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        利用溶氧調(diào)控型啟動(dòng)子Pvgb構(gòu)建產(chǎn)surfactin的重組枯草芽孢桿菌

        2020-12-29 07:16:44周大袁林佳輝
        生物加工過(guò)程 2020年6期
        關(guān)鍵詞:溶氧枯草芽孢

        周大袁,林佳輝,李 霜

        (南京工業(yè)大學(xué) 生物與制藥工程學(xué)院,江蘇 南京 211800)

        表面活性素(surfactin)是芽孢桿菌(Bacillus)分泌的一種脂肽類(lèi)化合物,由親水肽環(huán)與疏水脂肪酸鏈組成[1]。與化學(xué)合成的表面活性劑相比,surfactin具有低毒、可生物降解、可再生、優(yōu)異的乳化活性與表面活性等優(yōu)點(diǎn),在石油開(kāi)采、環(huán)境修復(fù)、醫(yī)藥衛(wèi)生等行業(yè)具有廣泛的應(yīng)用前景[2-4]。

        當(dāng)前,采用誘變育種或培養(yǎng)基優(yōu)化等技術(shù)可將產(chǎn)surfactin野生菌株的產(chǎn)量從100~600 mg/L提高到1 000 mg/L左右[5-6];采用基因工程手段,如改造surfactin合成模塊的啟動(dòng)子強(qiáng)度和促進(jìn)產(chǎn)物外排等,可將surfactin產(chǎn)量提升2~5倍[7-8]。在surfactin的發(fā)酵過(guò)程中,由于surfactin具有良好的表面活性和起泡性,在攪拌和曝氣過(guò)程中會(huì)形成大量的泡沫,泡沫攜帶大量發(fā)酵液及菌體從生物反應(yīng)器的排氣口溢出,造成產(chǎn)物、營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和細(xì)胞的流失,并且伴隨著高度污染風(fēng)險(xiǎn)。近年來(lái),泡沫分離裝置[9]、固定化發(fā)酵[10]以及厭氧發(fā)酵[11]等發(fā)酵裝置和工藝相繼出現(xiàn),仍未有效解決產(chǎn)泡難題。

        可溶性血紅蛋白(VHb)是透明顫菌屬(Vitreoscilla)菌株體內(nèi)的一種可以高效攝取環(huán)境中氧分子的蛋白,它可以提升細(xì)菌在發(fā)酵液中的攝氧量,因而在各種好氧微生物中得到應(yīng)用[12-13]。編碼VHb蛋白的基因是vgb,其啟動(dòng)子Pvgb是溶氧調(diào)控型,可以在低氧含量的條件下被啟動(dòng),增加VHb的含量,從而增加細(xì)菌的攝氧率。Wu等[14]用串聯(lián)重復(fù)的Pvgb啟動(dòng)子調(diào)控Escherichiacoli中聚羥基丁酸酯(PHB)關(guān)鍵基因的表達(dá),使得重組E.coli在微氧發(fā)酵條件下PHB產(chǎn)量提高了3.5倍,達(dá)到4.86 g/L。而Pvgb啟動(dòng)子在枯草芽孢桿菌中的活性及溶氧誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄強(qiáng)度等研究尚未有研究報(bào)道。

        Surfactin是由非核糖體肽合成酶(NRPS)催化合成的模式化合物,NRPS負(fù)責(zé)識(shí)別和催化不同的氨基酸底物,進(jìn)行surfactin的肽端模塊組裝,而4′-磷酸泛酰巰基乙胺轉(zhuǎn)移酶(Sfp功能蛋白)則是起著“激活”NRPS中功能結(jié)構(gòu)域的作用[15]。因?yàn)锽acillussubtilis168菌株中編碼Sfp功能蛋白的基因sfp發(fā)生移碼突變,導(dǎo)致它無(wú)法合成surfactin;將sfp基因回補(bǔ)到168菌株后,重組168菌株可以合成surfactin[16]。

        本文中,筆者考察溶氧誘導(dǎo)型啟動(dòng)子Pvgb及其串聯(lián)多拷貝啟動(dòng)子在枯草芽孢桿菌168菌株中的轉(zhuǎn)錄水平,利用溶氧誘導(dǎo)型啟動(dòng)子Pvgb調(diào)控Sfp蛋白的表達(dá),考察不同溶氧條件下重組168菌株合成surfactin的能力,以期為微氧發(fā)酵surfactin工程菌的構(gòu)建提供研究基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 菌株及質(zhì)粒

        枯草芽孢桿菌B.subtilis168(簡(jiǎn)稱(chēng)Bs168)、surfactin高產(chǎn)菌株枯草芽孢桿菌B.subtilisBS-37、大腸桿菌E.coliDH5α、質(zhì)粒載體pHY300PLK與帶有綠色熒光蛋白基因質(zhì)粒(pJN-gfp),保存于筆者所在實(shí)驗(yàn)室;帶有8個(gè)串聯(lián)重復(fù)Pvgb啟動(dòng)子質(zhì)粒(pBHR-P8vgb)由清華大學(xué)陳國(guó)強(qiáng)教授饋贈(zèng)。

        1.1.2 儀器設(shè)備

        ZQZY-70BS型雙層恒溫振蕩培養(yǎng)箱,上海知楚儀器有限公司;DGP3600-SD型高效液相色譜儀,美國(guó)賽默飛世爾科技公司;Spectra Max M3型多功能酶標(biāo)儀,上海寰熙醫(yī)療器械有限公司;紫外分光光度計(jì),上海第三分析儀器廠。

        1.1.3 工具酶及試劑

        限制性?xún)?nèi)切酶(XbaⅠ、SmaⅠ)、PCR高保真酶Prime STAR Mix與質(zhì)粒T4連接酶,TaKaRa公司;引物合成及測(cè)序由蘇州金唯智公司完成;其余試劑為進(jìn)口或國(guó)產(chǎn)市售分析純。

        1.1.4 培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件

        大腸桿菌與芽孢桿菌均用LB培養(yǎng)基(g/L):胰蛋白胨 10.0、酵母粉 5.0、NaCl 10.0。培養(yǎng)基調(diào)pH為7.0,0.1 MPa滅菌20 min。

        抗生素(μg/mL):氨芐青霉素50、四環(huán)素20。

        產(chǎn)surfactin發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):蔗糖 20.0、蛋白胨 20.0、KH2PO410.0、K2HPO43.0、MgSO40.5、FeSO40.02。

        種子培養(yǎng)液培養(yǎng)條件:37 ℃、200 r/min培養(yǎng)12 h;發(fā)酵培養(yǎng)基接種量為2%(體積分?jǐn)?shù)),37 ℃發(fā)酵培養(yǎng)24 h。

        不同溶氧控制方法:高溶氧培養(yǎng)條件是250 mL帶擋板的錐形瓶中裝入50 mL發(fā)酵液,8層紗布封口,轉(zhuǎn)速為200 r/min;低氧培養(yǎng)條件是250 mL錐形瓶中裝入100 mL發(fā)酵液,16層紗布封口,轉(zhuǎn)速為100 r/min。

        1.1.5 引物

        本實(shí)驗(yàn)所用引物如表1所示。

        表1 本實(shí)驗(yàn)所用引物Table 1 Primers used in this experiment

        1.2 方法

        1.2.1 不同基因片段的重疊PCR

        重疊PCR分兩步進(jìn)行。第一步:分別以Bs168、B.subtilisBS-37、pBHR-P8vgb和pNJ-gfp為模板,用表1中的引物,反應(yīng)體系為模板1 μL,上下游引物各1 μL,Prime STAR Mix 25 μL,重蒸水 22 μL。PCR條件為94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸(每1 000 bp衍生1 min),30個(gè)循環(huán),PCR結(jié)束后進(jìn)行膠回收。第二步:以膠回收好的基因片段為模板,反應(yīng)體系為需要重疊的2個(gè)片段各1 μL,2個(gè)片段的上下游引物各1 μL(需要重疊在一起的片段中,5′引物為上游引物,3′為下游引物),Prime STAR Mix 25 μL,重蒸水 21 μL;PCR條件不變,結(jié)束后膠回收。

        1.2.2 重組質(zhì)粒構(gòu)建

        經(jīng)過(guò)重疊PCR的基因產(chǎn)物與大腸桿菌-枯草芽孢桿菌穿梭質(zhì)粒pHY300PLK,分別用限制性?xún)?nèi)切酶XbaⅠ、SmaⅠ酶切4 h后,經(jīng)過(guò)膠回收,再用T4連接酶過(guò)夜連接,獲得不同的重組質(zhì)粒,轉(zhuǎn)入到大腸桿菌E.coliDH5α中,用四環(huán)素與氨芐青霉素抗性平板篩選,挑選單克隆,再經(jīng)菌落PCR驗(yàn)證。

        1.2.3 重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到枯草芽孢桿菌

        重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到枯草芽孢桿菌中的轉(zhuǎn)化方法參照文獻(xiàn)[17]進(jìn)行,最后提取質(zhì)粒PCR驗(yàn)證。

        1.2.4 發(fā)酵液中surfactin含量測(cè)定

        取發(fā)酵液1 mL,在12 000 r/min條件下離心5 min;取300 μL上清液,用1 200 μL色譜級(jí)無(wú)水乙醇稀釋混勻,12 000 r/min條件下離心5 min后,用0.22 μm的有機(jī)膜過(guò)濾,記為待測(cè)樣品。Surfactin的檢測(cè)利用高效液相色譜(戴安P680),色譜柱為Amethyst C18-P column(4.6 mm×250 mm,5 μm)。液相條件為流動(dòng)相為90% 的甲醇與10%的水(含有0.05%的三氟乙酸),進(jìn)樣量40 μL,流速0.8 mL/min,柱溫35 ℃;采用紫外檢測(cè)器檢測(cè),波長(zhǎng)為214 nm。以surfactin標(biāo)準(zhǔn)品(Sigma公司)為參照進(jìn)行定量定性。

        1.2.5 菌體熒光性檢測(cè)

        取1 mL發(fā)酵液,8 000 r/min離心10 min后,用無(wú)菌水懸浮清洗3次后,將菌體濃度稀釋成同一濃度,取200 μL待測(cè)菌液至96孔酶標(biāo)板上,設(shè)置出發(fā)菌作為對(duì)照,用Spectra Max M3多功能酶標(biāo)儀檢測(cè),選擇激發(fā)濾光片為485 nm、發(fā)射濾光片為525 nm。用HT Soft軟件分析所得數(shù)據(jù),并重復(fù)3次。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 重組表達(dá)質(zhì)粒pHY300-Pvgb-gfp、pHY300-P43-gfp構(gòu)建及驗(yàn)證

        以質(zhì)粒pJN-gfp為模板,用表1中的引物克隆出gfp基因,并與已獲得啟動(dòng)子P43或單個(gè)Pvgb重疊PCR,獲得的克隆片段P43-gfp、Pvgb-gfp與質(zhì)粒pHY300都經(jīng)過(guò)XbaⅠ與SmaⅠ的限制性酶切后,用T4連接酶過(guò)夜連接,獲得重組質(zhì)粒,轉(zhuǎn)入大腸桿菌E.coliDH5α中,挑取單菌落進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果如圖1所示。

        由圖1可知,酶切基因gfp片段長(zhǎng)度約為727 bp,表明重組質(zhì)粒pHY300-Pvgb-gfp、pHY300-P43-gfp構(gòu)建成功。

        1—P43 gfp驗(yàn)證;2—P43驗(yàn)證;3—Pvgb gfp驗(yàn)證;M—DNA標(biāo)準(zhǔn)品圖1 重組質(zhì)粒pHY300-P43-gfp與pHY300- Pvgb-gfp的PCR驗(yàn)證Fig.1 PCR profile of recombinant plasmid pHY300- P43-gfp and pHY300-Pvgb-gfp

        2.2 多拷貝啟動(dòng)子Pvgb及表達(dá)質(zhì)粒pHY300-Pnvgb-gfp構(gòu)建

        Wu等[14]證明在大腸桿菌中Pvgb啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄強(qiáng)度受到其串聯(lián)重復(fù)拷貝數(shù)量的影響,Pvgb啟動(dòng)子拷貝數(shù)為1~8時(shí),轉(zhuǎn)錄強(qiáng)度具有正相關(guān)性。但在枯草芽孢桿菌中,Pvgb啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄活性及強(qiáng)度還未見(jiàn)報(bào)道,因此本實(shí)驗(yàn)中使用綠色熒光蛋白GFP為標(biāo)記蛋白,考察1~3個(gè)重疊啟動(dòng)子Pvgb的啟動(dòng)強(qiáng)度,構(gòu)建了1~3個(gè)重疊的Pvgb啟動(dòng)子(圖2),以gfp為報(bào)告基因,構(gòu)建表達(dá)質(zhì)粒pHY300-Pnvgb-gfp,并導(dǎo)入大腸桿菌E.coliDH5α中,挑取單菌落進(jìn)行PCR驗(yàn)證。

        由圖2可知,PCR驗(yàn)證結(jié)果出現(xiàn)明顯的兩條或三條帶,這是因?yàn)镻vgb啟動(dòng)子重疊了2個(gè)或3個(gè)。由此可推斷重組質(zhì)粒pHY300-Pnvgb-gfp構(gòu)建成功。

        M—DNA標(biāo)準(zhǔn)品;1—Pvgb驗(yàn)證;2—Pvgb-gfp驗(yàn)證;3—P2vgb驗(yàn)證;4—P2vgb-gfp驗(yàn)證;5—P3vgb驗(yàn)證;6—P3vgb-gfp驗(yàn)證圖2 重組質(zhì)粒pHY300-Pnvgb-gfp的PCR驗(yàn)證Fig.2 Colony PCR profile of recombinant plasmid pHY300-Pnvgb-gfp

        2.3 重組表達(dá)質(zhì)粒pHY300-Pvgb-sfp、pHY300-P43-sfp構(gòu)建及驗(yàn)證

        以Bs168為模板克隆P43啟動(dòng)子序列,以高產(chǎn)surfactin菌株B.subtilisBS-37[10]為模板克隆具有功能的sfp基因,再以質(zhì)粒pBHR-P8vgb為模板,克隆出單個(gè)Pvgb啟動(dòng)子,并用重疊PCR獲得Pvgb-sfp與P43-sfp片段。將獲得的克隆片段與質(zhì)粒pHY300經(jīng)過(guò)XbaⅠ與SmaⅠ的限制性酶切后,用T4連接酶連接過(guò)夜,獲得重組質(zhì)粒,并轉(zhuǎn)入大腸桿菌E.coliDH5α中,挑取單菌落進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果如圖3所示。

        M—DNA標(biāo)準(zhǔn)品;1—P43驗(yàn)證;2—P43-sfp驗(yàn)證;3—Pvgb驗(yàn)證;4—Pvgb-sfp驗(yàn)證圖3 重組質(zhì)粒pHY300-P43-sfp與pHY300- Pvgb-sfp的PCR驗(yàn)證Fig.3 Colony PCR profile of recombinant plasmid pHY300-P43-sfp and pHY300-Pvgb-sfp

        由圖3可知,啟動(dòng)子P43長(zhǎng)度是387 bp,基因sfp長(zhǎng)度是675 bp,啟動(dòng)子Pvgb長(zhǎng)度是135 bp,表明重組質(zhì)粒pHY300-Pvgb-sfp、pHY300-P43-sfp構(gòu)建成功。

        2.4 單個(gè)啟動(dòng)子Pvgb與多拷貝啟動(dòng)子Pvgb在枯草芽孢桿菌中啟動(dòng)活性測(cè)定

        利用GFP蛋白編碼基因?yàn)閳?bào)告基因,考察單個(gè)啟動(dòng)子(Pvgb)、2個(gè)啟動(dòng)子(P2vgb)以及3個(gè)啟動(dòng)子串聯(lián)(P3vgb)在Bs168中的表達(dá)水平,結(jié)果如圖4所示。

        培養(yǎng)條件:1—50 mL發(fā)酵液(250 mL搖瓶),8層紗布,37 ℃、200 r/min;*—100 mL發(fā)酵液(250 mL搖瓶),16層紗布,37 ℃、100 r/min圖4 不同溶氧條件下不同啟動(dòng)子的熒光強(qiáng)度比較Fig.4 Comparison of fluorescence intensities of different promoters under different dissolved oxygen conditions

        由圖4可知,隨著Pvgb拷貝數(shù)增加,GFP的表達(dá)水平有一定增強(qiáng),P3vgb啟動(dòng)的表達(dá)量可以提高1倍,這也與Wu等[14]在大腸桿菌中的研究結(jié)果相同;但溶氧水平對(duì)單個(gè)和多拷貝的Pvgb啟動(dòng)子的表達(dá)水平?jīng)]有特別顯著的影響,在低溶氧水平下,P3vgb的表達(dá)量?jī)H比高溶氧水平的對(duì)照組提高了不到20%。同時(shí),與枯草芽孢桿菌中常用的強(qiáng)啟動(dòng)子P43相比,單個(gè)及多拷貝Pvgb的表達(dá)強(qiáng)度遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于前者,表明在枯草芽孢桿菌中Pvgb具有一定的啟動(dòng)活性,但強(qiáng)度很低。

        2.5 重組菌株的surfactin發(fā)酵結(jié)果

        2.5.1 重組菌株B.subtilis168-P43-sfp與B.subtilis168-Pvgb-sfp的surfactin發(fā)酵驗(yàn)證

        宿主Bs168菌株因sfp基因的移碼突變,無(wú)法合成surfactin,將具有活性功能的sfp基因構(gòu)建到重組質(zhì)粒pHY300-P43-sfp和pHY300-Pvgb-sfp中,通過(guò)化學(xué)轉(zhuǎn)化方法導(dǎo)入宿主Bs168中,獲得了重組菌株Bs168-P43-sfp與Bs168-Pvgb-sfp,結(jié)果見(jiàn)圖5。

        由圖5可知,重組枯草芽孢桿菌在LB培養(yǎng)基中好氧發(fā)酵24 h后,用高效液相色譜(HPLC)檢測(cè)surfactin的產(chǎn)量(結(jié)果證明野生菌株Bs168無(wú)法合成surfactin),而導(dǎo)入有活性的Sfp蛋白后,重組Bs168菌株可以生產(chǎn)surfactin,與Ongena等[18]研究結(jié)果相同。

        圖5 Surfactin的高效液相色譜Fig.5 HPLC chromatography of surfactin

        利用168菌株構(gòu)建產(chǎn)surfactin工程菌,可以選用不同來(lái)源的Sfp功能蛋白。將本研究中所表達(dá)的Sfp功能蛋白與劉麗霞等[16]所使用的Sfp功能蛋白比較后發(fā)現(xiàn),其同源性為72%,表明Bs168菌株的NRPS系統(tǒng)對(duì)Sfp功能蛋白具有較好的適配性。

        2.5.2 重組菌株在不同溶氧條件下的surfactin發(fā)酵

        將攜帶P43-sfp以及不同拷貝Pnvgb-sfp(n=1~3)的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到Bs168菌株中,考察4個(gè)重組菌株在不同溶氧條件下的surfactin發(fā)酵水平,結(jié)果如圖6所示。

        圖6 不同發(fā)酵條件下重組菌株Bs168的surfactin產(chǎn)量Fig.6 Surfactin yield of recombinant Bs168 strains under different fermentation conditions

        由圖6可知:不同溶氧條件下重組菌株的surfactin產(chǎn)量差異巨大,在高氧條件下,4個(gè)重組菌株的surfactin產(chǎn)量差異不顯著,均可以達(dá)到1 800 mg/L,單位菌體密度(1 OD)的生產(chǎn)水平為380 mg;但在低氧條件下,surfactin產(chǎn)量均只有200 mg/L,單位菌體密度的生產(chǎn)水平為80 mg。

        上述結(jié)果表明:Sfp功能蛋白的表達(dá)水平并不是決定surfactin合成能力的關(guān)鍵因素,高溶氧條件才是surfactin高效合成的重要因素;即使細(xì)胞中Sfp功能蛋白的數(shù)量差異達(dá)百倍,對(duì)surfactin的合成能力并無(wú)顯著影響。影響surfactin合成的因素包括srfA的表達(dá)水平[7]以及合成前體如中長(zhǎng)鏈β-羥基酯酰CoA和重要氨基酸前體(如,L-Leu、L-Glu和L-Asp等)的供給水平[19]。王大威等[20]在產(chǎn)脂肽的枯草芽孢桿菌ZW-3中表達(dá)了透明顫菌血紅蛋白基因VHb,結(jié)果發(fā)現(xiàn)脂肽產(chǎn)量提高了31.8%,達(dá)111.6 mg/L。用于合成surfactin的NRPS是一個(gè)多酶復(fù)合物,由srfA基因簇上的4個(gè)基因(srfAA、srfAB、srfAC和srfAD)編碼,在Bs168菌株中srfA基因簇的啟動(dòng)子PsrfA是一個(gè)誘導(dǎo)型強(qiáng)啟動(dòng)子[20]。因此,進(jìn)一步強(qiáng)化Bs168菌株在低溶氧下合成surfactin的能力需要從兩個(gè)方面開(kāi)展:①提高細(xì)胞的溶解氧攝取能力和強(qiáng)化低溶氧下srfA的表達(dá)水平;②在surfactin生產(chǎn)菌株中進(jìn)行外源VHb基因的強(qiáng)化表達(dá)將有助于提高菌株對(duì)溶解氧的攝取能力,提升菌株在低溶氧條件下的surfactin發(fā)酵水平。

        3 結(jié)論

        將來(lái)源于透明顫菌血紅蛋白VHb的溶氧調(diào)控型啟動(dòng)子Pvgb在枯草芽孢桿菌168菌株中進(jìn)行了功能驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)Pvgb在168菌株中為弱啟動(dòng)子,具有較弱的低溶氧誘導(dǎo)作用和“劑量效應(yīng)”。通過(guò)比較弱啟動(dòng)子Pvgb與強(qiáng)啟動(dòng)子P43對(duì)Sfp功能蛋白的表達(dá)以及溶氧水平對(duì)surfactin發(fā)酵的影響,發(fā)現(xiàn)枯草芽孢桿菌168菌株中決定surfactin合成能力的關(guān)鍵因素是溶氧水平而不是Sfp功能蛋白的表達(dá)量。因此,強(qiáng)化表達(dá)提高溶氧攝取能力的VHb功能基因?qū)⒂兄诖龠M(jìn)菌株在低溶氧水平下的surfactin合成能力。

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