李 崢，王 霄△，洪天配，王浩杰，高展翼，萬 蒙

(北京大學(xué)第三醫(yī)院 1.口腔科，2.內(nèi)分泌科，北京 100191)

糖尿病和牙周病在全球范圍內(nèi)均屬于與生活方式相關(guān)的慢性疾病[1]，一系列流行病學(xué)研究以及在此基礎(chǔ)上進行的Meta分析均支持糖尿病可影響牙周組織健康的結(jié)論[2-4]，其比較經(jīng)典的病因?qū)W解釋如下[5]：(1)伴隨著血糖水平的升高，口腔內(nèi)唾液和齦溝液葡萄糖水平也相應(yīng)增加，牙周袋內(nèi)菌斑生物膜可受此影響，導(dǎo)致位于袋底的厭氧菌群過度活躍生長，從而誘導(dǎo)和加劇局部牙周組織的炎癥反應(yīng)；(2)高血糖狀況下，晚期糖基化終末產(chǎn)物(advanced glycation end products，AGEs)合成增加，或者直接影響正常蛋白質(zhì)功能，或者與不同細胞膜表面AGEs受體(receptor for AGEs，RAGE)結(jié)合，級聯(lián)表達各種細胞因子和生長因子，從而介導(dǎo)包括牙周組織在內(nèi)的結(jié)締組織降解的發(fā)生；(3)糖尿病患者牙周組織和齦溝液內(nèi)基質(zhì)金屬蛋白酶表達的增加，會加重牙周組織破壞程度并降低組織修復(fù)能力。上述致病機制可與齦下菌斑生物膜生態(tài)系改變以及糖尿病相關(guān)性肥胖和血脂異常所導(dǎo)致的脂肪細胞因子分泌增加發(fā)揮協(xié)同作用[6]，最終導(dǎo)致牙周組織代謝平衡喪失，表現(xiàn)為牙周組織破壞增加、組織修復(fù)功能損傷，即造成進展期的牙周組織炎癥。牙周炎病理表現(xiàn)涉及牙周軟硬組織喪失，包括結(jié)締組織膠原纖維降解以及牙槽骨吸收與改建，與機體的免疫反應(yīng)以及骨調(diào)節(jié)機制緊密相關(guān)。AGEs作為糖尿病特征性表達，在高血糖引發(fā)的病理生理過程中處于核心地位。

本研究以高血糖狀況下特征性的AGEs/RAGE作用軸為出發(fā)點，設(shè)計體外細胞實驗，檢測AGEs對體外分離培養(yǎng)的大鼠下頜成骨細胞(osteoblasts，OB)以及大鼠外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cells，PBMCs)增殖的影響，探索AGEs/RAGE作用軸中核因子κB(nuclear factor-kappa B，NF-κB)、磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase，PI3K)/蛋白激酶B(protein kinase B，PKB/Akt)及絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase，MAPK)信號通路的作用機制。

1 材料與方法

1.1 試劑與材料

DMEM細胞培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶、Ⅰ型膠原酶、青霉素、鏈霉素、Trizol均購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司，逆轉(zhuǎn)錄及qR-TPCR試劑購自天根生物科技有限公司。總蛋白及核蛋白提取試劑盒購自碧云天生物技術(shù)有限公司，BCA蛋白定量試劑盒購自凱基生物技術(shù)有限公司，酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay，ELISA)試劑盒購自北京中山金橋生物技術(shù)有限公司。實驗所涉及的一抗、二抗均購自美國Abcam公司。

1.2 AGEs試劑的配制

取牛血清白蛋白(bovine serum albumin，BSA，50 g/L)2.5 g、D-葡萄糖(500 mmol/L)4.045 g、青霉素(100 IU/mL)0.003 g、鏈霉素(100 IU/mL)0.005 g、苯甲基磺酰氟(1.5 mmol/L)0.013 g、乙二胺四乙酸二鈉(0.5 mmol/L)0.009 g，使用磷酸鹽緩沖液[phosphate buffered saline(PBS)， 0.2 mmol/L，pH 7.4]充分溶解后定容至50 mL，經(jīng)0.22 μm濾膜過濾除菌后置于無菌試管中。在同一條件下配制不含D-葡萄糖的BSA溶液作為對照。將無菌試管中配置完成的AGEs/BSA溶液封口后，置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)避光孵育90 d獲取棕色產(chǎn)物。孵育結(jié)束后經(jīng)PBS透析48 h，以除去未與BSA結(jié)合的D-葡萄糖，再經(jīng)0.22 μm濾膜過濾除菌，-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。根?jù)AGEs特有的熒光特性(370 nm波長的激發(fā)光可激發(fā)產(chǎn)生440 nm發(fā)射波長的熒光)，采用FLX-800型熒光分光光度計測定熒光值，鑒定AGEs/BSA和對照物。

1.3 PBMCs 的體外培養(yǎng)

1.3.1PBMCs的原代培養(yǎng) 按照單個核細胞分離試劑盒的步驟進行操作。取大鼠新鮮全血2 mL，乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid，EDTA)抗凝，PBS等體積稀釋，室溫差速離心25 min后出現(xiàn)明顯分層，將第二層與第三層小心吸取至15 mL新的無菌離心管中，加入10 mL洗滌液，顛倒混勻，再次離心10 min，棄上清。5 mL洗滌液重懸細胞后重復(fù)離心，棄上清，用細胞培養(yǎng)基重懸，計數(shù)。每個培養(yǎng)瓶中約106個/mL細胞進行培養(yǎng)，4 h后換新的培養(yǎng)基，此時的貼壁細胞即為單個核細胞。

1.3.2PBMCs后續(xù)實驗的分組培養(yǎng) 將細胞傳代至第3代作為實驗用細胞，接種于96孔板中。實驗分為3組，具體如下：第1組為0.25 g/L AGEs作用組；第2組為AGEs+NF-κB通路阻斷劑(Bay117082)組，先用阻斷劑處理細胞0.5 h，再用0.25 g/L AGEs處理；第3組為空白對照。4 h后采用ELISA方法測定腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor α，TNF-α)、白細胞介素-1β(interleukin-1β，IL-1β)表達，Western blot測定NF-κB p65磷酸化水平。

1.4 OB的體外培養(yǎng)

1.4.1OB的原代培養(yǎng) 無菌條件下取出3周齡SD大鼠的下頜骨，置入冷PBS中，盡量剔除附著的結(jié)締組織。用PBS清洗3次，置入盛有DMEM培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿中，剪成0.5 mm×0.5 mm的小塊，約30塊，加入0.25%(質(zhì)量分數(shù))胰蛋白酶5 mL，置入孵箱中消化。20 min后血清終止消化，棄上清液，加入1.0 g/L Ⅰ型膠原酶10 mL，置于孵箱中再次消化。90 min后，1 000 r/min離心10 min,去上清，用PBS洗滌細胞2次，200目濾網(wǎng)過濾去除碎骨片。使用含10%(體積分數(shù))的胎牛血清、100 U/mL青霉素、100 mg/L鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基重懸細胞，吹打均勻后，接種至多個25 cm2的培養(yǎng)瓶，放于37 ℃、5%(體積分數(shù))CO2的恒溫培養(yǎng)箱,培養(yǎng)48 h后換液，以后隔日換液,待細胞長至80%融合時進行傳代培養(yǎng)，培養(yǎng)至第3代用于后續(xù)實驗。

1.4.2OB后續(xù)實驗的分組培養(yǎng) 待OB狀態(tài)良好時，分3組處理細胞，第1組用AGEs刺激細胞，分別在培養(yǎng)30 min、12 h、1 d、3 d、5 d時收集細胞；第2組在AGEs刺激前加入JNK抑制劑(SP600125)，分別在培養(yǎng)24 h和48 h時收集細胞；第3組在AGEs刺激前加入p38 MAPK抑制劑(SB203580)，分別在培養(yǎng)24 h和48 h時收集細胞。其中AGEs的刺激濃度均為0.25 g/L，均設(shè)置空白對照組。將每次收集的細胞分為兩份，一份進行qRT-PCR實驗，在mRNA水平檢測NF-κB p65、IκB、p38、JNK的表達變化；另一份進行Western blot蛋白電泳實驗，在蛋白水平檢測NF-κB p65、IκB、p38、JNK磷酸化以及非磷酸化的表達變化。

1.5 鈣化結(jié)節(jié)(茜素紅法)染色

盡量棄去OB培養(yǎng)瓶中的上清液，PBS清洗2次，70%(體積分數(shù))乙醇固定60 min后用蒸餾水小心清洗3次。在培養(yǎng)瓶中加入1 mL配制好的0.1%(質(zhì)量分數(shù))茜紅素(pH 8.3)進行細胞染色，將其放入37 ℃的細胞培養(yǎng)箱中孵育，30 min后取出細胞，再次用蒸餾水清洗,在顯微鏡下進行鈣化結(jié)節(jié)觀察并照相。

1.6 堿性磷酸酶染色

將OB接種到細胞爬片上，培養(yǎng)7 d后用95%(體積分數(shù))乙醇固定15 min，用Gomori鈣鈷法進行堿性磷酸酶(alkaline phosphatase，ALP)染色：將固定好的蓋玻片經(jīng)蒸餾水漂洗后，入孵育液[3%(質(zhì)量分數(shù))β-甘油磷酸鈉5 mL，2%(質(zhì)量分數(shù))巴比妥鈉5 mL，2%(質(zhì)量分數(shù))硝酸鈣10 mL，2%(質(zhì)量分數(shù))硫酸鎂 5 mL，蒸餾水25 mL]，37 ℃孵育2 h，清水沖洗數(shù)次，然后在2%(質(zhì)量分數(shù))硝酸鈷中孵育1 min，沖洗，自然干燥，封固，倒置顯微鏡下觀察拍照。

1.7 CCK-8

取第3代處于對數(shù)生長期的OB、PBMCs，按每孔5×105個細胞進行種植。AGEs設(shè)置5個濃度梯度，分別為2、1、0.5、0.25、0.125 g/L。相同條件設(shè)BSA對照組，每組均設(shè)4個重復(fù)，置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。分別在24、48、72 h進行CCK-8檢測。酶標(biāo)儀檢測450 nm處光密度值，并計算IC50。

1.8 qRT-PCR

總RNA提取采用Trizol法，按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書步驟將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。qRT-PCR過程及相關(guān)程序參考說明書，相關(guān)引物序列見表1。采用2-ΔΔCt法進行目的基因相對定量分析。

表1 qRT-PCR引物序列Table 1 Primer sequences used for qRT-PCR

1.9 Western blot

蛋白的提取以及定量均按照試劑盒說明書進行。80 V恒壓電泳30 min后，改為120 V恒壓分離；300 mA恒流轉(zhuǎn)膜1 h。5%(質(zhì)量分數(shù))脫脂牛奶室溫封閉1.5 h。一抗、二抗均按照說明書推薦的最佳濃度進行稀釋，一抗4 ℃孵育過夜，二抗放置搖床室溫1 h，TBST緩沖液洗3遍后顯色曝光，拍照分析。采用Tanon Gis軟件測定膠片電泳條帶灰度值，定量分析蛋白水平變化。

1.10 統(tǒng)計分析

2 結(jié)果

2.1 AGEs試劑鑒定

將AGEs原液(圖1A)稀釋到原來體積的1/100，采用熒光分光光度計。在激發(fā)波長370 nm處測定熒光強度，發(fā)射波長440 nm處出現(xiàn)最大吸收峰。結(jié)果顯示，分析圖譜吸收峰單一，AGEs的峰與對照組相比有明顯差異，其中AGEs溶液的熒光強度為88.56 U/mg，對照BSA溶液的熒光強度為2.34 U/mg(圖1B)，符合AGEs自發(fā)熒光特征，表明本實驗所用AGEs配制成功。

AGEs, advanced glycation end products; BSA, bovine serum albumin.圖1 制備的AGEs溶液和對照BSA溶液(A)及其對應(yīng)的熒光光譜(B)Figure 1 The prepared AGEs and BSA reagents (A)，analysis of BSA and AGEs by fluorescence spectrophotometer (B)

2.2 PBMCs的體外培養(yǎng)及鑒定

體外培養(yǎng)原代及第3代PBMCs，顯微鏡下觀察其形態(tài)呈典型貼壁細胞，細胞伸展，粘附牢固，呈規(guī)則圓形，生長狀態(tài)良好，無明顯增殖表現(xiàn)，符合PBMCs的特征(圖2)。

2.3 OB體外培養(yǎng)及鑒定

體外培養(yǎng)原代及第3代OB，原代OB從骨板爬出生長，24 h細胞開始貼壁，48 h完全貼壁，細胞為單核，呈多角形或梭形，約1周后細胞融合成鋪路石樣(圖3A、B)。對OB進行茜素紅染色呈陽性，可見細胞內(nèi)多個紅染的鈣化結(jié)節(jié)(圖3C)；ALP染色呈陽性，可見胞漿內(nèi)ALP與顯色劑結(jié)合后的棕黑色顆粒(圖3D)。

圖2 光學(xué)顯微鏡下原代(A)及第3代(B)PBMCs的形態(tài) 圖3 原代(A)及第3代(B)培養(yǎng)的成骨細胞OB及其茜素紅染色(C)和ALP染色(D)Figure 2 The cultured PBMCs of the primary (A) and the third generation (B), observed by optical microscope Figure 3 The cultured OB of the primary (A) and the third generation (B) and the staining of alizarin red (C) and ALP (D)

2.4 AGEs對PBMCs、OB增殖活力的影響

不同濃度AGEs分別作用PBMCs和OB 48 h，光學(xué)顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)PBMCs、OB的細胞存活量及細胞狀態(tài)隨著AGEs作用濃度的增加而逐漸降低(圖4A、B)。CCK-8檢測發(fā)現(xiàn)PBMCs在培養(yǎng)24、48、72 h時， OB在培養(yǎng)48、72 h時細胞活力隨AGEs作用濃度的增加而逐漸降低(圖4C、D)，與未處理對照組相比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001)，該檢測結(jié)果與光學(xué)顯微鏡下的變化趨勢一致。重復(fù)測量的GLM分析表明，兩種細胞的活力與AGEs的濃度、作用時間以及二者交互作用均顯著相關(guān)(P<0.001)，且當(dāng)AGEs作用濃度超過0.5 g/L時兩種細胞活力均隨作用時間延長而顯著下降(圖4E、F)。這一結(jié)果提示，考慮到AGEs對細胞增殖的影響，應(yīng)選擇既能最大化刺激細胞，又不造成過半細胞殺傷的作用濃度值，因此，本研究選擇AGEs的作用濃度為0.25 g/L，該濃度對PBMCs和OB均適宜。

A, B, scale bar is 200 μm. *P<0.001, vs. control; AGEs, advanced glycation end products. E, PBMCs: Times, P=0.001; Concentrations, P<0.001; Time×Concentration, P<0.001 (GLM, F value: 14.1-1 851.4). F, OB: Times, P<0.001; Concentrations: P<0.001; Time×Concentration, P<0.001 (GLM, F: 64.4-373.1).圖4 不同濃度AGEs干預(yù)48 h時，光學(xué)顯微鏡觀察PBMCs(A)、OB(B)的細胞形態(tài)；CCK-8檢測不同濃度AGEs作用24、48、72 h時對PBMCs(C)、OB(D)細胞活力的影響，及濃度與作用時間交互作用的相關(guān)性(E、F) Figure 4 The AGEs stimulated cell morphology of PBMCs (A) and OB (B) observed by optical microscope for 48 h; the effects of AGEs at different concentrations for 24, 48, 72 h on cell PBMCs (C) and OB (D) viability and the interaction (E, F) between different concentrations and action times by CCK-8 test

2.5 NF-κB信號通路在AGEs干預(yù)PBMCs后的作用機制

0.25 g/L AGEs作用于PBMCs，Western blot結(jié)果顯示，與對照組相比，NF-κB p65的蛋白表達量顯著增加(P<0.01，圖5A)。同時，ELISA結(jié)果發(fā)現(xiàn)TNF-α、IL-1β含量均顯著增加(P<0.01)，當(dāng)加入NF-κB信號通路阻斷劑后，TNF-α、IL-1β水平均顯著降低(P<0.01，圖5B)。

* P<0.01, vs. control; # P<0.01, vs. AGEs group. Bay117082, NF-κB signaling pathway inhibitor.圖5 AGEs作用于PBMCs后，Western blot檢測NF-κB p65的表達(A)，ELISA檢測TNF-α、IL-1β的含量變化(B)Figure 5 NF-κB p65 expression examined by Western blot (A) and TNF-α and IL-1β level examined by ELISA (B) after AGEs treatment with PBMCs

2.6 JNK/p38、NF-κB、PI3K/PKB信號通路在AGEs干預(yù)OB后的作用機制

第1組細胞處理后，分別檢測NF-κB p65、IκB、p38、JNK、Akt蛋白水平和mRNA水平的表達變化。Western blot結(jié)果顯示，隨作用時間延長，AGEs可使OB中NF-κB p65、JNK、p38磷酸化和非磷酸化蛋白顯著升高(P<0.05),而IκB磷酸化蛋白表達顯著升高的同時還伴有非磷酸化蛋白表達下降(P<0.01),Akt磷酸化及非磷酸化蛋白未見明顯變化(P>0.05，圖6A～E)。隨AGEs作用時間延長，NF-κB p65、JNK、p38 在mRNA水平的表達顯著升高，IκB mRNA表達顯著下降，尤其在AGEs作用120 h時，而Akt mRNA表達并無明顯變化(P>0.05，圖6F)。

P-NF-κB p65, P-IκB, P-p38, P-JNK, P-Akt are the phosphorylation products of NF-κB p65, IκB, p38, JNK, Akt, respectively. *P<0.05, #P<0.01, △P<0.001, vs. control respectively.圖6 AGEs作用于OB不同時間后，NF-κB、PI3K/PKB、MAPK信號通路相關(guān)基因的Western blot檢測(A～E)和qRT-PCR檢測(F)Figure 6 The related gene expression of NF-κB, PI3K/PKB, MAPK signaling pathways examined by Western blot (A-E) and qRT-PCR (F) after the AGEs stimulated OB

第2組、第3組細胞處理后，采用Western blot、qRT-PCR分別檢測NF-κB p65、IκB、p38、JNK、Akt蛋白水平和mRNA水平的表達變化。Western blot結(jié)果顯示，與只加入AGEs組相比，加入JNK抑制劑(圖7A～E)、p38(圖8A～E)抑制劑后，NF-κB p65、p38、JNK磷酸化和非磷酸化蛋白表達均顯著降低，IκB磷酸化蛋白顯著降低，而非磷酸化蛋白顯著升高(P<0.05)，Akt表達未見明顯變化(P>0.05)。qRT-PCR結(jié)果顯示，與只加入AGEs組相比，加入JNK通路阻斷劑后的IκB表達顯著升高(P<0.05)，NF-κB p65、p38、JNK表達呈下降趨勢，但差異不明顯(P>0.05)，Akt表達未見明顯變化(P>0.05，圖7F)；加入p38信號通路阻斷劑后，NF-κB p65、p38、JNK表達顯著降低(P<0.05)，IκB表達顯著升高(P<0.05)，Akt表達未見明顯變化(P>0.05，圖8F)。

P-NF-κB p65, P-IκB, P-p38, P-JNK, P-Akt are the phosphorylation products of NF- κB p65, IκB, p38, JNK, Akt, respectively. *P<0.05, vs. JNK inhibitor at the same time.圖7 加入JNK阻斷劑后，AGEs對OB NF-κB、PI3K/PKB、MAPK信號通路相關(guān)基因的Western blot檢測(A～E)和qRT-PCR檢測(F)Figure 7 The related gene expression of NF-κB, PI3K/PKB, MAPK signaling pathways examined by Western blot (A-E) and qRT-PCR (F) after blocking by JNK inhibitor

P-NF-κB p65, P-IκB, P-p38, P-JNK, P-Akt are the phosphorylation products of NF-κB p65, IκB, p38, JNK, Akt, respectively. *P<0.05, vs. p38 inhibitor at the same time.圖8 加入p38阻斷劑后，AGEs對OB NF-κB、PI3K/PKB、MAPK信號通路相關(guān)基因的Western blot檢測(A～E)和qRT-PCR檢測(F)Figure 8 The related gene expression of NF-κB, PI3K/PKB, MAPK signaling pathways examined by Western blot (A-E) and qRT-PCR (F) after blocking by p38 inhibitor

3 討論

AGEs是通過非酶糖化反應(yīng)途徑，由還原性單糖的醛基或酮基與氨基酸、核酸或脂質(zhì)等大分子中的氨基之間形成希夫(Schiff)鍵，再經(jīng)緩慢而復(fù)雜的重排，最終形成的不可逆聚合物[7]。AGEs的作用機制復(fù)雜，包括由于糖基化修飾直接引起的蛋白質(zhì)理化性質(zhì)的改變，以及通過其受體及其他結(jié)合蛋白介導(dǎo)的發(fā)生在不同組織細胞的一系列間接病理變化[8]。RAGE是能與AGEs結(jié)合發(fā)揮其作用的重要受體分子之一，作為一種膜蛋白，其分為胞外域、跨膜區(qū)和胞內(nèi)段，屬于免疫球蛋白超家族成員[9]。RAGE在許多細胞表面都有表達，如單核細胞、巨噬細胞、內(nèi)皮細胞、平滑肌細胞和成纖維細胞等，當(dāng)細胞處于激活或應(yīng)激狀態(tài)時(高血糖、炎癥)，細胞RAGE表達顯著增強。AGEs與RAGE作用后，能觸發(fā)多種細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑，如NADPH氧化酶-活性氧通路、PKB/Akt通路、MAPK通路等，涉及細胞外信號調(diào)節(jié)酶ERK、p38、JNK等上游因子，進一步激活NF-κB級聯(lián)發(fā)揮生物學(xué)作用[10]。另外，一些研究證實RAGE是一種類似于Toll樣受體的模式識別受體，在炎癥免疫性疾病中發(fā)揮重要作用[11]，所以從免疫調(diào)節(jié)機制方面研究AGEs致病作用是一個嶄新的課題。

本研究旨在檢測糖尿病AGEs對PBMCs及OB增殖的影響，初步了解AGEs和RAGE相互作用在牙周免疫反應(yīng)以及骨細胞代謝中的作用，并分析AGEs/RAGE作用軸中NF-κB信號通路及其上游PI3K/PKB、MAPK信號通路的作用機制。本研究證實，AGEs隨作用濃度和時間的增加能夠顯著抑制PBMCs、OB的增殖。當(dāng)AGEs作用濃度超過0.5 g/L時，細胞活力隨作用時間增加而逐漸降低，這是本研究選取<0.5 g/L AGEs進行后續(xù)實驗的依據(jù)。

我們首先關(guān)注了牙周炎癥進展中處于一線防御地位的單核巨噬細胞在AGEs作用下的表現(xiàn)。AGEs與單核巨噬細胞的作用存在雙重影響：一方面，單核巨噬細胞通過其細胞表面的RAGE，識別、內(nèi)吞并降解清除AGEs；另一方面，AGEs可以誘導(dǎo)單核巨噬細胞的趨化性，當(dāng)游離的單核巨噬細胞與組織中或血管壁上的AGEs結(jié)合后，可被激活，合成并釋放血小板源生長因子、胰島素樣生長因子等生長因子以及IL-1、TNF-α等細胞因子，從而引起炎癥反應(yīng)并刺激細胞異常增殖[12]。本研究也部分證實了上述觀點，即AGEs作用下，PBMCs中TNF-α、IL-1β分泌增加，同時伴有NF-κB表達增加，而在阻斷NF-κB通路后，上述炎性細胞因子水平顯著下降，證實了NF-κB信號通路參與AGEs致PBMCs加劇炎癥反應(yīng)的過程。未來還可進一步定位RAGE在單核細胞中的表達，并明確更多信號通路參與AGEs/RAGE軸作用的細胞內(nèi)信號傳導(dǎo)機制。

鑒于牙周炎癥實質(zhì)是牙槽骨的吸收，本研究接下來關(guān)注了AGEs對牙周OB以及骨髓基質(zhì)細胞(結(jié)果另文發(fā)表)的影響，結(jié)果證實，0.25 g/L AGEs作用下，OB的NF-κB激活，其上游通路中JNK、p38磷酸化、非磷酸化蛋白表達增加，而Akt磷酸化及非磷酸化蛋白表達無差異，提示AGEs作用過程中JNK、p38參與調(diào)控，而與PI3K/PKB信號通路無關(guān)。另外，在這一過程中，IκB磷酸化蛋白增加驗證了上述AGEs/RAGE介導(dǎo)的NF-κB激活機制[13]：AGEs刺激作用下，IκB發(fā)生磷酸化，NF-κB三聚體降解，釋放NF-κB，級聯(lián)發(fā)揮生物學(xué)作用。JNK和p38被稱為“應(yīng)激誘導(dǎo)”的MAPK，可被多種應(yīng)激刺激激活，如脂多糖、炎癥因子、滲透壓改變、輻射等。JNK和p38可同時被JNK激酶1激活，這種交叉作用使兩條通路在信號分子及生物學(xué)效應(yīng)方面存在諸多相似性。本研究在OB的實驗中也證實了上述觀點，可以認為AGEs通過p38、JNK及下游NF-κB信號通路影響OB代謝。另外，鑒于p38信號通路阻斷可使NF-κB p65表達顯著減低，推斷AGEs作用過程中p38信號通路相對JNK通路對OB的影響更為密切。再者，根據(jù)NF-κB、p38、JNK mRNA在阻斷后表達明顯降低，可以推斷AGEs對OB的影響要弱于對具有干細胞分化潛能的骨髓基質(zhì)細胞的作用(結(jié)果另文發(fā)表)，這也為后續(xù)實驗選擇更為敏感的靶細胞提供了思路。PI3K/PKB信號作為RAGE下游的信號通路途徑之一，是細胞內(nèi)重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑，在細胞存活、凋亡中發(fā)揮重要作用[14]。本研究表明，AGEs干預(yù)OB后，Akt mRNA及蛋白水平表達并無明顯規(guī)律性或顯著性改變，提示AGEs并不通過PI3K/PKB通路影響OB中NF-κB的表達。

鑒于RAGE作為模式識別受體的一種新形式，會在炎癥免疫應(yīng)答中發(fā)揮重要作用，未來可進一步分析AGEs/RAGE軸對牙周炎癥相關(guān)細胞的影響，著重研究不同靶細胞RAGE的分布及類型，通過使用可溶性RAGE、RAGE抗體或基因沉默等方法，結(jié)合信號通路分析，深入了解AGEs促進牙周組織炎癥的作用及其機制，為疾病治療及應(yīng)用于臨床提供思路。