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        海帶愈傷組織高效誘導體系的研究

        2020-09-24 07:59:44劉延嶺李言姜黎明田萍萍彭捷李曉捷
        水產(chǎn)養(yǎng)殖 2020年9期
        關(guān)鍵詞:葉肉海帶外植體

        劉延嶺,李言,姜黎明,田萍萍,彭捷,李曉捷

        (山東東方海洋科技股份有限公司,國家海藻與海參工程技術(shù)研究中心,山東省海藻遺傳育種與栽培技術(shù)重點實驗室,山東 煙臺 264003)

        海帶自然分布在高緯度海區(qū),如日本、朝鮮半島、俄羅斯遠東地區(qū)沿海[1],是一種冷溫性的大型經(jīng)濟褐藻。多附生在海底巖礁上,是人工栽培生產(chǎn)最多的海藻之一,產(chǎn)量及栽培面積在我國所有藻類中均為第一[2]。根據(jù)細胞核、葉綠體和線粒體序列的多基因分析結(jié)果,其分類系統(tǒng)隸屬于褐藻門(Phaeophyta),褐子綱(Phaeosporeae),海帶目(Laminariales),海帶科(Laminariaceae),Saccharina 屬[3]。海帶具有典型的世代交替生活史,大型孢子體世代為二倍體世代,是人工栽培和加工生產(chǎn)的主要對象;配子體世代為單倍體世代,是人工培育苗種的對象。海帶孢子體由葉片、柄和固著器三個部分組成。藻體的葉片基部和柄連接地方是生長部,生長部的細胞分裂機能最強。

        海藻組織培養(yǎng)從20世紀60年代開始研究,70年代有了海藻組織培養(yǎng)成功的報道[4-5],80年代以后進展較迅速[6]。海帶的愈傷組織給予合適條件,能夠重新分化并發(fā)育成正常孢子體;同時可以長期保存,通過懸浮培養(yǎng)而迅速增殖,進行無性繁殖育苗。1978年Saga[7]開始研究海帶愈傷組織培養(yǎng),從獲得的愈傷組織中分離單個細胞并成功誘導分化形成孢子體,證明了褐藻愈傷組織與高等植物的愈傷組織一樣具有全能性[8]。方宗熙等[9]通過對海帶與裙帶菜不同組織比較,發(fā)現(xiàn)葉片生長部和中帶部誘導愈傷組織和再分化率最高,柄部次之,假根部最低,柄和假根愈傷組織很難再分化成孢子體。

        海藻組織培養(yǎng)在紫菜中發(fā)展較成熟[10-11],而在以海帶為代表的我國主要大型經(jīng)濟褐藻中的研究還不夠深入,該研究通過對海帶愈傷組織誘導過程中不同消毒劑及其時間組合、不同誘導培養(yǎng)基及生長素組合、不同接種外植體部位誘導差異等因素的比較研究,建立了一套海帶愈傷組織高效誘導體系,以期為海帶細胞工程育種研究提供一種有效的方法。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        5月,從海區(qū)隨機選取生長狀況良好的新鮮海帶,在實驗室中用剪刀在生長部剪取大小合適的海帶塊,用無菌脫脂棉和無菌海水擦拭15~20 min至表面干凈無粘液,放到滅菌培養(yǎng)皿中備用。

        1.2 培養(yǎng)基和試劑

        利用煮沸海水分別配置:MS液體培養(yǎng)基[12];PESI液體培養(yǎng)基[13];ESS液體培養(yǎng)基[14],高壓滅菌備用。

        利用煮沸海水分別配置:1.5%質(zhì)量濃度的KI;4%體積濃度NaClO;10%體積濃度H2O2;含有60 mg/L青霉素及100 mg/L環(huán)丙沙星的雙抗溶液,用一次性針頭濾器抽濾除菌備用。

        先用1 mol/L的NaOH溶液溶解,再用滅菌一蒸水分別配置:2.0 mg/L的NAA;0.1 mg/L的KT,用一次性針頭濾器抽濾除菌備用。

        1.3 外植體的消毒

        分別使用 1.5%KI、雙抗、4%NaClO、10%H2O2四種消毒劑,消毒時間分別為5 min,10 min以及1.5%KI、雙抗消毒劑組合進行外植體消毒處理。消毒結(jié)束的海帶組織,用無菌海水浸泡2次,每次5 min,得到的無菌海帶組織放到干凈的培養(yǎng)皿中備用。

        1.4 不同外植體的選擇

        用無菌手術(shù)刀將無菌海帶組織塊的邊緣切掉,將剩余的組織塊切割成5 mm×5 mm大小的塊,將一半的組織塊放到干凈的培養(yǎng)皿中備用,將另一半的組織塊兩面的表皮切割掉,表皮盡量薄,少帶葉肉,將表皮和葉肉單獨存放到無菌的培養(yǎng)皿中,然后整塊組織、表皮組織、葉肉組織分別接種到PESI液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)。培養(yǎng)條件15℃,10 h光照/14 h黑暗,培養(yǎng)觀察結(jié)果。

        1.5 不同培養(yǎng)基的選擇

        用無菌手術(shù)刀將無菌海帶組織塊的邊緣切掉,將剩余的組織塊切割成5 mm×5 mm大小的塊,接種到MS、PESI、ESS的培養(yǎng)基上,每周更換一次培養(yǎng)基,培養(yǎng)條件15℃,10 h光照/14 h黑暗,定期觀察生長狀態(tài)。

        1.6 不同激素組合

        用海帶表皮組織,表皮盡量薄,少帶葉肉,然后分別接種到培養(yǎng)基中培養(yǎng);誘導培養(yǎng)基分別為不添加激素、添加NAA激素、添加KT激素,添加NAA+KT激素的PESI液體培養(yǎng)基;培養(yǎng)條件15℃、10 h光照/14 h黑暗,培養(yǎng)觀察結(jié)果。

        1.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計

        愈傷組織的誘導率、污染率按下列公式計算:

        誘導率=誘導數(shù)/未污染數(shù)×100%;

        污染率=(接種數(shù)-未污染數(shù))/接種數(shù)×100%。

        2 結(jié)果

        2.1 不同消毒方式的除菌效果

        選用了10種消毒方法對外植體進行除菌處理,培養(yǎng)基30 d觀察統(tǒng)計結(jié)果見表1;由數(shù)據(jù)可知,1.5%KI+雙抗各處理10 min的效果最佳,污染率僅為10%;其次是4%NaClO處理10 min,污染率為13%;第三位是10%H2O2處理10 min,污染率為20%;4%NaClO和10% H2O2對接種材料的傷害較大,組織培養(yǎng)一周觀察有腐爛現(xiàn)象,不利于后續(xù)的愈傷誘導。

        表1 不同消毒方式的除菌效果統(tǒng)計

        2.2 不同接種外植體部位對海帶愈傷組織誘導的影響

        選擇了3個外植體部位進行愈傷組織的誘導,分別為整塊組織、表皮組織、葉肉組織,經(jīng)過60 d的誘導培養(yǎng),誘導率結(jié)果見表2;由表中數(shù)據(jù)可以看出:表皮組織的愈傷誘導率最高,誘導率為88%;其次為整塊組織,誘導率為68%;葉肉組織低,誘導率為50%;整塊海帶組織和表皮組織誘導出了褐色愈傷組織,見圖1。

        表2 不同接種外殖體對海帶愈傷組織誘導的影響

        2.3 不同培養(yǎng)基對海帶愈傷組織誘導的影響

        選擇了MS、PESI、ESS三種液體培養(yǎng)基進行海帶愈傷組織誘導,經(jīng)過60 d的培養(yǎng),誘導情況見表3。由誘導率看出:PESI液體培養(yǎng)基誘導效果最好,誘導率為85%;其次為ESS培養(yǎng)基,誘導率為65%;MS培養(yǎng)基誘導率最低,僅為20%。

        表3 不同培養(yǎng)基對海帶愈傷組織誘導的影響

        2.4 不同激素種類對海帶愈傷組織誘導的影響

        以表皮組織為接種外植體,誘導培養(yǎng)基分別為不添加激素、添加NAA激素、添加KT激素,添加NAA+KT激素的PESI液體培養(yǎng)基進行愈傷誘導,結(jié)果見表4。由結(jié)果看出:添加NAA的PESI液體培養(yǎng)基誘導率為85%;添加NAA+KT激素的PESI液體培養(yǎng)基誘導率為83%;添加KT激素和不添加激素的PESI液體培養(yǎng)基誘導率均為80%;KT激素對海帶愈傷組織沒有明顯誘導作用,NAA激素和KT激素這兩種激素在海帶愈傷組織誘導過程中所起的協(xié)同作用不明顯。

        表4 不同激素種類對海帶愈傷組織誘導的影響

        3 討論

        海藻組織的無菌處理方式一直不成熟,一方面是由于藻體表面附有大量微生物,其藻體內(nèi)部也存在一些共生菌,很難做到無菌[15];另一方面藻體纖弱,高等植物的無菌處理方法不適用。王素娟等[16]在對海藻組織進行消毒試驗時也指出,可根據(jù)試驗需求選擇不同的消毒試劑。KI和NaClO處理后的海帶染菌率為58.7%,但NaClO氧化性很強,組織塊損傷嚴重,與該文試驗結(jié)果基本一致,一般不采用NaClO消毒藻體。該試驗選用了KI和雙抗組合,能達到較好的消毒處理效果。

        該試驗分別選用了MS、PESI、ESS三種液體培養(yǎng)基對海帶組織進行愈傷組織的誘導試驗。由試驗結(jié)果可知,PESI液體培養(yǎng)基對海帶愈傷組織的誘導率最高。1992年Notoya[17]研究了用海水PESI培養(yǎng)基加入干酪素來誘導海帶愈傷組織的機制。王希華等[18]發(fā)現(xiàn)PESI固體培養(yǎng)基誘導海帶愈傷組織效果較好,誘導率可達75.5%。該試驗發(fā)現(xiàn)添加NAA激素的PESI液體培養(yǎng)基更有助力于海帶愈傷組織的誘導,誘導率高達85%。

        該試驗選擇接種的外植體部位是消毒處理后的海帶表皮組織、葉肉組織和整塊海帶組織,分別培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)組織培養(yǎng)初期均出現(xiàn)透明愈傷組織,培養(yǎng)一段時間后,海帶表皮組織的透明愈傷組織逐漸長出褐色愈傷組織;整塊海帶組織也逐漸長出褐色愈傷組織;而葉肉組織只培養(yǎng)出透明的絲狀愈傷組織。觀察發(fā)現(xiàn)透明愈傷組織可能是由海帶的葉肉細胞產(chǎn)生的,而褐色愈傷組織可能是由海帶的表皮細胞產(chǎn)生的。Yan等[19]曾報道海帶的分化程度低,易誘導產(chǎn)生愈傷組織,并在皮層和髓部形成愈傷組織。

        關(guān)于激素對海帶愈傷組織誘導的影響,Saga等[7]指出 IAA、NAA、2’4-D 等激素對網(wǎng)管藻愈傷組織的誘導沒有作用;Yan指出C-751植物合成激素有促進海藻愈傷組織誘導的作用;該試驗發(fā)現(xiàn)NAA激素對海帶愈傷組織的形成有一定的促進作用。

        該試驗結(jié)果表明,以海帶生長部的表皮組織作為誘導材料,KI和雙抗組合進行消毒,并利用添加激素NAA的PESI液體培養(yǎng)基進行愈傷組織的誘導,取得的誘導效果最好,誘導率高達85%。此誘導體系高效、易操作、結(jié)果穩(wěn)定。該誘導體系的建立為后續(xù)進行海帶分化育苗等方面的研究提供了試驗基礎(chǔ);如果能夠利用海帶組織誘導培養(yǎng)出的愈傷組織進一步培養(yǎng)分化成苗技術(shù)而直接進行海帶的苗種培育,將大大縮短海帶育苗期,降低生產(chǎn)成本,這將為海帶育種提供一種新的途徑,具有較高的社會價值和經(jīng)濟價值。

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