張 靖
上海交通大學(xué)附屬第六人民醫(yī)院消化科,上海 200233
胃癌是常見的惡性腫瘤之一,盡管全球胃癌的發(fā)生率和死亡率呈下降趨勢(shì)[1],但在我國(guó)胃癌仍位居惡性腫瘤死因的第3 位[2]。傳統(tǒng)中醫(yī)藥在抗腫瘤轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)、改善患者生活質(zhì)量等方面也具有一定的作用。川楝素(toosendanin,TSN)是川楝樹根皮及川楝子的有效提取物,具有多種生物學(xué)效應(yīng),包括抗腫瘤作用,抑制多種腫瘤細(xì)胞增殖和誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡[3-5]。我們前期研究[3-4]發(fā)現(xiàn),TSN 可以通過阻斷蛋白激酶B(protein kinase B,PKB 或AKT)/ 糖原合成酶激酶3β(glycogen synthase kinase 3β,GSK-3β)信號(hào)通路抑制胃腸腫瘤細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)其凋亡,增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞化學(xué)治療(化療)敏感性。
環(huán)狀RNA(circular RNA,circRNA)是一種共價(jià)閉合環(huán)狀結(jié)構(gòu)的非編碼RNA,廣泛存在于各種生物細(xì)胞中,它是由前體線性RNA 反向剪接產(chǎn)生,具有結(jié)構(gòu)穩(wěn)定、序列保守和組織特異性等特征[6]。circRNA 與胃癌密切相關(guān):circ_0047905、circ_0138960 和circ_7690-15 在胃癌組織中高表達(dá),促進(jìn)胃癌細(xì)胞的增殖和侵襲能力[7];circ_100269通過靶向miR-630 抑制胃癌增殖[8];circDONSON 通過核小體重構(gòu)因子(nucleosome remodeling factor,NURF)復(fù)合物依賴的SOX4(SRY-related HMG box transcription factor 4)激活促進(jìn)胃癌生長(zhǎng)和侵襲[9];circLARP4 通過吸附miR-424-5p 激活大腫瘤抑制激酶1(large tumor suppressor kinase 1,LATS1) 抑 制 胃 癌 侵 襲 作 用[10];circDLST 通 過 吸 附miR-502-5p 和 激 活NRAS(NRAS proto-oncogene,GTPase)/MEK1(mitogen-activated protein kinase kinase 1)/ERK1/2(mitogen-activated protein kinase 1/2)信號(hào)促進(jìn)胃癌生長(zhǎng)和侵襲[11]。我們利用TSN處理組和對(duì)照組篩選差異表達(dá)的circRNA,發(fā)現(xiàn)TSN 明顯調(diào)控circDLST。本研究旨在通過觀察TSN 對(duì)circDLST表達(dá)及胃癌生長(zhǎng)的影響,為胃癌治療提供潛在的策略。
1.1.1 主要試劑和儀器 TSN(純度≥99%)購自上海源業(yè)生物科技有限公司,噻唑藍(lán)(MTT)購自江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司(南京),TRIzol 試劑購自美國(guó)Invitrogen 公司,circDLST 過表達(dá)及其空載對(duì)照慢病毒載體購自上海吉?jiǎng)P生物科技有限公司,反轉(zhuǎn)錄試劑盒和SYBR Green Master Mixture 購 自 日 本TaKaRa 公 司,Transwell 試劑盒購自美國(guó)BD 公司。實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀購自美國(guó)Kray Technologies 公司,酶標(biāo)分析儀(型號(hào)BS-1101)購自美國(guó)Bio-Rad 公司。
1.1.2 胃癌細(xì)胞系 人胃癌細(xì)胞系BGC-823 購自上海中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞庫。
1.1.3 實(shí) 驗(yàn) 動(dòng) 物 雄 性BALB/c 裸 鼠(4 ~5 周 齡,18 ~20 g)購自中國(guó)科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物責(zé)任有限公司,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(滬)2017-0005。裸鼠飼養(yǎng)于上海市第六人民醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室,SPF 級(jí)飼養(yǎng),帶有密封空氣過濾裝置的塑料籠,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用許可證號(hào)為SYXK(滬)2016-0020。
1.2.1 定量PCR 用不同濃度TSN(0、0.5、1.0 和2.0 μmol/L) 處理胃癌細(xì)胞BGC-823 24 h 后,TRIzol 提取總RNA,并通過M-MLV 反轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA,使用SYBR Green Master Mixture 試劑盒進(jìn)行cDNA 擴(kuò)增。circDLST 上、下游引物序列分別為5'-TACAGTCAAAACCCCAGCGT-3'和5'-GTTGTTAATGCTTTCTCCCACC-3'。 以 人β 肌 動(dòng)蛋白(β-actin)為內(nèi)參對(duì)照,上、下游引物序列分別為5'- GTGGCCGAGGACTTTGATTG-3'和5'-CCTGTAAC AACGCATCTCATATT-3'。每個(gè)樣品重復(fù)3 次。
1.2.2 MTT 增殖實(shí)驗(yàn) 將circDLST 過表達(dá)及其空載對(duì)照(CON)慢病毒載體轉(zhuǎn)染胃癌細(xì)胞BGC-823,具體轉(zhuǎn)染方法參考文獻(xiàn)[11]。細(xì)胞在96 孔培養(yǎng)板中培養(yǎng),密度為5×103/孔。細(xì)胞貼壁48 h 后,以0.5 μmol/L TSN 處理細(xì)胞。每隔24 h 分析細(xì)胞增殖活性,加入20 μL MTT(5 mg/mL)孵育4 h 后,加入150 μL 二甲基亞砜溶解5 min,使用酶標(biāo)分析儀在570 nm 處檢測(cè)吸光度值。實(shí)驗(yàn)分為circDLST+TSN組、CON+TSN 組和CON+PBS 組,重復(fù)3 次。
1.2.3 Transwell 侵襲實(shí)驗(yàn) 將circDLST 過表達(dá)及其空載對(duì)照慢病毒載體轉(zhuǎn)染胃癌細(xì)胞BGC-823,細(xì)胞貼壁48 h后,以0.5 μmol/L TSN 處理細(xì)胞24 h。使細(xì)胞懸浮在無血清培養(yǎng)基中饑餓24 h 后,將懸浮細(xì)胞添加到含有基質(zhì)凝膠(3.9 μg/μL)的上層小室;而下層小室含有10%胎牛血清的RPMI-1640 培養(yǎng)基。最后穿過凝膠的細(xì)胞用75%乙醇固定,并用結(jié)晶紫進(jìn)行染色。光學(xué)顯微鏡下對(duì)每組挑選3 個(gè)視野進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),實(shí)驗(yàn)分為circDLST+TSN 組、CON+TSN 組和CON+PBS 組,重復(fù)3 次。
1.2.4 裸鼠皮下移植瘤模型建立 將circDLST 過表達(dá)及其空載對(duì)照慢病毒載體轉(zhuǎn)染胃癌細(xì)胞BGC-823 后,皮下注射接種(1×107/只),建立裸鼠皮下移植瘤動(dòng)物模型。12 d 后,將模型裸鼠隨機(jī)分為3 組:circDLST+TSN 組(n=6),circDLST 轉(zhuǎn)染的胃癌細(xì)胞BGC-823 建立裸鼠皮下移植瘤后,每日腹腔注射200 μg/kg TSN[3];CON+TSN組(n=6),CON 轉(zhuǎn)染的胃癌細(xì)胞BGC-823 建立裸鼠皮下移植瘤后,每日腹腔注射200 μg/kg TSN;CON+PBS 組(n=6),CON 轉(zhuǎn)染的胃癌細(xì)胞BGC-823 建立裸鼠皮下移植瘤后,每日腹腔注射等量的PBS。每隔1 日用游標(biāo)卡尺測(cè)量裸鼠皮下腫瘤的長(zhǎng)徑(a)和短徑(b),計(jì)算腫瘤體積V=1/2ab2。注射32 d 后處死各組裸鼠。動(dòng)物研究獲得上海交通大學(xué)附屬第六人民醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室的倫理許可。
利用不同濃度TSN(0、0.5、1.0 和2.0 μmol/L)處理胃癌細(xì)胞24 h 后,定量PCR 結(jié)果(圖1)顯示,與對(duì)照組(0 μmol/L)比較,TSN 明顯下調(diào)circDLST 的表達(dá)水平,且呈濃度依賴性(均P<0.01)。
之前的研究[11]已報(bào)道circDLST 過表達(dá)載體在BGC-823 胃癌細(xì)胞具有高的轉(zhuǎn)染效率。circDLST 過表達(dá)載體或空載體轉(zhuǎn)染胃癌細(xì)胞后,以0.5 μmol/L TSN 處理。MTT增殖實(shí)驗(yàn)結(jié)果(圖2)顯示,與CON+PBS 組比較,TSN作用72 h 后可顯著抑制胃癌細(xì)胞增殖活性(均P=0.000);而與CON+TSN 組比較,過表達(dá)circDLST 可逆轉(zhuǎn)TSN 抗胃癌細(xì)胞增殖活性的作用(P=0.000)。
圖2 circDLST 對(duì)TSN 抗胃癌細(xì)胞增殖活性的逆轉(zhuǎn)效果Fig 2 Reverse effect of circDLST on the anti-proliferation activity of TSN in gastric cancer cells
Transwell 侵襲實(shí)驗(yàn)(圖3)顯示,與CON+PBS 組比較,TSN 可顯著抑制胃癌細(xì)胞的侵襲能力(P=0.000);而與CON+TSN 組比較,過表達(dá)circDLST 可逆轉(zhuǎn)TSN 抗胃癌細(xì)胞侵襲能力的作用(P=0.000)。
圖3 circDLST 對(duì)TSN 抗胃癌細(xì)胞侵襲能力的逆轉(zhuǎn)效果Fig 3 Reverse effect of circDLST on the anti-invasion potential of TSN in gastric cancer cells
circDLST 過表達(dá)載體或空載體轉(zhuǎn)染BGC-823 細(xì)胞后皮下注射裸鼠,然后每日腹腔注射TSN 或PBS。結(jié)果(圖4)顯示,注射32 d 后,與CON+PBS 組比較,TSN可顯著抑制胃癌細(xì)胞皮下移植瘤的生長(zhǎng)(P=0.000);而與CON+TSN 組比較,過表達(dá)circDLST 可逆轉(zhuǎn)TSN 抗胃癌皮下移植瘤生長(zhǎng)的作用(P=0.020)。
圖4 circDLST 對(duì)TSN 抗胃癌皮下移植瘤生長(zhǎng)的逆轉(zhuǎn)效果Fig 4 Reverse effect of circDLST on the anti-xenograft tumor growth of TSN in gastric cancer cells
腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移是導(dǎo)致胃癌患者不良預(yù)后的主要原因之一。最近研究[12]顯示,circRNA 異常表達(dá)與胃癌生存、轉(zhuǎn)移及不良預(yù)后密切相關(guān)。circRNA 主要包括外顯子circRNA、外顯子內(nèi)含子circRNA(exon-intron circRNA,EIciRNA)和內(nèi)含子circRNA,其中外顯子circRNA 占絕大多數(shù)。circRNA 的環(huán)狀結(jié)構(gòu)賦予了它們獨(dú)特的生物學(xué)特性,如穩(wěn)定性較強(qiáng)。circRNA 還能與miRNA 及蛋白質(zhì)競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合,參與蛋白質(zhì)編碼和轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)[13]。研究[10-13]發(fā)現(xiàn),circ-102958、circ-0000520、circ-0001017 可能對(duì)早期胃癌具有潛在的診斷價(jià)值;circLARP4、circPSMC3、circDLST的異常表達(dá)與胃癌的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。我們前期研究[11]亦發(fā)現(xiàn),circDLST 作為外顯子circRNA 主要定位在胃癌細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì),其異常上調(diào)可促進(jìn)胃癌細(xì)胞的侵襲轉(zhuǎn)移,并與患者的不良預(yù)后相關(guān),提示其可能成為判斷胃癌患者預(yù)后的潛在標(biāo)志物。
本研究發(fā)現(xiàn),不同濃度TSN 對(duì)胃癌細(xì)胞中circDLST表達(dá)具有抑制作用;同時(shí)TSN 可抑制胃癌細(xì)胞增殖活性、侵襲潛能和皮下移植瘤生長(zhǎng),而過表達(dá)circDLST 對(duì)TSN 的抗腫瘤效果具有逆轉(zhuǎn)作用。因此,提示TSN 可能通過下調(diào)circDLST 抑制胃癌細(xì)胞增殖和侵襲;但是TSN對(duì)circDLST 下游的miRNA 及信號(hào)通路的調(diào)節(jié)作用仍有待進(jìn)一步的探究,以期為其抗胃癌作用提供更多的實(shí)驗(yàn) 依據(jù)。
參·考·文·獻(xiàn)
[1] Bray F, Ferlay J, Soerjomataram I, et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2018, 68(6): 394-424.
[2] Chen WQ, Zheng RS, Zhang SW, et al. Cancer incidence and mortality in China, 2013[J]. Cancer Lett, 2017, 401: 63-71.
[3] Wang G, Feng CC, Chu SJ, et al. Toosendanin inhibits growth and induces apoptosis in colorectal cancer cells through suppression of AKT/GSK-3β/β-catenin pathway[J]. Int J Oncol, 2015, 47(5): 1767-1774.
[4] Wang G, Huang YX, Zhang R, et al. Toosendanin suppresses oncogenic phenotypes of human gastric carcinoma SGC-7901 cells partlyviamiR-200a-mediated downregulation of β-catenin pathway[J]. Int J Oncol, 2017, 51(5): 1563-1573.
[5] Ju JM, Qi ZC, Cai XT, et al. Toosendanin induces apoptosis through suppression of JNK signaling pathway in HL-60 cells[J]. Toxicol In Vitro, 2013, 27(1): 232-238.
[6] Jeck WR, Sorrentino JA, Wang K, et al. Circular RNAs are abundant, conserved, and associated with ALU repeats[J]. RNA, 2013, 19(2): 141-157.
[7] Lai ZY, Yang Y, Yan YC, et al. Analysis of co-expression networks for circular RNAs and mRNAs reveals that circular RNAs hsa_circ_0047905, hsa_circ_0138960 and has-circRNA7690-15 are candidate oncogenes in gastric cancer[J]. Cell Cycle, 2017, 16(23): 2301-2311.
[8] Zhang Y, Liu H, Li WD, et al. CircRNA_100269 is downregulated in gastric cancer and suppresses tumor cell growth by targeting miR-630[J]. Aging (Albany NY), 2017, 9(6): 1585-1594.
[9] Ding LX, Zhao YY, Dang SW, et al. Circular RNA circ-DONSON facilitates gastric cancer growth and invasionviaNURF complex dependent activation of transcription factor SOX4[J]. Mol Cancer, 2019, 18(1): 45.
[10] Zhang J, Liu H, Hou LD, et al. Circular RNA_LARP4 inhibits cell proliferation and invasion of gastric cancer by sponging miR-424-5p and regulating LATS1 expression[J]. Mol Cancer, 2017, 16(1): 151.
[11] Zhang J, Hou LD, Liang R, et al. CircDLST promotes the tumorigenesis and metastasis of gastric cancer by sponging miR-502-5p and activating the NRAS/MEK1/ERK1/2 signaling[J]. Mol Cancer, 2019, 18(1): 80.
[12] Wang S, Tang D, Wang W, et al. CircLMTK2 acts as a sponge of miR-150-5p and promotes proliferation and metastasis in gastric cancer[J]. Mol Cancer, 2019, 18(1): 162.
[13] Ruan Y, Li Z, Shen YJ, et al. Functions of circular RNAs and their potential applications in gastric cancer[J]. Expert Rev Gastroenterol Hepatol, 2020, 14(2): 85-92.