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        雙酶法提取玫瑰花多酚黃酮及其提取液抗氧化性分析

        2021-04-01 04:21:14狄飛達(dá)鄭亭紀(jì)芯鑰劉一靜涂彩虹張馳松
        食品工業(yè) 2021年3期
        關(guān)鍵詞:黃酮影響

        狄飛達(dá),鄭亭,紀(jì)芯鑰,劉一靜,涂彩虹,張馳松

        1. 成都市農(nóng)林科學(xué)院,農(nóng)產(chǎn)品加工與貯藏研究所(成都 611130);2. 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院(成都 611130);3. 四川旅游學(xué)院(成都 610110)

        玫瑰(Rosa rugosa)作為我國一種悠久文化的美食原料,不僅有觀賞價(jià)值,還具有營養(yǎng)保健價(jià)值。玫瑰花中含有大量維生素、氨基酸、多酚黃酮、可溶性糖、生物堿、礦物質(zhì)等營養(yǎng)物質(zhì),具有極強(qiáng)的抗氧化能力[1],2010年國家衛(wèi)生部頒布相關(guān)法規(guī)將其納為食品,成為藥食兩用的食品之一。Zheng等[2]對(duì)中國常見的65種可食用花卉研究發(fā)現(xiàn),玫瑰花的多酚黃酮及抗氧化活性均為第一,肖麗宏等[3]發(fā)現(xiàn)云南墨紅玫瑰色素粗提物對(duì)人結(jié)腸癌細(xì)胞活性有較強(qiáng)抑制能力,具有較好體外抗氧化活性。因此,玫瑰花在食品工業(yè)中具有廣泛應(yīng)用前景。

        然而,玫瑰花產(chǎn)品開發(fā)主要集中在玫瑰花茶[4]、玫瑰花酒[5]、玫瑰果醬[6]等;針對(duì)玫瑰花多酚黃酮的優(yōu)化試驗(yàn)多以醇溶液為研究對(duì)象[7],雖然提取率較高,但實(shí)際生產(chǎn)成本也較高,不利于后期食品加工直接使用。生物酶解技術(shù)具有提高果蔬汁澄清度和提取率的優(yōu)點(diǎn),并且反應(yīng)體系溫和,應(yīng)用范圍較為廣泛[8]。因此,以新鮮墨紅玫瑰花為原料,探討復(fù)合酶種類、酶活比及料水比對(duì)提取玫瑰多酚黃酮含量的影響,在此基礎(chǔ)上通過單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)考察雙酶活添加量、酶解溫度、pH、酶解時(shí)間等因素對(duì)玫瑰花多酚黃酮的影響并評(píng)價(jià)其抗氧化活性,為玫瑰花實(shí)際生產(chǎn)提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        玫瑰花(云南紅河產(chǎn)地,品種為墨紅,要求完整、無蟲蛀、無霉變、無腐爛采后立即于10 ℃下預(yù)冷2 h,放入-30 ℃冰箱中速凍,貯藏在-20 ℃冰箱);果膠酶、纖維素酶、木聚糖酶(食品級(jí),南寧龐博生物工程有限公司);檸檬酸、碳酸氫鈉(食品級(jí),山東福田藥業(yè)有限公司);1, 1-二苯基-2-苦肼基(DPPH·)、羥自由基(·OH)(索萊寶公司)。

        1.2 儀器與設(shè)備

        恒溫水浴鍋(HH-S,天津賽得利斯實(shí)驗(yàn)分析儀器制造廠);低速離心機(jī)(D5B,上海盧湘儀離心機(jī)儀器有限公司);無油隔膜真空泵(HP-01,上海力辰邦西儀器科技有限公司);打漿機(jī)(HR3868,荷蘭皇家飛利浦公司);pH計(jì)(CT-6023,北京華運(yùn)安特科技有限責(zé)任公司);電子天平(AUY220,SHIMADZU(島津)公司);手持色差儀(CR-400,柯尼卡美能達(dá)控股公司)。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 玫瑰花提取液工藝流程

        1.3.1.1 工藝流程

        預(yù)處理→護(hù)色預(yù)榨汁→保溫調(diào)節(jié)pH→加入復(fù)合酶酶解→滅酶離心→抽濾成品

        1.3.1.2 操作要點(diǎn)

        預(yù)處理:將玫瑰花放置于4 ℃冰箱解凍5 min,清洗瀝干。

        護(hù)色預(yù)榨汁:將解凍的玫瑰花與4 ℃冰水按照一定料水比配制,加入0.05%蘋果酸、0.05%檸檬酸進(jìn)行護(hù)色打漿8 s[9]。

        保溫調(diào)節(jié)pH:將打漿后的玫瑰汁保溫,并調(diào)節(jié)適當(dāng)pH。

        加入雙酶酶解:添加一定量雙酶,并放入振蕩培養(yǎng)箱酶解。

        滅酶離心:將反應(yīng)好的玫瑰花提取液95 ℃滅菌10 min,并在4 000 r/min條件下離心15 min。

        抽濾成品:將離心后的上清液抽濾過0.45 μm濾膜得到澄清的玫瑰花提取液。

        1.3.2 雙酶活比例的確定

        稱取10.0 g玫瑰花,在料水比1∶20(g/mL)、酶解溫度45 ℃、pH 3.5、酶活添加量800 U/g條件下酶解180 min,研究不同單一酶(果膠酶、木聚糖酶、纖維素酶)及不同雙酶活比對(duì)玫瑰花多酚黃酮含量的影響。

        1.3.3 料水比的選擇

        在m(果膠酶)∶m(木聚糖酶)=1∶2條件下,其他條件同1.3.2,考察不同料水比(1∶10,1∶15,1∶20,1∶25和1∶30(g/mL))對(duì)玫瑰花多酚黃酮含量的影響。

        1.3.4 單因素試驗(yàn)

        稱取10.0 g玫瑰花,在料水比1∶20(g/mL)、雙酶為m(果膠酶)∶m(木聚糖酶)=1∶2條件下,考察雙酶活添加量(200,400,600,800,1 000,1 200和1 400 U/g),酶解溫度(30,35,40,45,50,55和60 ℃),酶解時(shí)間(30,60,90,120,150,180和210 min),pH(2.0,2.5,3.0,3.5,4.0,4.5和5.0)4個(gè)因素對(duì)玫瑰花多酚黃酮含量的影響。

        1.3.5 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,選擇雙酶活添加量(A)、酶解溫度(B)、酶解pH(C)、酶解時(shí)間(D)為自變量,設(shè)計(jì)4因素3水平的正交優(yōu)化試驗(yàn),以提高酶解玫瑰花提取液多酚黃酮含量。試驗(yàn)設(shè)計(jì)見表1。

        表1 正交試驗(yàn)因素與水平設(shè)計(jì)

        1.4 試驗(yàn)測定方法

        1.4.1 多酚測定方法

        參考GB/T 8313—2018《茶葉中茶多酚和兒茶素類含量的檢測方法》[10]及文獻(xiàn)[11],略有修改,采用Folin-Ciocalteu比色法測定玫瑰花及花汁多酚含量。以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品,取質(zhì)量濃度0.008~0.040 mg/mL沒食子酸各1 mL,加入5 mL 10%福林酚試劑,反應(yīng)8 min后加入4 mL 7.5%碳酸鈉溶液,室溫下避光放置60 min后于765 nm波長條件下用分光光度計(jì)測定吸光度,以蒸餾水代替標(biāo)液為空白對(duì)照繪制標(biāo)曲,得到?jīng)]食子酸質(zhì)量濃度y(mg/mL)與吸光度x的回歸方程為y=11.037x-0.001 5(R2=0.999 2)計(jì)算玫瑰花提取液中的多酚含量,結(jié)果以沒食子酸當(dāng)量(GAE)表示,單位為mg/mL。測定玫瑰花提取液時(shí),取1 mL玫瑰花澄清汁定容到100 mL,搖勻按照上述方法測定。玫瑰花提取液中的總酚含量以每克玫瑰花中所含的總酚(mg/g,以GAE計(jì))含量計(jì)。

        1.4.2 黃酮測定方法

        參考文獻(xiàn)[12],略有修改,采用NaNO2-Al(NO3)3分光光度計(jì)法測定玫瑰花及花汁的總黃酮含量。配置0.2 mg/mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液,吸取0,0.25,0.50,1.00,2.00,3.00,4.00和6.00 mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液置于25 mL比色管,用60%乙醇補(bǔ)充至15 mL,加入1 mL 5%亞硝酸鈉溶液搖勻后放置反應(yīng)6 min,加入1.5 mL 10%硝酸鋁溶液搖勻放置6 min,加入4 mL 10%氫氧化鈉溶液,并用60%乙醇定容到25 mL,搖勻反應(yīng)15 min后在波長510 nm處測定吸光度,吸光度,以蒸餾水代替樣品溶液做空白對(duì)照,得到蘆丁質(zhì)量濃度y(mg/mL)與吸光度A的回歸方程為y=0.011 3x+0.001 3(R2=0.999 4)算樣品中的總黃酮含量,結(jié)果以蘆丁當(dāng)量(RE)表示,單位為mg/mL。測定玫瑰花提取液時(shí),取10 mL玫瑰花澄清汁定容到100 mL,搖勻按照上述方法測定,玫瑰花提取液中的總黃酮含量以每克玫瑰花中所含的黃酮(mg/g,以RE計(jì))含量計(jì)。

        1.4.3 色差值測定方法

        通過手持色差儀,從L*、a*、b*驗(yàn)證判斷最優(yōu)玫瑰澄清汁成色效果。采用食品工業(yè)中常用的國際照明委員會(huì)(CIE)推薦的L*、a*、b*。L*值表示亮度,又稱白度值(白~黑),L*越大亮度越大;a*值又稱紅度值,表示有色物質(zhì)的紅綠偏向,正值越大偏向紅色的程度越大,負(fù)值絕對(duì)值越大偏向綠色的程度越大;b*值又稱為黃度值,表示有色物質(zhì)的黃藍(lán)偏向,正值越大偏向黃色的程度越大,負(fù)值絕對(duì)值越大偏向藍(lán)色的程度越大。

        1.4.4 玫瑰花提取液抗氧化活性測定方法1.4.4.1 DPPH·清除率的測定

        參考文獻(xiàn)[13],略有改動(dòng),配制0.5~50 mg GAE/g濃度提取液,準(zhǔn)確移取待測樣品液1.0 mL于試管中,加入1.0 mL 0.1 mmol/L DPPH溶液。以2.0 mL蒸餾水作為空白、1.0 mL DPPH溶液與1 mL蒸餾水混合液作為對(duì)照,振搖混勻后進(jìn)行避光保存30 min,在517 nm處測定吸光度。DPPH·清除率按式(1)計(jì)算。

        式中:A為樣品吸光度;A0為對(duì)照組吸光度。

        1.4.4.2 ·OH清除率的測定

        參考文獻(xiàn)[3],略有改動(dòng),配制0.5~50 mg GAE/g濃度提取液,準(zhǔn)確移取待測樣品液1.0 mL于試管中,依次加入1.0 mL 0.15 mol/L硫酸亞鐵溶液、2 mmol/L水楊酸-乙醇溶液,加入1 mL 6 mmol/L過氧化氫溶液,振搖混勻放入37 ℃水浴鍋中水浴30 min,放置冷卻后在510 nm處測定樣品的吸光度。用蒸餾水對(duì)H2O2和樣品進(jìn)行替換,510 nm波長處測定相應(yīng)的吸光度?!H清除率按式(2)計(jì)算。

        式中:A1為樣品吸光度;A2為用蒸餾水替換H2O2后測得對(duì)應(yīng)吸光度;A0為蒸餾水替換樣品后測的吸光度。

        1.5 數(shù)據(jù)處理

        每組試驗(yàn)均重復(fù)3次,采用Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)記錄,Origin 9.0進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,SPSS進(jìn)行Duncan(p<0.05)法比較分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 玫瑰花多酚黃酮含量

        試驗(yàn)采用的玫瑰花是云南墨紅玫瑰品種,含水量82.5%±1.1%,多酚含量70.2±1.4 GAE mg/g(以鮮重計(jì)算),總黃酮含量35.1±2.3 RE mg/g(以鮮重計(jì)算),與Zheng等[2]研究數(shù)據(jù)較為一致。

        2.2 單一酶解種類、雙酶活比例的確定

        酶解技術(shù)具有提高果蔬汁澄清度、活性成分等優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于果蔬加工,其中比較常用的有果膠酶、纖維素酶、木聚糖酶等[14]。不同酶制劑對(duì)玫瑰花多酚黃酮含量的影響如圖1所示。果膠酶、木聚糖酶均能顯著提高玫瑰花提取液的多酚和總黃酮含量,分別達(dá)到43.65 mg/g,21.70 mg/g和40.22 mg/g,21.93 mg/g。

        圖1 單一酶種類對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        在實(shí)際生產(chǎn)中,為進(jìn)一步提高果蔬汁產(chǎn)品質(zhì)量,常采用復(fù)合酶制劑處理果蔬汁[15],在單一酶制劑試驗(yàn)基礎(chǔ)上,發(fā)現(xiàn)果膠酶、木聚糖酶不同酶活比對(duì)于玫瑰花提取液多酚黃酮的含量均有一定影響,由圖2可知,酶活比(m(果膠酶)∶m(木聚糖酶))=1∶2時(shí)玫瑰花提取液多酚黃酮含量最高,此處理下,多酚和總黃酮含量相比于未經(jīng)酶處理均提高約25%,結(jié)合圖1分析可知,相比于單一酶處理提高約15%。故選擇最佳雙酶活比例1∶2。

        2.3 料水比的選擇

        酶解反應(yīng)中,料水比大小會(huì)影響酶與底物接觸程度及溶質(zhì)的擴(kuò)散速率[16],不同料液比對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響如圖3所示。料水比1∶20(g/mL)時(shí),玫瑰花提取液多酚黃酮含量最高,分別為48.84和21.84 mg/g。因此選擇最佳料水比1∶20(g/mL)。

        圖2 雙酶比例對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        圖3 料水比對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        2.4 單因素對(duì)玫瑰花提取液玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        2.4.1 雙酶活添加量對(duì)玫瑰花提取液玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        復(fù)合酶活在一定條件下添加量越多,細(xì)胞壁降解程度越大,活性成分溶出也會(huì)越多[17]。由圖4可知,隨著雙酶活添加量增加,玫瑰花提取液多酚黃酮含量逐漸增加,添加量800 U/g時(shí)達(dá)到最高。因此選擇最佳雙酶活添加量800 U/g。

        圖4 雙酶活添加量對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        2.4.2 酶解溫度對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        酶解反應(yīng)中,不同的酶制劑具有不同的最適酶活反應(yīng)溫度,并且溫度也會(huì)影響底物擴(kuò)散,設(shè)置不同酶解溫度進(jìn)行測試,以確定最佳酶解溫度。由圖5可知,酶解溫度為30~45 ℃時(shí),玫瑰花提取液多酚黃酮含量逐漸升高,此后隨著溫度升高,含量逐漸降低,這是由于反應(yīng)溫度過高會(huì)破壞酶結(jié)構(gòu),并且溫度過高會(huì)導(dǎo)致多酚降解[18]。因此選擇最適酶解溫度45 ℃。

        圖5 酶解溫度對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        2.4.3 酶解pH對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        不同pH環(huán)境下,酶所表現(xiàn)的活力不一樣,酶解率也不同。由圖6可知,隨著pH增大,多酚含量逐漸增加,且在pH 3.5時(shí)增加幅度最大,隨后緩慢增加;黃酮含量在pH 3.5時(shí)達(dá)到最高值。此外,pH>3.5時(shí),玫瑰花提取液顏色偏橙黃色,這是由于玫瑰花色苷可能存在4種結(jié)構(gòu)形式:醌式結(jié)構(gòu)(藍(lán)色)、2-苯基苯并吡喃陽離子(紅色)、醇型假堿(無色)和查爾酮結(jié)構(gòu)(無色),在pH 4~5時(shí),溶液可能是有較多無色的醇型假堿和查爾酮結(jié)構(gòu)存在,導(dǎo)致提取液顏色由紅色向橙黃色轉(zhuǎn)變[19]。因此,綜合色澤考慮,選擇最佳酶解pH 3.5。

        圖6 酶解pH對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        2.4.4 酶解時(shí)間對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        由圖7可知,隨著酶解時(shí)間延長,玫瑰花提取液多酚黃酮含量逐漸增加,但超過180 min時(shí),延長時(shí)間對(duì)多酚含量提升效果不顯著,這是由于隨著酶解時(shí)間增加,細(xì)胞壁破壞程度越高,達(dá)到臨界值以后,其細(xì)胞內(nèi)溶出物趨于最大化,因此綜合考慮生產(chǎn)效率,酶解時(shí)間選用180 min。

        圖7 酶解時(shí)間對(duì)玫瑰花提取液多酚黃酮含量的影響

        2.5 正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果與分析

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,進(jìn)行L9(34)正交試驗(yàn)后結(jié)果如表2所示。結(jié)果表明,各因素對(duì)于多酚含量的影響順序?yàn)锳>D>B>C,即雙酶活添加量>酶解時(shí)間>酶解溫度>酶解pH;各因素對(duì)黃酮含量的影響順序?yàn)锳>C>D>B,即雙酶活添加量>酶解pH>酶解溫度>酶解時(shí)間。分析得出,酶解提取多酚最優(yōu)工藝為A2B1C3D3,酶解提取黃酮最優(yōu)工藝為A2B1C2D3,而A2B1C3D3并未出現(xiàn)在試驗(yàn)組合中,故對(duì)該組合進(jìn)行驗(yàn)證。

        表2 正交試驗(yàn)結(jié)果

        2.6 正交驗(yàn)證試驗(yàn)及抗氧化活性分析

        對(duì)正交試驗(yàn)確定的兩組最佳提取工藝條件進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),并與未進(jìn)行酶解處理的玫瑰花提取液進(jìn)行對(duì)比,玫瑰花提取液的多酚黃酮含量、色差、抗氧化活性結(jié)果見表3。

        由表3可知,A2B1C2D3與A2B1C3D3處理后的玫瑰澄清汁多酚黃酮含量相近,其并均優(yōu)于未酶解處理的玫瑰花提取液,提高約50%。通過色差感官表明,A2B1C3D3組合a*值低于A2B1C2D3組合,此時(shí),玫瑰澄清汁前者偏橙黃色,而后者呈現(xiàn)橙紅色,具有更好的感官品質(zhì),該組合玫瑰花提取液的DPPH·及·OH清除率顯著高于未酶解處理玫瑰花提取液,分別達(dá)到93.21%及84.31%。故而試驗(yàn)最優(yōu)組合為A2B1C2D3,即雙酶活添加量800 U/g,酶解溫度40 ℃,酶解pH 3.5,酶解時(shí)間210 min。

        表3 優(yōu)化后玫瑰花提取液多酚黃酮、色差及抗氧化活性結(jié)果

        2.7 玫瑰花提取液體外抗氧化活性分析

        由圖8可知,在0.5~50 mg GAE/g濃度范圍內(nèi),玫瑰花提取物對(duì)DPPH·清除能力與其濃度呈正相關(guān)關(guān)系,玫瑰花提取物濃度大于10 mg GAE/g后,其對(duì)DPPH·清除能力緩慢上升。根據(jù)IC50值可以確定清除自由基能力的強(qiáng)弱[20],試驗(yàn)中,玫瑰花提取物清除DPPH·的IC50約1 mg GAE/g。

        由圖9可知,在0.5~50 mg GAE/g濃度范圍內(nèi),玫瑰花提取物對(duì)·OH清除能力與其濃度呈正相關(guān)關(guān)系。根據(jù)數(shù)據(jù)可知,玫瑰花提取物清除·OH的IC50約1.5 mg GAE/g。

        圖8 玫瑰花提取物濃度對(duì)DPPH·清除率的影響

        圖9 玫瑰花提取物濃度對(duì)·OH清除率的影響

        3 結(jié)論

        試驗(yàn)確定雙酶法酶制備富含多酚總黃酮玫瑰花提取液的最佳工藝:雙酶活添加量(m(果膠酶)∶m(木聚糖酶)=1∶2)800 U/g,酶解溫度40 ℃,酶解pH 3.5,酶解時(shí)間210 min,按照此工藝制得的玫瑰花提取液多酚含量為53.15 mg/g(以GAE計(jì)),總黃酮含量為28.32 mg/g(以RE計(jì)),相對(duì)于未酶解處理提高約50%。具有玫瑰典型的柔紅色澤,玫瑰花提取液的DPPH·及·OH清除率分別達(dá)到93.21%及84.31%,并且通過對(duì)不同濃度的玫瑰提取液研究表明,其提取液具有良好抗氧化活性。因此,采用雙酶法工藝制備富含多酚黃酮的玫瑰花提取液可行穩(wěn)定,可作為玫瑰花液態(tài)健康食品的生產(chǎn)原料,對(duì)于玫瑰花的綜合利用提供思路。

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