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        右旋糖酐酶生產(chǎn)菌株的分離鑒定及發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化*

        2021-04-14 08:21:02黃斌良吳華德江朝明
        廣西科學(xué) 2021年1期
        關(guān)鍵詞:右旋糖酐氮源碳源

        楊 齊,黃斌良,吳華德,江朝明

        (廣西多得樂生物科技有限公司,廣西南寧 530000)

        0 引言

        右旋糖酐是一種大分子聚合物,主要由D-葡萄糖分子通過α-1,6-糖苷鍵連接形成的主鏈,以及α-1,2-糖苷鍵和α-1,4-糖苷鍵形成的側(cè)鏈構(gòu)成[1]。因其安全無毒、生物相容性好、來源豐富等特性,右旋糖酐已被廣泛應(yīng)用在食品、醫(yī)藥等多個(gè)領(lǐng)域[2,3]。天然的右旋糖酐分子量相對較高,必須經(jīng)酸水解或酶水解形成小分子量右旋糖酐后才能加以應(yīng)用。但是酸法生產(chǎn)的右旋糖酐含有氯離子,并且所得產(chǎn)物分子量不統(tǒng)一,不能滿足臨床需求,而酶法反應(yīng)條件溫和,所得產(chǎn)物分子量范圍比較狹窄,并且能大大減少污染[4]。

        右旋糖酐酶(E.C.3.2.1.11)是一種誘導(dǎo)酶,能夠?qū)R恍运庥倚囚械摩?1,6-糖苷鍵[5,6]。生產(chǎn)右旋糖酐酶的微生物有很多,從一開始,真菌和細(xì)菌就被確定為能夠水解葡聚糖的主要酶源,特別是真菌。來源于細(xì)菌的右旋糖酐酶相對較少,并且其酶活力相對較低,但是卻具有良好的熱穩(wěn)定性[7,8]。真菌來源的右旋糖酐酶大多穩(wěn)定性好,酶活力較高,具有很高的研究價(jià)值和商業(yè)價(jià)值[9-13]。

        Plackett-Burman (PB)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)可以從大量變量中篩選主要因素,響應(yīng)面法是一種有效的實(shí)驗(yàn)工具,通過它可以確定多變量系統(tǒng)中的最優(yōu)條件。因此,為了有利于工業(yè)化生產(chǎn),本研究擬篩選能夠高產(chǎn)右旋糖酐酶的真菌菌株,并利用響應(yīng)面法對其發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化,以期得到最優(yōu)的發(fā)酵培養(yǎng)基,為其深入研究及工業(yè)化應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        右旋糖酐T70、T500、T2000及藍(lán)色葡聚糖購自上海麥克林生化有限公司,常用化學(xué)試劑購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,蛋白胨購自Sigma公司。

        1.2 菌株篩選

        平板篩選培養(yǎng)基(g/L):右旋糖酐9,藍(lán)色葡聚糖1,硝酸鈉3,磷酸氫二鉀1,硫酸鎂0.5,硫酸錳0.01,氯化鉀 0.5,瓊脂粉 15-20,pH值為5.5-6.0。

        基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):右旋糖酐10,蛋白胨3,磷酸氫二鉀1,硫酸鎂 0.5,pH值為5.5-6.0。

        取5 g土樣,加入50 mL 滅菌ddH2O,振蕩30 min后靜置沉淀,取上清分別稀釋1×103-1×107倍后,取100 μL涂布到平板篩選培養(yǎng)基上,28℃靜止培養(yǎng)5-7 d。挑選產(chǎn)生透明圈的菌株,轉(zhuǎn)接到搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基中,28℃、180 r/min震蕩培養(yǎng)5-7 d后,檢測右旋糖酐酶活力[14]。

        1.3 菌株鑒定

        1.3.1 形態(tài)學(xué)鑒定

        在PDA平板上接種菌株,28℃靜止培養(yǎng),觀察并記錄菌落形態(tài)及顏色。

        1.3.2 分子生物學(xué)鑒定

        收集發(fā)酵液中菌絲體,提取基因組DNA。以基因組DNA為模板,以ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)為引物,通過PCR擴(kuò)增ITS rDNA序列。所得產(chǎn)物送至華大基因公司進(jìn)行測序,將測序結(jié)果與NCBI數(shù)據(jù)庫已有的ITS rDNA序列進(jìn)行Blast比對,并利用MEGA的Neighbor-Joining軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,Boot-strap分析重復(fù)設(shè)置為1 000。

        1.4 右旋糖酐酶的活力測定

        取1 mL適當(dāng)稀釋的酶液,加入4 mL 3%的右旋糖酐T70 (0.02 mol/L的醋酸緩沖液配制,指定pH值),在指定溫度下反應(yīng)10 min后,利用3,5-二硝基水楊酸(DNS)法檢測還原糖量[15]。

        一個(gè)酶活力單位(U)定義為每分鐘釋放1 μmol的還原糖所需的酶量。

        1.5 培養(yǎng)基優(yōu)化

        1.5.1 單因素實(shí)驗(yàn)

        分別用葡萄糖、蔗糖、果糖、檸檬酸、玉米淀粉、糊精取代基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的碳源。接種篩選出的菌株于各培養(yǎng)基中,28℃、200 r/min震蕩培養(yǎng)7 d后檢測右旋糖酐酶活力,探索發(fā)酵產(chǎn)酶所需最佳碳源。

        分別用酵母粉、尿素、硝酸鈉、硫酸銨等取代基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的氮源。接種篩選出的菌株于各培養(yǎng)基中,28℃、200 r/min震蕩培養(yǎng)7 d后檢測右旋糖酐酶活力,探索發(fā)酵產(chǎn)酶所需最佳氮源。

        在最佳碳源和最佳氮源組成的培養(yǎng)基中,分別添加不同的無機(jī)鹽:硫酸鎂、氯化鉀、氯化鈉、磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀、硫酸錳、硫酸亞鐵、氯化鈣等。接種篩選出的菌株于各培養(yǎng)基中,28℃、200 r/min震蕩培養(yǎng)7 d后檢測右旋糖酐酶活力,檢測無機(jī)鹽對篩選出的菌株發(fā)酵產(chǎn)酶的影響,以未添加無機(jī)鹽的培養(yǎng)基作為對照。

        1.5.2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)

        1.5.2.1 Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)

        根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取6個(gè)因素進(jìn)行PB實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),每個(gè)因素取兩個(gè)水平:低水平“-1”和高水平“+1”。

        1.5.2.2 最陡爬坡實(shí)驗(yàn)

        結(jié)合PB實(shí)驗(yàn)結(jié)果選出的顯著因素,設(shè)計(jì)它們的變化方向和步長進(jìn)行最陡爬坡實(shí)驗(yàn),使各因素的取值更臨近最佳值區(qū)域,為響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)做好準(zhǔn)備。

        1.5.2.3 Box-Benhnken Design (BBD)實(shí)驗(yàn)

        在最陡爬坡實(shí)驗(yàn)確定的實(shí)驗(yàn)因素中心點(diǎn)基礎(chǔ)上,根據(jù)BBD中心組合設(shè)計(jì)原理,設(shè)計(jì)3因素3水平共15個(gè)實(shí)驗(yàn)點(diǎn)的響應(yīng)面分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 菌株篩選

        從土壤中篩選得到一株右旋糖酐酶產(chǎn)生菌株DJ72,該菌株能夠在篩選平板培養(yǎng)基上形成明顯透明圈,接種到基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基培養(yǎng)7 d后,所產(chǎn)右旋糖酐酶活力達(dá)98 U/mL。

        2.2 菌株鑒定

        2.2.1 形態(tài)學(xué)鑒定

        將菌株在PDA平板培養(yǎng)基上培養(yǎng)3 d后,菌落生長整齊,顯白色或淡黃色,呈絨毛狀(圖1a),在顯微鏡下觀察,菌絲有隔、分枝。小分生孢子呈紡錘狀或卵圓形,大分生孢子呈梭形或月牙形(圖1b)

        圖1 菌株DJ72的形態(tài)學(xué)特征

        2.2.2 分子生物學(xué)鑒定

        提取菌株DJ72的總DNA并作為模板,應(yīng)用通用引物ITS1和ITS4作為引物,克隆得到其ITS rDNA序列,經(jīng)測序獲得一條 521 bp的核苷酸序列,同源性比對分析表明,其與腐皮鐮刀菌(Fusariumsolani)菌株的同源性最高,達(dá)100%(圖2)。

        圖2 菌株DJ72的系統(tǒng)進(jìn)化分析

        根據(jù)形態(tài)學(xué)及分子生物學(xué)鑒定結(jié)果,菌株DJ72為腐皮鐮刀菌(Fusariumsolani)。將DJ72保藏在中國微生物菌種保藏中心,保藏編號為CGMCC No.14542。

        2.3 培養(yǎng)基單因素優(yōu)化

        2.3.1 碳源對DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的影響

        用不同的碳源取代基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的右旋糖酐T500,經(jīng)搖瓶震蕩發(fā)酵7 d后檢測右旋糖酐酶活力。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,右旋糖酐相比其他碳源更有利于右旋糖酐酶的發(fā)酵,其中以分子量更大的右旋糖酐T2000為碳源所產(chǎn)酶活力更高(圖3)。

        圖3 碳源對DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的影響

        2.3.2 氮源對DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的影響

        用不同的氮源取代基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的氮源,經(jīng)搖瓶震蕩發(fā)酵7 d后檢測右旋糖酐酶活力。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,蛋白胨與尿素的組合最利于DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶(圖4)。

        圖4 氮源對DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的影響

        2.3.3 無機(jī)鹽對DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的影響

        在最佳碳源和氮源的基礎(chǔ)上添加不同的無機(jī)鹽,經(jīng)搖瓶震蕩發(fā)酵7 d后檢測右旋糖酐酶活力。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,硫酸鎂、磷酸氫二鉀和硫酸亞鐵有利于DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶(圖5)。

        圖5 無機(jī)鹽對DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的影響

        2.4 培養(yǎng)基響應(yīng)面優(yōu)化

        2.4.1 Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取6個(gè)因素進(jìn)行考察,采用試驗(yàn)次數(shù)N=12的 PB進(jìn)行設(shè)計(jì)。6個(gè)因素分別為右旋糖酐T2000、尿素、蛋白胨、磷酸二氫鉀、硫酸鎂、硫酸亞鐵,分別對應(yīng)表1中A、B、D、E、G和H列。每個(gè)因素取兩個(gè)水平:低水平“-1”和高水平“+1”。另設(shè)兩個(gè)虛擬列,考察實(shí)驗(yàn)誤差,分別為C和F列。具體實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果分析見表1和表2。

        表1 Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與響應(yīng)值Table 1 Plackett-Burman experiment design and response values

        從表2可以看出,在PB設(shè)計(jì)的兩個(gè)水平范圍內(nèi),尿素、蛋白胨和右旋糖酐對酶活力具有顯著影響,影響力大小為尿素>蛋白胨>右旋糖酐。因此,對這3種因素開展更進(jìn)一步研究。為節(jié)約成本,今后實(shí)驗(yàn)中其余成分取最低值。

        表2 Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)因素水平和效應(yīng)分析Table 2 Factor levels and effect analysis in Plackett-Burman experiments

        2.4.2 最陡爬坡實(shí)驗(yàn)

        由PB實(shí)驗(yàn)結(jié)果選取尿素、蛋白胨以及右旋糖酐等3個(gè)因素進(jìn)行最陡爬坡實(shí)驗(yàn),根據(jù)這3個(gè)因素的效應(yīng)大小比較,設(shè)定它們的變化方向和步長,結(jié)果見表3。從實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,最佳發(fā)酵條件可能在實(shí)驗(yàn)3附近,因此以實(shí)驗(yàn)3的條件為響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)的中心點(diǎn)。

        表3 最陡爬坡實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Design and results of the steepest climbing experiment

        2.4.3 Box-Benhnken Design (BBD)實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        在PB實(shí)驗(yàn)及最陡爬坡實(shí)驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,對右旋糖酐、蛋白胨及尿素3個(gè)變量對右旋糖酐酶發(fā)酵結(jié)果的影響進(jìn)行考察,采用響應(yīng)面法進(jìn)行優(yōu)化,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表4。

        表4 Box-Benhnken 實(shí)驗(yàn)方案及結(jié)果Table 4 Box-Benhnken experiment design and results

        通過 Design Expert 軟件對表4中實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行二次多元回歸擬合,得到二次多元回歸方程:Y=227.33+0.50A+5.13B+4.63C-14.75AB-16.25AC-14.00BC-16.42A2-16.17B2-16.17C2,其中Y為右旋糖酐酶活力。進(jìn)一步對該模型進(jìn)行方差分析,結(jié)果如表5。

        表5 方差分析結(jié)果Table 5 Analysis of variance for the quadratic model

        續(xù)表5Continued table 5

        各因素之間交互作用及其對右旋糖酶活力影響如圖6所示,在3個(gè)因素的取值范圍內(nèi),右旋糖酐酶活力均存在最大值。從圖6a可知,蛋白胨與右旋糖酐交互作用明顯,在一定范圍內(nèi)隨著蛋白胨和右旋糖酐取值不斷增大,右旋糖酐酶活力不斷增大,然后開始降低。從圖6b可知,尿素與右旋糖酐交互作用明顯,過高或過低的取值都會使酶活力降低。從圖6c可知,尿素與蛋白胨對右旋糖酐酶活力影響極為顯著,表現(xiàn)為陡峭的曲面。

        圖6 各因素交互作用圖

        根據(jù)回歸模型預(yù)測右旋糖酐酶活力最大為228 U/mL,此時(shí)右旋糖酐T2000用量為11.88 g/L,蛋白胨用量為7.15 g/L,尿素用量為3.14 g/L。根據(jù)預(yù)測結(jié)果進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),平行3次所得右旋糖酐酶活力分別為227,227,229 U/mL,平均值為227.66 U/mL,與預(yù)測結(jié)果基本一致。

        因此,經(jīng)過優(yōu)化,確定腐皮鐮刀菌DJ72發(fā)酵生產(chǎn)右旋糖酐酶的最佳配方為右旋糖酐T2000 11.88 g/L,蛋白胨7.15 g/L,尿素 3.14 g/L,磷酸氫二鉀1.50 g/L,硫酸鎂0.20 g/L,硫酸亞鐵0.05 g/L。

        3 討論

        提高右旋糖酐酶發(fā)酵產(chǎn)量的方法有很多,如Li等[16]采用補(bǔ)料分批發(fā)酵和兩步發(fā)酵法提高了右旋糖酐酶的活力,分別為159.50和187 U/mL。吳敏等[17]通過基因工程的方法將右旋糖酐酶酶活力提高到240 U/mL。其中,響應(yīng)面法是運(yùn)用較多并且行之有效的培養(yǎng)基優(yōu)化方法,如曹研研等[18]通過響應(yīng)面法優(yōu)化棘孢青霉菌的發(fā)酵條件,將右旋糖酐酶酶活力提高了88%。楊帆等[19]通過響應(yīng)面法優(yōu)化圓弧青霉發(fā)酵右旋糖酐酶的發(fā)酵培養(yǎng)基,將酶活力提高1.7倍。本研究通過響應(yīng)面法優(yōu)化腐皮鐮刀菌DJ72發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐酶的培養(yǎng)基成分,與初始發(fā)酵培養(yǎng)基相比,右旋糖酐酶活力從98 U/mL提升至228 U/mL,酶活力提升1.3倍。

        國際上有關(guān)右旋糖酐酶生產(chǎn)菌株的報(bào)道已有很多,但是有關(guān)腐皮鐮刀菌生產(chǎn)右旋糖酐酶的報(bào)道較少,迄今為止僅見到Maksimov等[20]發(fā)表的一篇相關(guān)文章,類似的報(bào)道國內(nèi)尚未見到。本研究是國內(nèi)首次有關(guān)腐皮鐮刀菌生產(chǎn)右旋糖酐酶的報(bào)道,該工作一方面擴(kuò)充了國內(nèi)有關(guān)右旋糖酶來源菌株的范圍,另一方面也為研究人員深入研究右旋糖酐酶提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

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