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        山楂葉提取物分離純化工藝的優(yōu)化*

        2020-11-25 03:09:30姜紅紅王紅霞連運河喬延江
        關(guān)鍵詞:黃酮工藝

        姜紅紅 ,王紅霞 ,連運河 ,,喬延江 ,,高 偉 ,**

        (1. 北京中醫(yī)藥大學(xué) 中藥學(xué)院 北京 102488;2. 晨光生物科技集團股份有限公司 研發(fā)中心 營養(yǎng)提取實驗室邯鄲 057250)

        山楂葉為薔薇科植物山里紅(Crataegus pinnatifida Bge. var. majorN. E. Br.)或山楂(Crataegus pinnatifidaBge.)的干燥樹葉[1]。山楂葉提取物系山楂葉經(jīng)加工制成的提取物,具有活血化瘀、理氣通絡(luò)的功效[2]。山楂葉化學(xué)成分明確,主要含有黃酮類、花青素類、三萜類、有機酸類等[3],其中黃酮類成分主要為牡荊素、牡荊素鼠李糖苷、金絲桃苷、槲皮素、山奈酚、蘆丁等[4]。山楂葉總黃酮中的牡荊素鼠李糖苷是其藥理作用的主要單體成分,也是評價山楂葉提取物質(zhì)量的重要指標[5]。山楂葉總黃酮中金絲桃苷和牡荊素含量較高,牡荊素鼠李糖苷次之。其中牡荊素鼠李糖苷具有擴張冠狀血管、保護實驗性心肌缺血、改善心肌供血量降低血脂等作用,有重要的藥用價值[6]。

        近年來,山楂葉提取物工藝取得很大進展。提取方式包括乙醇回流法[8-9]、微波輔助提取技術(shù)[10];分離純化方法包括大孔樹脂吸附法[11-12]、膜過濾技術(shù)等[13]。山楂葉總黃酮從山楂葉原料中初步提取出來后,含有較多的雜質(zhì),如山楂多糖、鞣質(zhì)、蛋白質(zhì)、花青素及色素等,影響最終產(chǎn)品的純度。為提高提取物純度,采用分離純化方法,依據(jù)黃酮類化合物和雜質(zhì)的性質(zhì)差異精制黃酮類化合物[14]。中國藥典記載的山楂葉提取物制備工藝,即采用乙醇浸漬法提取、D101 大孔樹脂純化,制備工藝簡單易行、經(jīng)典可靠。隨著中藥提取物技術(shù)發(fā)展,新型的、高安全性樹脂被研制出來,如LX158、HZ841、HPD300 等[15-16],對黃酮類有較強的吸附性能,提高了制備山楂葉提取物的成功率,在滿足市場需求基礎(chǔ)上,為山楂葉提取物作為藥物原料提供理論基礎(chǔ)。。

        本文通過比對產(chǎn)品收率和質(zhì)量等指標,對藥典工藝中樹脂型號、純化工藝、洗脫體系進行優(yōu)化,提高生產(chǎn)效能、降低成本,為工業(yè)生產(chǎn)提供更優(yōu)工藝選擇。

        1 實驗方法

        1.1 儀器

        分析天平(天津泰斯特儀器有限公司AL104);電子天平(常熟市雙杰測試儀器廠JJ600);數(shù)顯恒溫水浴鍋(上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠DK-S24);循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科工貿(mào)有限公司SHB-Ⅲ);紫外分光光度計(上海天美科技儀器有限公司Uv-1102);高效液相色譜儀(安捷倫科技有限公司Agilent-1260)。

        1.2 原料與試劑

        山楂葉藥材(山東臨沂藥材收購站,由北京中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院中藥鑒定系劉春生教授鑒定);蘆丁對照品98.6%、牡荊素鼠李糖苷對照品99%(中國食品藥品檢定研究院);HPD300、HPD100、LX158、HZ841、D101大孔吸附樹脂(西安藍曉科技股份有限公司);甲醇、乙醇、乙腈、四氫呋喃、乙酸(色譜純天津市永大化學(xué)試劑有限公司);亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉(分析純天津市聞東區(qū)紅巖試劑廠)。

        1.3 檢測方法

        1.3.1 總黃酮含量測定

        1.3.1.1 對照品溶液制備與標準曲線的繪制

        取蘆丁對照品適量,加入乙醇制成每1 mL 含蘆丁0.20 mg 的溶液作為對照品溶液。精密吸取對照品溶液于25 mL 容量瓶中,并分別加水稀釋至6 mL,依次加入亞硝酸鈉溶液1 mL、硝酸鋁溶液1 mL、氫氧化鈉溶液10 mL 顯色,加水定容至刻度,并以相應(yīng)試劑做空白,照紫外分光光度法檢測,以濃度為橫坐標,吸光度為縱坐標,如表1 所示,繪制標準曲線[1],見圖1。

        由圖1 測定結(jié)果顯示,蘆丁濃度在10-50 μg.mL-1范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        表1 線性范圍考察表

        1.3.1.2 含量測定

        精密稱定0.15 g 山楂葉提取物樣品,加入50%乙醇 25 mL 超聲處理 5 min 后,放置 3 h 以上,取 2 mL 加水定容至25 mL 容量瓶中作為供試品溶液。取2 mL供試品溶液,按照標準曲線項下制備方法,測定吸光值,依據(jù)標準曲線讀出蘆丁的濃度,既得[1]。

        1.3.2 牡荊素鼠李糖苷含量測定

        1.3.2.1 色譜條件

        色譜柱:C18(150 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:四氫呋喃-甲醇-乙腈-乙酸-水(38:3:3:4:152);流速:1 mL·min-1;檢測波長:330 nm;柱溫:室溫;進樣量:10 μL[1]。

        1.3.2.2 對照品溶液及供試品溶液的制備

        精密稱定牡荊素鼠李糖苷對照品5 mg,加入60%乙醇制成每1 mL含100 μg的溶液作為對照品溶液;精密稱定山楂葉提取物樣品50 mg,加60%乙醇定容至50 mL容量瓶中,作為供試品溶液。

        1.3.2.3 標準曲線的繪制

        精密量取上述對照品溶液和供試品溶液,將供試品溶液稀釋至不同濃度。取已知濃度的混合對照品溶液,過濾后依次注入高效液相色譜儀。以牡荊素鼠李糖苷對照品濃度(mg·mL-1)為橫坐標,以峰面積(S)為縱坐標,繪制標準曲線[1],見表2、圖2。

        由圖2 測定結(jié)果顯示,牡荊素鼠李糖苷濃度在12.5~400 μg.mL-1范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        表2 線性范圍考察表

        圖1 線性關(guān)系考察

        圖2 牡荊素鼠李糖苷線性關(guān)系考察

        1.3.2.4 含量測定

        分別精密吸取對照品溶液和供試品溶液各10 μ L,注入液相色譜儀(安捷倫1260),測定,記錄色譜圖[1]。供試品特征圖譜中應(yīng)出現(xiàn)四個特征峰,與參照物對相應(yīng)的S峰,見圖3所示:

        1.4 工藝方法

        1.4.1 山楂葉提取物制備方法

        量取適量的山楂葉提取液等份,通過大孔吸附樹脂柱,依次用水和不同的濃度的乙醇洗脫,收集相應(yīng)的洗脫液,回收乙醇,濃縮至一定相對密度,噴霧干燥既得。

        1.4.2 山楂葉提取物收率結(jié)果計算[11]

        式中:

        X-山楂葉提取物的收率,%;

        m1—產(chǎn)出產(chǎn)品重量,單位為克(g);

        n1-產(chǎn)出產(chǎn)品總黃酮或牡荊素鼠李糖苷含量,%;

        m2-投入原料質(zhì)量,單位為克(g);

        n2-投入原料單位總黃酮或牡荊素鼠李糖苷含量,%。

        1.4.3 單因素試驗

        分別考察提取溫度、提取時長、料液比和乙醇濃度對山楂葉總黃酮提取得率的影響。每個參數(shù)選擇6個因素,每組實驗重復(fù)三次。

        1.4.3.1 提取溫度對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        精密稱定山楂葉粗粉600 g,平均分成六份,置于2 L 玻璃燒杯中,以70%乙醇為溶劑,按照料液比1∶8分別在30、40、50、60、70、80℃條件下提取1.5 h,考察溫度對總黃酮得率的影響。

        圖3 高效液相色譜峰

        1.4.3.2 乙醇體積分數(shù)對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        精密稱定山楂葉粗粉600 g,平均分成六份,置于2 L 玻璃燒杯中,以料液比1∶8 在70℃條件下,分別以30%、40%、50%、60%、70%、80%體積分數(shù)的乙醇提取1.5 h,考察乙醇濃度對總黃酮提取得率的影響。

        1.4.3.3 料液比對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        精密稱定山楂葉粗粉600 g,平均分成六份,置于2 L 玻璃燒杯中,以不同料液比1∶3、1∶5、1∶8、1∶10、1∶12、1∶14,在70℃條件下,用70%乙醇提取1.5 h,考察料液比對總黃酮得率的影響。

        1.4.3.4 提取時間對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        精密稱定山楂葉粗粉600 g,平均分成六份,置于2 L 玻璃燒杯中,并編號,以料液比1∶8,70%乙醇為溶劑,在70℃條件下提取,1-4 號設(shè)置不同時間1、1.5、2、2.5、3 h,考察提取時間對總黃酮得率的影響。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 藥典工藝驗證

        按照《中華人民共和國藥典》2015年版中山楂葉提取物工藝進行提取、吸附、洗脫,將收集的洗脫液進行濃縮、干燥,得到棕黃色粉末[1],具體工藝參數(shù)見表3。

        取山楂葉藥材粗粉100 g,按照試驗2.1 確定的最佳工藝參數(shù)進行驗證試驗,并計算總黃酮提取率。結(jié)果見表4。

        由實驗結(jié)果可知,其總黃酮含量均>80%、牡荊素鼠李糖苷均>8.8%,且產(chǎn)品收率均>88%。故該提取工藝穩(wěn)定可行。

        2.2 優(yōu)化工藝開發(fā)

        本試驗采用與藥典工藝相同條件的提取方法,主要以篩選樹脂型號、考察洗脫條件來優(yōu)化分離純化工藝的過程參數(shù),在獲得滿足指標產(chǎn)品的基礎(chǔ)上,與藥典工藝進行對比。

        表3 藥典工藝與優(yōu)化工藝參數(shù)及結(jié)果對比

        表4 工藝驗證的結(jié)果

        2.2.1 單因素試驗

        2.2.1.1 提取溫度對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        由圖4 可知,山楂葉總黃酮提取得率隨著提取溫度的升高而升高,在70℃時達到最高,當溫度繼續(xù)升高,總得率呈現(xiàn)下降趨勢。分析可知,在一定范圍內(nèi)升高溫度可以促使細胞壁的滲透作用,使黃酮大量溶出,當溫度過高會破壞黃酮結(jié)構(gòu),導(dǎo)致黃酮得率下降。因此,提取山楂葉總黃酮最佳溫度為68-70℃。

        2.2.1.2 乙醇體積分數(shù)對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        如圖5 所示,山楂葉總黃酮得率隨著乙醇體積分數(shù)的增大而呈先升高保持穩(wěn)定,后升高再降低的趨勢,在乙醇體積分數(shù)為70%時,總黃酮得率最高。這是由于相似相容原理,70%乙醇極性與山楂葉總黃酮極性類似,可溶出更多的黃酮。當乙醇濃度較低時,更多的極性較大的成分如糖類、蛋白質(zhì)等大量溶出;當乙醇濃度較高時,更多脂溶性成分溶出,導(dǎo)致黃酮含量相對偏低。所以山楂葉總黃酮最佳提取乙醇濃度為70%。

        2.2.1.3 料液比對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        由圖6 可知,山楂葉總黃酮得率隨著料液比的增大而逐步提高,當料液比為1∶8-1∶14 時,總黃酮得率達到最高,這是因為當提取溶劑體積較小時,總黃酮溶解不充分,為節(jié)省原料,可選擇1∶8料液比即可。

        2.2.1.4 提取時間對山楂葉總黃酮提取得率的影響

        如圖7 所示,山楂葉總黃酮提取得率隨著提取時間的增大而升高,在2-2.5 h 時達到平衡,隨著時間再次增大,黃酮得率呈現(xiàn)稍微下降的趨勢。分析可知,有效成分的溶出會和提取時間成正相關(guān)關(guān)系,但是時間越長,其他的成分及雜質(zhì)也會相應(yīng)溶出,當黃酮基本提完全時,延長時間只會加速其他雜質(zhì)的溶出。因此,提取山楂葉總黃酮最佳提取時間為2 h。

        圖4 提取溫度對黃酮含量的影響

        圖5 乙醇體積分數(shù)對黃酮含量的影響

        圖6 料液比對總黃酮提取得率的影響

        2.2.2 正交試驗

        經(jīng)過初步試驗,確定主要影響提取過程的因素為:溶劑用量、提取溫度、提取時間。對此三個因素分別取三個水平,采用L9(34)正交試驗,因素水平安排見表5。

        圖7 提取時間對總黃酮提取得率的影響

        根據(jù)確定的因素水平表,稱取9份山楂葉,并干燥粉碎成粗粉,每份20 g,按照L9(34)正交試驗設(shè)計表進行平行試驗,提取、過濾、放涼后回收乙醇,濃縮液攪拌均勻移至50 mL容量瓶中,用50%乙醇定容至刻度。測定濃縮液中總黃酮含量,結(jié)果見下表6、7。

        綜合評價上述三個提取條件對山楂葉總黃酮提取效果的影響,提取時長最為顯著(P≤0.05);而提取溶劑用量和提取溫度對提取率的影響無顯著意義,根據(jù)極差大小,可以看出,影響最終提取得率的因素順序為提取時長>提取溫度>料液比。優(yōu)選的最佳工藝組合為A2B3C3,即按照料液比1∶10,在70℃條件下提取2.5 h。

        2.2.3 驗證試驗

        取山楂葉藥材粗粉100 g,按照正交試驗確定的最佳工藝參數(shù)進行連續(xù)動態(tài)逆流提取,并計算總黃酮提取率。結(jié)果見表8。由實驗結(jié)果可知,總黃酮提取得率均≥8.0%,且3 次提取得率上下浮動不超過0.22%,該提取工藝穩(wěn)定可行。

        2.2.4 分離純化試驗

        2.2.4.1 大孔吸附樹脂型號篩選

        分別精密稱取處理好的HZ841、HPD100、HPD300、LX158、D101 型號樹脂各100g[12],濕法裝于玻璃樹脂柱中。量取500 mL混合均勻的山楂葉水提物的溶液5份(測定總黃酮含量為m),相同試驗條件下進行動態(tài)吸附。待吸附完畢,用等體積的水、70%乙醇洗脫至完全,收集相應(yīng)的洗脫液,干燥。檢測水洗液中總黃酮含量為n1,下柱水中的總黃酮含量為n2,樹脂飽和吸附量為n。并檢測洗脫液中總黃酮含量。相同試驗重復(fù)三次,計算三次每種樹脂的飽和吸附量、吸附率、洗脫率的平均值。具體結(jié)果計算如下。結(jié)果見表9:

        表5 因素水平表

        表6 L9(34)正交試驗設(shè)計結(jié)果

        表7 方差分析表

        表8 試驗驗證結(jié)果

        表9 不同型號樹脂測定結(jié)果對比

        公式1 中,樹脂的飽和吸附量吸附液中總黃酮量(m)-水洗液中總黃酮含量-下柱水中總黃酮含量(n2)。

        由表8 可知,HPD300 樹脂能吸附黃酮總量最高;LX158 樹脂的吸附率和解吸率最高,損失最少,分別比其他四種樹脂均高出10%-30%、5%-60%。樹脂的飽和吸附量一定程度體現(xiàn)其對有效成分的吸附性能,但是對于工業(yè)化生產(chǎn),樹脂的吸附率和洗脫率越高,其分離效率越高、減少有效成分損失、降低生產(chǎn)成本。綜上,純化山楂葉總黃酮最佳樹脂為LX158。

        2.2.4.2 洗脫體系的考察

        取100 mL LX158 型號樹脂8 份,精密量取500 mL上樣液,動態(tài)吸附至完全、除雜洗脫后,分別用足量等體積10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、95%乙醇進行洗脫,測定相應(yīng)洗脫液,檢測其總黃酮與牡荊素鼠李糖苷含量。結(jié)果見圖8。

        (1)在乙醇濃度為≤5%時,洗脫液中總黃酮和牡荊素鼠李糖苷含量幾乎為0,此階段可采用水洗脫除掉水溶性雜質(zhì),如多糖類。分別采用1、2、3、4、5 倍柱體積純凈水洗脫,將水洗液干燥稱重,試驗重復(fù)操作三次,并檢測其中總黃酮比重。

        三次測定結(jié)果均為:水洗體積為4BV 時,總黃酮被逐漸洗脫出來,為減少黃酮損失,且去除雜質(zhì),選擇3BV作為最佳水洗體積。

        (2)乙醇濃度≥10%時,總黃酮和牡荊素鼠李糖苷逐漸被洗脫下來,采用20%~30%乙醇進行洗脫時,牡荊素鼠李糖苷含量在8%~14%之間,達到最高,隨著乙醇濃度的增大,牡荊素鼠李糖苷含量降低,乙醇濃度到達40%時,幾乎被洗脫完全。同時,乙醇濃度<30%時,洗脫液中總黃酮含量<80%,隨著乙醇濃度≥30%時,總黃酮含量≥80%,為獲得同時滿足牡荊素鼠李糖苷≥8.8%、總黃酮≥80%的山楂葉提取物,擬選用30%的乙醇為最佳洗脫溶劑。

        (3)采用足量的30%乙醇按照0.5=1 BV/h 流速進行洗脫。洗脫液濃縮干燥,試驗重復(fù)操作三次,并檢測其中總黃酮與牡荊素鼠李糖苷含量。結(jié)果均低于要求值。山楂葉中除了大部分糖類雜質(zhì),還有一些不易溶于水的雜質(zhì)。故需進一步用乙醇-水溶液洗脫除雜。分別選擇等體積的5%、10%、15%乙醇,再用30%乙醇-水溶液洗脫,收集相應(yīng)洗脫液,檢測其總黃酮與牡荊素鼠李糖苷含量。實驗重復(fù)三次,取結(jié)果平均值。試驗表明,用10%乙醇作為二次除雜溶劑,30%乙醇解吸液中牡荊素鼠李糖苷含量均較高,故選用10%乙醇作為最佳除雜溶劑。

        圖8 洗脫體系曲線

        分別采用1 BV、2 BV、3 BV、4 BV、5 BV 的10%乙醇沖洗5 根樹脂柱,再用30%乙醇-水溶液洗脫,測定相應(yīng)洗脫液,檢測其總黃酮與牡荊素鼠李糖苷含量。最終確定以3 BV 10%乙醇作為洗脫除雜液。

        2.2.4.3 洗脫劑用量的考察

        山楂葉提取液經(jīng)過LX158 樹脂,按照上述工藝參數(shù)進行除雜洗脫后,加入30%乙醇進行洗脫,每10 mL收集一次洗脫液,共收集10 份,檢測其中總黃酮與牡荊素鼠李糖苷含量,當洗脫至第4個柱體積時,牡荊素鼠李糖苷單體成分已經(jīng)基本洗脫完全,當洗脫至第6個柱體積時,總黃酮類成分已經(jīng)基本洗脫完全;最終確定的洗脫劑用量為60 mL,即6 BV。

        綜上,山楂葉提取物最佳洗脫體系為3BV 純凈水洗除雜、3 BV 10%乙醇洗脫除雜、6BV30%乙醇洗脫。

        2.3 優(yōu)化工藝與藥典工藝對比

        取混合均勻的干燥山楂葉兩份各2 kg,分別采用藥典工藝和優(yōu)化工藝進行提取、純化、干燥試驗。將得到的山楂葉提取物混合均勻、稱重,計算其重量得率;按照1.4.3 項下的方法計算兩工藝的產(chǎn)品收率;按照1.3 檢測方法檢測各自的總黃酮和牡荊素鼠李糖苷含量。本試驗重復(fù)三次。具體純化工藝參數(shù)及對比結(jié)果見表3。

        由表3可知,在相同實驗條件下,優(yōu)化工藝與藥典工藝分別采用LX158 和D101 型號,樹脂進行純化試驗,其他條件相同情況下,為獲得合格產(chǎn)品,藥典工藝需要兩次低濃度乙醇除雜,較比優(yōu)化工藝用時長1倍、所用乙醇體積大;從產(chǎn)品質(zhì)量來看,兩工藝所得產(chǎn)品總黃酮相差不大,優(yōu)化工藝牡荊素鼠李糖苷含量高出4.72%;對比兩者的收率,優(yōu)化后的工藝重量得率較藥典工藝高0.79%、含量收率高出7.07%。

        根據(jù)圖9 可以看出,藥典工藝和優(yōu)化工藝所制備提取物相似度≥0.9%。在保留時間5.22 s 與6.5 s 之間的最高峰為牡荊素鼠李糖苷,其他成分峰的保留時間和峰面積也幾乎重合。根據(jù)表10 譜圖的S 值均≥0.9,可以看出,兩種工藝提取無明顯差別。

        3 結(jié)論

        圖9不同提取工藝產(chǎn)品指紋圖譜

        表10 不同提取工藝產(chǎn)品指紋圖譜S值

        以往大量的文獻都以山楂葉提取物中總黃酮為考察指標,對提取分離工藝進行優(yōu)化,但忽視了對牡荊素鼠李糖苷的評價和考察,所得提取物難以符合藥用標準。而牡荊素鼠李糖苷是山楂葉總黃酮中重要的黃酮單體成分,是山楂葉提取物治療心血管疾病重要的成分,也是評價山楂葉提取物藥理作用、臨床藥效和質(zhì)量的重要指標。按照《中華人民共和國藥典》2015 年版中規(guī)定的山楂葉提取物制備方法,得到合格的山楂葉提取物的成功率非常低,本研究通過對提取因素、樹脂種類、洗脫參數(shù)的考察,制備滿足要求的山楂葉提取物,并將試驗結(jié)果與藥典工藝進行對比。通過試驗探索,對影響山楂葉總黃酮分離純化的五個因素進行研究,并使用正交設(shè)計方法合理設(shè)計實驗方案。依據(jù)不同樹脂的分離純化效果、出膏率和提取物有效成分含量分析。最終確定提取工藝參數(shù)為:選取LX158 型號樹脂,上樣液濃度為 8.3-9 mg·mL-1,吸附流速0.8-1.0 BV/h,先用3 BV 純凈水洗脫除雜,再用3 BV10%乙醇洗脫除雜,6 BV 30%乙醇解析,得到含有大量牡荊素鼠李糖苷的山楂葉提取物。且優(yōu)化后工藝制備山楂葉提取物達標率較藥典工藝提高了20%以上。對兩工藝所得產(chǎn)品指紋圖譜法進行一致性評價,證明優(yōu)化工藝與藥典工藝所制備提取物無顯著差別,并通過中試放大驗證,證明該工藝穩(wěn)定可行,為工業(yè)化生產(chǎn)提供實驗基礎(chǔ)。

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        轉(zhuǎn)爐高效復(fù)合吹煉工藝的開發(fā)與應(yīng)用
        山東冶金(2019年6期)2020-01-06 07:45:54
        5-氯-1-茚酮合成工藝改進
        一測多評法同時測定腦心清片中6種黃酮
        中成藥(2018年11期)2018-11-24 02:57:00
        HPLC法同時測定固本補腎口服液中3種黃酮
        中成藥(2017年8期)2017-11-22 03:19:40
        MIPs-HPLC法同時測定覆盆子中4種黃酮
        中成藥(2017年10期)2017-11-16 00:50:13
        DAD-HPLC法同時測定龍須藤總黃酮中5種多甲氧基黃酮
        中成藥(2017年4期)2017-05-17 06:09:50
        一段鋅氧壓浸出與焙燒浸出工藝的比較
        FINEX工藝與高爐工藝的比較
        新疆鋼鐵(2015年3期)2015-11-08 01:59:52
        瓜馥木中一種黃酮的NMR表征
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