)參基因。

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