賀應(yīng)蛟，丁 明

（中國藥科大學 生命科學與技術(shù)學院，江蘇 南京211198）

在中心法則中，RNA作為連接DNA 與蛋白質(zhì)的“橋梁”，參與遺傳信息的傳遞與表達，在生物活動中發(fā)揮著必不可少的作用。根據(jù)其結(jié)構(gòu)與功能的差異，將RNA 分為信使RNA（mRNA）、轉(zhuǎn)運RNA（tRNA）、核糖體RNA（rRNA）等，現(xiàn)階段研究最為關(guān)注的就是mRNA。來源于細胞核內(nèi)mRNA前體的處理決定了mRNA 運送到胞質(zhì)后的命運，通過對RNA 的定位來控制基因的表達[1]。mRNA 前體修飾包括5′端加帽、3′端加poly（A）尾、外顯子連接復(fù)合蛋白的沉積和剪接過程中內(nèi)含子的去除等[2]。對mRNA 前體修飾的過程中，RBPs 在細胞核內(nèi)沉積到轉(zhuǎn)錄本上決定其最終目的地。RBPs 是一種多功能調(diào)節(jié)因子，它們負責處理、定位和控制許多mRNA 的翻譯，改變反式作用RBPs 的表達（如敲低、敲除或過表達）或改變mRNA 靶標中順式作用調(diào)控元件會導(dǎo)致發(fā)育或認知缺陷等許多疾病狀態(tài)，RNA-蛋白質(zhì)相互作用是調(diào)節(jié)RNA 水平基因表達的重要檢查點[3]?；虮磉_的翻譯調(diào)控和轉(zhuǎn)錄水平上的調(diào)控一樣重要。mRNA 自身也存在調(diào)控區(qū)域[4]，如5′-UTR 與3′-UTR 中序列的改變都會導(dǎo)致疾病的發(fā)生[5]，3′-UTR 通常在細胞質(zhì)中發(fā)揮作用，但RBP 的結(jié)合卻是發(fā)生在細胞核中。RBP 可以與不同的效應(yīng)蛋白相互作用，另一方面，由于細胞類型和細胞狀態(tài)的不同，使得每個3′-UTR 調(diào)控元件都可能執(zhí)行不同的功能，且細胞狀態(tài)也決定了RBP 能否在特定的時間段與mRNA 3′-UTR 結(jié)合。除了上面提到的因素，影響RBP 與3′-UTR 結(jié)合的原因還包括細胞類型、周圍所處的局部環(huán)境與RNA 的二級或三級結(jié)構(gòu)等[6]。

1 RNA-蛋白質(zhì)的相互作用

RBPs 和核糖核蛋白（ribonucleoprotein，RNP）復(fù)合物是RNA-蛋白質(zhì)相互作用的典型功能形式，在轉(zhuǎn)錄后水平上廣泛控制真核生物中基因的表達[7]。RNA-蛋白質(zhì)相互作用的研究在多種應(yīng)用中顯示出實用性，包括評估與人類遺傳疾病中突變RNA 基序的蛋白質(zhì)結(jié)合[8]：急性髓系白血?。ˋcute Myelocytic Leukemia，AML）的RNA 結(jié)合蛋白網(wǎng)絡(luò)與磺胺類藥物治療效果評估，以及發(fā)現(xiàn)與寨卡病毒RNA 相互作用的必需宿主蛋白。然而，由于實驗數(shù)據(jù)的有限性，迄今為止，只有少數(shù)代表性物種的部分RBP 得到了較好的研究[9]。

RBP 基因的異常表達和突變會影響RNA 加工的各個步驟，從而改變靶基因的功能。RBP 與多種疾病相關(guān)，包括神經(jīng)系統(tǒng)疾病。如導(dǎo)致智力低下最常見的脆性X 綜合征（fragile-X syndrome，F(xiàn)XS）中致病基因FMR1 產(chǎn)生的蛋白FMRP 在其5′UTR 區(qū)發(fā)生突變，從而使CGG 序列重復(fù)次數(shù)增加，導(dǎo)致基因啟動子的高甲基化，從而引起轉(zhuǎn)錄沉默[10]。而在患有共濟失調(diào)綜合癥（fragile X tremor ataxia syndrome，F(xiàn)XTAS）的個體中，F(xiàn)MR1 基因并沒有完全沉默。在FXTAS中，延長的CGG 重復(fù)被轉(zhuǎn)錄為FMR1 mRNA 的一部分，此時與CCG重復(fù)的RNA相互作用的幾個RBP，包括hnRNPA2/B1 和MBNL，在空間上被隔離在正常位置之外，無法執(zhí)行其正常功能。這些RBPs 功能的喪失導(dǎo)致了FXTAS 的發(fā)生發(fā)展[11]。

在疾病機制的研究方面，WANG等人利用CRISPR/Cas9技術(shù)對490 個RBPs 的2 900 個sgRNA 來篩選，發(fā)現(xiàn)CRISPR介導(dǎo)的RBM39 的缺失或藥物降解會導(dǎo)致HOXA9 靶基因的剪接改變，這是AML 必需的轉(zhuǎn)錄網(wǎng)絡(luò)。因此，與其他癌癥相比，導(dǎo)致了AML 細胞的優(yōu)先靶向性。在這過程中，同時發(fā)現(xiàn)了幾個過去從未被描述為與AML維持相關(guān)的RBP 不受調(diào)控[12]。RNA 結(jié)合蛋白RBM39 作為剪切體突變AML 的潛在靶點可被現(xiàn)有磺胺類藥物靶向[13]。鑒于RBM39 在剪接中的機械作用以及DCAF15 銜接蛋白對磺胺類藥物活性的需求，確定了剪接體基因突變的存在和DCAF15 表達水平都是對磺胺類藥物反應(yīng)的重要預(yù)測因子[12]。

此外，在眾多以RNA 為主要遺傳物質(zhì)的生物中，絕大部分是病毒，如煙草花葉病毒、艾滋病病毒（HIV）、流感病毒等，而RBP 在其生命活動周期中發(fā)揮著舉足輕重的作用。如寨卡病毒（ZIKV），其遺傳物質(zhì)是單股正鏈RNA（+ssRNA）的有包膜病毒，主要通過節(jié)肢動物伊蚊（Aedes）傳播（蟲媒病毒）[14-15]。病毒顆粒中的遺傳物質(zhì)侵入宿主細胞后，正鏈RNA 發(fā)揮類似于mRNA 功能的作用，利用宿主提供的原料合成自身編碼的蛋白質(zhì)，其中包括RNA 復(fù)制酶、衣殼蛋白等，并在新合成的RNA 復(fù)制酶作用下以正鏈RNA為模板合成雙鏈RNA，隨后雙鏈RNA 在解旋酶的作用下，正鏈脫離負鏈，與之前合成的衣殼蛋白等裝配并釋放，負鏈則基序作為模板不斷合成正鏈。即便是了解了病毒的復(fù)制過程，但其免疫和發(fā)病機理還是未知。

2 RNA-蛋白質(zhì)相互作用研究方法

研究mRNA 與特定RBP 相互作用的生物化學方法過去通常依賴于SELEX 法、凝膠阻滯實驗（EMSA）、紫外交聯(lián)（UV cross-linking）、免疫沉淀（IP）或/和親和純化技術(shù)（Affinity purification）[2-3]。目前用于研究RNA 與其相互作用蛋白的主流方法有APEX、BioID 等，已經(jīng)有研究者對這些方法進行過歸納與總結(jié)[16]。

用于研究胞內(nèi)RNA 追蹤方法如下：①原位雜交。即RNA-FISH，反義寡核苷酸帶有放射自顯影標記，如3H 或32P，可以靶向其特異的DNA 或RNA 序列。②分子信標（molecular beacons）。與FISH 原理相同，可檢測固定的和活細胞中的RNA。③MS2 標記。將帶有MS2 噬菌體莖環(huán)標記的待研究RNA 與融合有熒光報告蛋白的MS2 衣殼蛋白共同表達，檢測細胞內(nèi)熒光信號。④Cas-derived systems?；贑RISPR/Cas 技術(shù)，熒光探針標記的dCas 蛋白靶向與sgRNA 序列結(jié)合的目標RNA，通過檢測活胞內(nèi)熒光信號追蹤目標RNA。

2.1 基于BioID 方法

2.1.1 BioID

BioID （ proximity-dependent biotin identification）由DamID 發(fā)展而來，在原核細胞中Dam 甲基化酶與潛在的DNA 結(jié)合蛋白融合，當融合蛋白在真核細胞中表達時，它將與之接觸的DNA 序列特異性的甲基化留下相互作用的化學痕跡[17]。BioID 是基于一個突變的BirA 產(chǎn)生的混雜的生物素化[18]。BirA*是一個35KD 大小來源于大腸桿菌的DNA結(jié)合生物素蛋白連接酶，可調(diào)節(jié)乙酰輔酶A 羧化酶亞基的生物素化，并作為生物素生物合成操縱子的轉(zhuǎn)錄抑制子。在這個系統(tǒng)中，生物素受體標簽（BAT）與感興趣的蛋白融合，并與BirA 共表達，使BAT 序列被生物素化[17]。體內(nèi)鄰近標記可成功識別已知的蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)和蛋白質(zhì)-RNA 相互作用。在DamID 基礎(chǔ)上，人們又對此方法進行改進，將鏈霉親和素單體突變?nèi)诤系礁信d趣的蛋白質(zhì)上，在其附近招募一個包含生物素和光活化基團的小的化學探針。NHS 活化的生物素可以標記多肽鏈N 端和側(cè)鏈上賴氨酸殘基中含有的氨基（-NH2）。通過365 nm 波長的紫外激活光化學基團與附近分子迅速且不可逆地發(fā)生反應(yīng)，使細胞內(nèi)的蛋白質(zhì)和RNA 生物素化[19]。對于大的蛋白質(zhì)，標記幾個賴氨酸殘基和N 端通常不會影響蛋白功能或其結(jié)合特性；但對于短肽來說，隨機的生物素化可能會阻塞生物素化蛋白下游活動所必須的結(jié)合位點，改變其功能特性。

2.1.2 工程化抗壞血酸過氧化物酶

工程化抗壞血酸過氧化物酶（engineered ascorbate peroxidase，APEX）的原理與方法是用過氧化氫（H2O2）將活細胞處理1 min，APEX 催化生物素-苯酚的單電子氧化，生成壽命非常短的生物素苯氧基自由基[20]。該自由基共價標記APEX 附近的內(nèi)源蛋白質(zhì)，從而允許其隨后使用鏈霉親和素磁珠進行富集并通過質(zhì)譜鑒定[21]。由于APEX 缺乏二硫鍵和鈣結(jié)合位點，因此可以在還原性細胞質(zhì)環(huán)境中表達而不會喪失活性。通過對APEX 的改進，在生物素-苯酚存在的情況下，APEX2 中的A134P 突變可改善動力學、熱穩(wěn)定性，且對高H2O2濃度具有抗性[22]，相對減少對細胞的損傷。

2.1.3 RNA-蛋白質(zhì)相互作用檢測

RNA-蛋白質(zhì)相互作用檢測（RNA-protein interaction detection，RaPID）是通過改造枯草芽孢桿菌中的BirA，稱為BASU，可用于直接研究完整活細胞中特定RNA 與蛋白質(zhì)的相互作用，且更適合研究長度小于132 nt 的基序[23]，所以在研究短RNA 序列時可能特別有用[8，24]。

2.2 非BioID 方法

2.2.1 MS2 標記

MS2 標記是一種體內(nèi)RNA 標記方法，用于跟蹤活細胞內(nèi)RNA 的原始技術(shù)。來源于噬菌體ssRNA，它與原核生物和真核生物中內(nèi)源性的RNA-蛋白復(fù)合物正交[25]，最初被稱為MAPS。MS2 標簽被噬菌體MS2 衣殼蛋白（MS2 coat protein，MCP）特異性識別，該蛋白再與MS2 結(jié)合蛋白（MS2 binding protein，MBP）融合，因為MBP 本身能與直鏈淀粉樹脂結(jié)合，可以特異性保留含有修飾的MS2-sRNA 復(fù)合物[26]。而Robert Singer 使用GFP 作為熒光報告分子將GFP與MS2 衣殼蛋白結(jié)合，即融合了熒光蛋白的MS2 外殼蛋白（MCP-FP）能與攜帶有RNA 序列的MS2 結(jié)合位點（MS2 binding site，MBS）結(jié)合，作為捕獲RNA 和RNA 結(jié)合蛋白的一種方式[27]。通過將GFP 與這種MS2 蛋白融合，通過熒光顯微鏡觀察可以在細胞內(nèi)遷移時跟蹤RNA[28]。MS2 可插入mRNA 的3′-UTR 或5′-UTR，但MCP 與5′-UTR 的MBS結(jié)合會降低標記mRNA 的翻譯效率[25，29-31]，且3′UTR 含有更少的進化保守區(qū)域，更適合位點的插入[25]。MCP 二聚化是與MBS 結(jié)合的先決條件[32-33]。

2.2.2 PUP-IT

PUP-IT（Pupylation-based interaction tagging）是一種新的近似標記系統(tǒng)，利用細菌Pup 蛋白偶聯(lián)系統(tǒng)，將編碼Pup連接酶的pafA 基因與誘餌蛋白進行融合。Pup 是一種小型細菌蛋白，包含了C 端為Gly-Gly-Gln 的共計64 個氨基酸。在細菌中，C 端的Gln 首先脫氨基為Glu，這種形式的Pup被稱為Pup（E）。在ATP 存在下，Pup 連接酶PafA 催化Pup（E）上C 端的Glu 磷酸化，然后將C 端的Glu 連接到目標蛋白賴氨酸殘基側(cè)鏈上。這個過程與真核生物泛素化過程相似，賴氨酸的ε-氨基是反應(yīng)所必須的。PafA 介導(dǎo)底物上的Pup 修飾。Pup（E）與底物賴氨酸的連接與主序列無關(guān)。

與BioID 和APEX 不同，BioID 和APEX 都依賴于活化的底物和標簽蛋白在相對半徑內(nèi)的自由擴散，PUP-IT 使被激活的Pup 與酶結(jié)合，并以更有限的標記半徑運行。在體外和細胞中，PUP-IT 比BioID 更活躍，沒有APEX 那么活躍（APEX 標記約1 min），因此可能不適用于研究快速信號轉(zhuǎn)換中的蛋白質(zhì)與蛋白質(zhì)相互作用。但PUP-IT 和APEX 都可以用于細胞外標記。但因為Pup 不能在細胞膜上擴散，因此PUP-IT 不適用于研究細胞器內(nèi)部的相互作用。PUP-IT 與其他近似標記系統(tǒng)互補[34]。

2.2.3 XRNAX

蛋白質(zhì)交聯(lián)RNA 的通用純化方法提取的樣品中包含所有主要生物類型的RNA，主要是通過紫外交聯(lián)細胞，用TRIZOL 法提取并收集TRIZOL 中間相，將其洗滌以去除游離的未交聯(lián)的蛋白質(zhì)和RNA，并經(jīng)DNA 酶消化以去除DNA，從而得到高濃度RNA 和蛋白質(zhì)，再通過測序與質(zhì)譜進行后續(xù)檢測[35]。除了UV cross-linking，與紫外交聯(lián)不同，甲醛作為一種可逆交聯(lián)劑，經(jīng)常作為固定劑以保持細胞結(jié)構(gòu)的完整性。以甲醛作為交聯(lián)劑，利用核糖核蛋白免疫沉淀反應(yīng)（RNP immunoprecipitation，RIP）的方法研究體內(nèi)RNA-蛋白質(zhì)的相互作用，利用特異性抗體通過免疫沉淀從細胞中分離RNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物[36]。

2.2.4 點擊化學輔助RNA 內(nèi)酯捕捉技術(shù)

點擊化學輔助RNA 內(nèi)酯捕捉技術(shù)（click-chemistryassisted RNA interactome capture，CARIC）使用炔基尿苷類似物對RNA 進行代謝標記，使RNA 的捕獲不依賴于poly（A）[23]。

3 結(jié)語

縱觀目前的研究現(xiàn)狀，已經(jīng)有越來越多的RNA 相互作用蛋白的功能被發(fā)現(xiàn)，也有更多的研究人員著眼于這一關(guān)鍵方向。雖然蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用的研究方法已經(jīng)趨于成熟，也有許多新的技術(shù)出現(xiàn)并用于研究RNA 與蛋白質(zhì)的相互作用，但這些方法與目前的研究現(xiàn)狀仍不能滿足對于未知領(lǐng)域與方向的開發(fā)需求，上述每一種研究RNA 與蛋白質(zhì)相互作用的方法都需要和其他方法聯(lián)合使用來達到最佳的效果。也只有在方法優(yōu)化的基礎(chǔ)上，才能發(fā)現(xiàn)更深層的RNA與蛋白的互作關(guān)系網(wǎng)絡(luò)，并不能僅從單一的方面來決定某一種研究方法的優(yōu)劣。

對于標記方法的靈敏度而言，APEX 明顯優(yōu)于PUP-IT，而PUP-IT 又優(yōu)于BioID，但APEX 由于苯酚與過氧化氫的加入而使得其細胞毒性增加，即使改進后的APEX2 已經(jīng)對這一點作出優(yōu)化，但該問題仍無法避免。而PUP-IT 目前的研究顯示并不適用于細胞器內(nèi)部相互作用研究，BioID/BioID2 雖然用途廣泛，但對于短肽卻仍然存在缺陷。對于RNA-蛋白質(zhì)交聯(lián)來達到純化RNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物的方法，即使是可逆的甲醛，仍然會對細胞膜產(chǎn)生損傷。因此如何發(fā)揮各方法的優(yōu)點或開發(fā)更多的方法對RBP 的研究尤為重要。隨著多組學與質(zhì)譜技術(shù)的發(fā)展與聯(lián)合應(yīng)用，過去由點至面的研究方法逐漸向更深入和精細的方向發(fā)展，并推動人們對RBP 蛋白在體內(nèi)的功能以及分子機制的理解。