時桂芹,沈佳鑫,任 菲,韓亞偉
鄭州輕工業(yè)大學,鄭州市金水區(qū)東風路5 號 450002
卷煙煙氣化學成分非常復雜,其中含有一些對吸煙者有潛在風險的有害成分,例如煙草特有亞硝胺(TSNAs),在此類化合物中,4-(甲基亞硝氨基)-1-(3-吡啶基)-1-丁酮(NNK)的含量較高,致癌性較強,已被國際癌癥研究機構(International Agency for Research on Cancer,IARC)列為一類致癌物[1-5]。據(jù)報道,氧化損傷在NNK 誘導腫瘤發(fā)生過程中扮演著重要角色,而抗氧化蛋白Prx(Peroxiredoxin)最重要的功能是通過調(diào)節(jié)活性氧(Reactive oxygen species,ROS)水平使機體免受氧化損傷,在腫瘤中表達異常的一些Prx 蛋白可能成為某些腫瘤的標志物[6]。因此,研究NNK 等環(huán)境致癌物對Prx基因表達的影響具有重要意義。
在小鼠體內(nèi)NNK 可通過α-亞甲基羥基化反應與DNA 結(jié)合生成DNA 加合物,進而使機體發(fā)生癌變[7]。李琛等[8]研究表明,NNK 致癌的小鼠肺、肝臟等器官組織中形成了DNA 甲基化產(chǎn)物O6-甲基鳥嘌呤(O6-mG)。有報道表明,許多疾病及癌癥的發(fā)生都與機體的免疫系統(tǒng)損傷有關[9]。在哺乳動物中Prx家族蛋白含有Prx1~Prx6等6種蛋白[10],是一類在機體內(nèi)廣泛存在的抗氧化酶,其能有效清除細胞內(nèi)的ROS,從而使細胞內(nèi)的ROS 水平保持平衡[11]。Prx 家族蛋白對調(diào)節(jié)細胞增殖、凋亡和免疫反應、抗腫瘤等具有重要影響[12]。自由基導致的氧化應激和損傷與腫瘤的發(fā)生有關,而Prx 蛋白最為顯著的功能是清除過氧化物,同時氧化應激可以誘導Prx 的表達,這表明Prx 與ROS 的生成相關[13]。通常,在各種氧化應激條件下,Prx 與氧化應激的衰減和細胞存活的增加有關,Prx 基因也被認為是細胞內(nèi)H2O2的受體,而H2O2具有重要的第二信使功能,因此,Prx 基因在多種生理和病理過程中發(fā)揮著重要作用[14]。近年來,Prx 在腫瘤預防中的作用已被證實,但也有報道稱Prx 可能與促進癌癥的發(fā)生有關,因此,Prx 基因在腫瘤發(fā)生中的確切作用仍有爭議。有研究表明,卷煙煙氣、NNK和砷酸鹽等可以通過激活蛋白激酶C、絲裂原活化 蛋 白 激 酶(Mitogen activated protein kinase,MAPK)和p38 MAPK 途徑刺激2-Cys Prx 基因的表達[15]。目前,NNK 對Prx 基因體內(nèi)表達的誘導作用以及對腫瘤發(fā)生的影響尚不清楚。有關NNK誘導的癌癥與機體免疫系統(tǒng)損傷,以及Prx 基因差異表達的研究較少[16]。因此,通過對小鼠進行NNK 腹腔注射,綜合評價NNK 對小鼠的毒性和Prx 基因表達的影響,旨在為NNK 致癌性研究和腫瘤靶向治療提供參考。
SPF 健康清潔KM 雄性小鼠,6 周齡,體質(zhì)量33~37 g,由河南省實驗動物中心提供。環(huán)境適應期為7 d[溫度(22±2)℃,相對濕度40%~75%],自由飲水和攝食。觀察1 周后,選擇健康小鼠進行分組和NNK 染毒實驗。
NNK (>98% ,加 拿 大TRC 公 司);乙 醇(100%)、甲醛(>99%)、甲醇(99%)(青島玉洲化工有限公司);氯化鈉、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、二甲苯(>99%,上海源葉生物科技有限公司);生物切片石蠟(>99%,上海華靈康復器械廠);蘇木精染液、伊紅染液(>99%,北京中西遠大科技有限公司);中性樹膠(上海標本模型廠);Trizol 試劑和反轉(zhuǎn)錄試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司];實時熒光定量PCR 試劑盒[寶生物工程(大連)有限公司];其余均為市售分析純試劑。
Observer A1 倒置顯微鏡(德國Zeiss 公司);ERM3100 組織切片機及配套刀片(上海精密儀器儀表有限公司);Stepone Plus 熒光定量PCR(美國ABI 公司);5810/5810R 高速冷凍離心機(德國Eppendorf 公司);PL4002 電子天平[感量:0.1 mg,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司];Option-S7/15 純水機(英國ELGA 公司);GZX-DH-202-BS 電熱恒溫干燥箱(上海賀德實驗設備有限公司);LX-C35L 立式壓力蒸汽滅菌鍋(合肥華泰醫(yī)療設備有限公司);DW-86L386 超低溫冰箱(-80 ℃,青島海爾特種電器有限公司)。
1.2.1 實驗動物的分組染毒、觀察及數(shù)據(jù)統(tǒng)計
選擇健康雄性小鼠60 只,體質(zhì)量30~35 g。隨機分成A~D 4 組,每組15 只。具體為:A. 2.5 mg/kg NNK處理組,B. 5.0 mg/kg NNK處理組,C. 2.5 mg/kg生理鹽水對照組,D. 5.0 mg/kg 生理鹽水對照組。采用等體積腹腔注射(0.5 mL/只)給藥,NNK 處理組于初次腹腔注射給藥24 h 后進行等劑量再次給藥。每間隔24 h 腹腔注射1 次,直到注射24 周后斷頸處死小鼠。每隔2~3 d 給小鼠添加飼料,更換飲用水,并且清理更換鋸末墊料。小鼠從購買期到注射期之間的時間間隔為適應期,適應期為7天,在注射期及正常飼養(yǎng)期間,每天觀察小鼠一般形態(tài)(打斗行為、精神狀態(tài)、皮毛顏色和光澤以及分泌物等)。另外,每周統(tǒng)計1 次各組小鼠的平均進食量,每月稱量1 次小鼠的體質(zhì)量,每組10 只小鼠,計算平均值。
1.2.2 組織切片的制作與HE 染色
從各組隨機抓取3 只小鼠,斷頸處死后用鑷子小心取出肝臟、肺、腎臟、睪丸,將每種組織用生理鹽水清洗3~5 遍,用剪刀剪下約0.5 cm 尺寸的組織,置于10%中性緩沖福爾馬林溶液中進行固定,用于后期的組織切片制作,其余組織于-80 ℃冰箱中保持,用于總RNA的提取。將各種組織剪成約0.5 cm 厚度的小塊,用石蠟進行包埋,制成約4 μm的組織切片,用于HE 染色。取出各種組織器官,依次進行乙醇梯度脫水、石蠟包埋、常規(guī)切片、HE染色,最后將切片置于倒置顯微鏡下進行觀察[17]。
1.2.3 RNA 的提取及Prx 基因表達的熒光定量PCR 檢測
分別用Trizol 試劑提取處理組和對照組小鼠器官組織的RNA,按照操作說明得到白色沉淀,加入40 μL 0.01%焦碳酸二乙酯(DEPC),使RNA 完全溶解。采用紫外分光光度計法分別測定RNA在260 和280 nm 下的吸光度,并計算其比值。將各種組織的總RNA 用DEPC 調(diào)節(jié)至相同濃度,并進行逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。逆轉(zhuǎn)錄反應步驟為:
①取試劑盒中需要用的試劑,混勻后置于冰上保存。②按照反轉(zhuǎn)錄說明書中步驟進行操作,配制反應液(表1),并將其加入無菌、無RNase 的EP 管中,混勻后離心。③放入PCR 儀中,設定程序為:25 ℃,10 min;42 ℃,30 min;85 ℃,5 min,終止反應。將PCR 產(chǎn)物稀釋后于-20 ℃保存。實時熒光定量PCR 是以GAPDH 為內(nèi)參基因,基因引物序列見表2。④熒光定量PCR 反應條件。取20 μL 不同反應溶液(表3),混勻,離心,置于PCR 儀中進行反應。設置的程序為:a. 變性溫度95 ℃,時間30 s;b. 循環(huán)擴增40 次,變性溫度95 ℃、時間5 s,退 火 溫 度58~60 ℃、時 間30 s;延 伸 溫 度72 ℃、時間30 s;c. 延伸溫度72 ℃,時間5 min。
根據(jù)Ct 值計算內(nèi)參基因和處理組基因的△Ct,由△Ct對照組-△Ct處理組得到△△Ct,根據(jù)2-△△Ct得出處理組樣本基因相對于對照組樣本基因的表達量。
表1 逆轉(zhuǎn)錄反應體系Tab.1 Reverse transcription reaction system
表2 Prx 基因的引物序列Tab.2 Primers for Prx genes
表3 qRT-PCR 反應體系組成Tab.3 Composition of qRT-PCR reaction system
1.2.4 數(shù)據(jù)處理
應用SPSS 17.0 軟件對實驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學分析。實驗數(shù)據(jù)用均值±標準差表示,用單因素方差分析(ANOVA)進行組間比較,檢驗水準為α=0.05。
在本實驗中,由形態(tài)學分析可知,A 組(2.5 mg/kg NNK 處理組)小鼠的毛發(fā)粗糙散亂、光澤稍顯暗淡,行為表現(xiàn)焦慮,觸碰時有撕咬行為,但尿液和糞便無異常。B 組(5.0 mg/kg NNK 處理組)小鼠的行為表現(xiàn)同A 組,但與A 組相比,小鼠毛發(fā)更加粗糙散亂、無光澤,在觸碰時更顯焦慮,而尿液和糞便無異常。C 組(2.5 mg/kg 生理鹽水對照組)小鼠尾巴表明有打斗痕跡,其他均無異常。D組(5.0 mg/kg 生理鹽水對照組)小鼠與C 組小鼠相同??傮w上,對小鼠進行腹腔注射NNK,會使小鼠侵略性、好斗性增強,并使其毛發(fā)變得粗糙。
小鼠月均進食量(圖1)顯示,4 組小鼠月平均進食量均先上升后降低,這可能是由于前兩個月小鼠處于快速生長時期,因此進食量較大。在注射NNK 第1 個月至第5 個月,處理組小鼠進食量明顯比對照組大。這可能是由于處理組小鼠代謝NNK 需要消耗較多能量,因此進食量比對照組大。從注射NNK 第5 個月開始,B 組小鼠進食量超過其他3 個組,可能的原因是經(jīng)過4 個月的NNK腹腔注射,小鼠已適應NNK 處理,但B 組小鼠需要代謝更多的NNK,機體消耗能量多,因而進食量較大。
小鼠月均體質(zhì)量(圖2)顯示,小鼠在適應期平均體質(zhì)量約34 g。在注射NNK 和生理鹽水期間,處理組小鼠的體質(zhì)量先增加后降低。但對照組小鼠體質(zhì)量一直處于增加趨勢。盡管4 組小鼠進食量差異不大,但是隨著NNK 注射時間的延長,處理組小鼠的體質(zhì)量有所降低,對于5.0 mg/kg NNK處理組,變化更加明顯。
圖1 小鼠月均進食量Fig.1 Monthly average food intake of mice
圖2 小鼠月均體質(zhì)量Fig.2 Monthly average body weight of mice
小鼠肺組織切片見圖3。圖3A 是2.5 mg/kg NNK 處理組小鼠肺組織細支氣管,可以看出,肺泡隔出現(xiàn)增生、膨大,HE 著色較深并伴有溶血,有炎癥細胞的浸潤反應,結(jié)締組織存在被破壞現(xiàn)象,黏膜上皮有脫落,黏膜下層平滑肌斷裂,部分黏膜已無法識別。而對照組小鼠肺泡隔色澤健康完整,氣道壁結(jié)構完好,平滑肌連續(xù)(圖3C)。與對照組小鼠(圖3D)相比,5.0 mg/kg 的NNK 處理組小鼠(圖3B)肺泡隔出現(xiàn)輕微增生,著色略深,部分肺泡囊被破壞,但沒有A 組嚴重,肺泡隔同樣有增生,且伴有炎癥反應。
圖3 小鼠肺組織的HE 染色效果圖(400 倍)Fig.3 HE staining images of mouse lung tissues(400 times)
小鼠肝組織切片見圖4。圖4A 是2.5 mg/kg NNK 處理組小鼠肝小葉組織,與對照組小鼠(圖4C)相比,中央靜脈組織完整、清晰可見,內(nèi)部有少量血紅細胞;肝索清晰,肝血竇數(shù)量較多,并且比較大,肝血竇中間有少量顆粒物;枯否細胞伸出偽足附著于內(nèi)皮細胞表面,肝細胞與其細胞核明顯增大。與對照組小鼠(圖4D)相比,5.0 mg/kg NNK 處理組小鼠(圖4B)肝小葉中央貫穿中央靜脈,肝細胞向四周呈放射狀排列,形成肝索;肝板之間的空隙內(nèi)有若干肝血竇,中間夾雜一些巨噬細胞。
圖4 小鼠肝組織的HE 染色效果圖(200 倍)Fig.4 HE staining images of mouse liver tissues(200 times)
小鼠腎組織切片見圖5。圖5A 是2.5 mg/kg NNK 處理組小鼠腎臟組織腎皮質(zhì),與對照組小鼠(圖5C)相比,腎小球出現(xiàn)萎縮、變形,腎小囊腔變窄;腎小球內(nèi)的足細胞分布松散不緊密,部分腎小管管壁變薄,集合管代償性變粗增生,內(nèi)部出現(xiàn)些許纖維化變性。與對照組小鼠(圖5D)相比,5.0 mg/kg NNK 處理組小鼠(圖5B)腎小球出現(xiàn)嚴重變性、萎縮,腎小囊壁層損傷嚴重,腎小體破裂,細胞間質(zhì)分布不均勻,近端小管、遠端小管難以辨認,部分管腔明顯變窄,部分間質(zhì)組織增厚、肥大。
圖5 小鼠腎組織的HE 染色效果圖(400 倍)Fig.5 HE staining images of mouse kidney tissues(400 times)
小鼠睪丸組織切片見圖6。圖6A 是2.5 mg/kg NNK 處理組小鼠睪丸組織,與對照組小鼠(圖6C)相比,生精小管外層生精上皮細胞排列較緊密,緊靠在一起;各級生精小管均有不同程度的萎縮,外壁變薄,甚至一些生精小管內(nèi)部出現(xiàn)空腔,沒有各級精細胞;有精細胞的生精小管出現(xiàn)精子變少的現(xiàn)象。與對照組小鼠(圖6D)相比,而5.0 mg/kg NNK 處理組小鼠(圖6B)部分生精小管緊密排列連接在一起,有些生精小管上皮細胞脫落,且厚度不一;靠近內(nèi)側(cè)的精母細胞與生精上皮細胞分離;組織結(jié)構疏松,內(nèi)側(cè)細胞排列不均勻。
圖6 小鼠睪丸組織的HE 染色效果圖(200 倍)Fig.6 HE staining images of mouse testis tissues(200 times)
有研究表明,NNK 對多種器官組織具有細胞毒性[1]。趙華玲[18]的研究結(jié)果表明,8-羥基脫氧鳥苷(8-OHdG)會發(fā)生不良反應,主要是DNA 的氧化損傷所致,對于部分氧化損傷,機體會進行自我修復,從而阻止損傷,但嚴重的氧化損傷會對機體造成傷害,例如造成炎癥等。本研究中通過HE染色證實了NNK 對小鼠的肺、肝、腎和睪丸組織會造成不同程度的傷害,NNK 染毒可使小鼠肺泡隔增生,肝血竇與肝細胞核增大,腎小球出現(xiàn)玻璃樣變性、破碎,睪丸生精小管中各級精細胞明顯減少,進而引發(fā)大量炎癥,這與前人的研究結(jié)果一致。
小鼠Prx 基因的相對表達量(圖7)顯示,在NNK 處理后,所有的Prx 基因均被誘導,同一個Prx 基因在不同組織中的表達量不同,且同一組織中處理組小鼠Prx 基因的表達量最高為對照組小鼠的34.8 倍??梢姡贜NK 脅迫下,小鼠不同組織中Prx 基因的表達出現(xiàn)異常。初步推斷,Prx 基因可調(diào)節(jié)小鼠體內(nèi)ROS 水平,進而在NNK 誘發(fā)腫瘤過程中發(fā)揮預防作用。進一步比較可知:
圖7 小鼠Prx 基因的相對表達量(n=3)Fig.7 Relative expression of Prx gene in mice(n=3)
①與對照組小鼠相比,Prx1 基因在兩種不同劑量NNK 處理組小鼠組織中的表達量基本呈降低趨勢,僅在5.0 mg/kg NNK 處理小鼠腎組織中Prx1 基因的表達量略有升高。同樣,與對照組小鼠相比,Prx3 基因在兩種不同劑量NNK 處理組小鼠組織中的表達量基本呈降低趨勢,僅在5.0 mg/kg NNK 處理組小鼠肺組織中Prx3 基因的表達量略有升高。這說明在NNK 影響下,Prx1 和Prx3基因的表達基本被抑制,可能的原因是Prx1 和Prx3 蛋白對NNK 引起的小鼠組織炎癥不太敏感。②Prx2 基因在不同組織中受NNK 的影響不同,在肺和腎組織中其表達量與對照相比升高,而在肝和睪丸組織中降低,這說明Prx2 蛋白對NNK 導致的不同組織炎癥的敏感程度不同。③與對照組小鼠相比,在處理組小鼠肝和腎組織中Prx4 和Prx6基因受NNK 的影響其表達量升高,而在肺和睪丸組織中其表達量降低。④Prx5 基因在2.5 mg/kg NNK 處理組小鼠組織中其表達量均高于對照組小鼠;對照組小鼠所有組織中Prx5 基因表達量均較低;5.0 mg/kg NNK 處理后,小鼠肺、肝和腎組織中Prx5 基因表達量顯著升高。這說明Prx5 基因可能在NNK 脅迫下發(fā)揮著較重要的抗氧化作用,以抑制腫瘤的發(fā)生。Prx5 是一種多功能蛋白,能夠保護DNA 免受損傷,因而是細胞凋亡的抑制劑。Avila 等[19]的研究表明,Prx5 蛋白是肺上皮細胞的重要抗氧化蛋白之一,其在人肺中的表達量會因炎癥的發(fā)生而增加。在本研究中,與對照組小鼠相比,NNK 誘導的小鼠肺部炎癥中Prx5 基因表達量顯著增加,表明Prx5 可能在肺部感染中起重要作用。Prx5 基因不僅在NNK 處理的小鼠肺組織中高表達,而且在腎臟和睪丸中高表達。由此推斷,Prx5 基因可能是腎臟和睪丸的抗炎效應物之一。
在小鼠肺組織中,與對照組相比,NNK 處理后Prx2 和Prx5 基因表達量升高,而Prx1、Prx4 和Prx6基因表達量降低;在NNK 處理組小鼠肺組織中,上述Prx 基因?qū)?.5 mg/kg NNK 處理的響應較5.0 mg/kg NNK 處理更加敏感;其中,Prx5 基因的最高表達量是對照組處理小鼠的28.4 倍。
在小鼠肝組織中,與對照組相比,NNK 處理后Prx4(在5.0 mg/kg NNK 處理組中)、Prx5 和Prx6(在2.5 mg/kg NNK 處理組中)基因表達量升高,而Prx1、Prx2 和Prx3 基因表達量降低;在小鼠肝組織中,Prx1、Prx2 和Prx3 基因?qū)?.5 mg/kg NNK 處理的反應更加敏感,而Prx4、Prx5 和Prx6 基因?qū)?.0 mg/kg NNK 處理的反應更加敏感;處理組Prx 基因的最高表達量是對照組的34.8 倍。
有研究表明,使用NNK 處理小鼠胎盤后,小鼠肝和肺組織中8-羥基-鳥嘌呤脫氧核苷酸水平升高,這可能是由于NNK 在代謝過程中誘導產(chǎn)生過多的羥基自由基或ROS 所致;當用綠茶、抗氧化劑等NNK 抑制劑處理A/J 小鼠時,除O6-mG 外的DNA 加合物的含量降低[20]。而Prx 蛋白最為顯著的功能是清除過氧化物,同時氧化應激可以誘導Prx 的表達,這表明Prx 與ROS 的生成相關[13]。本研究結(jié)果也表明在NNK 處理下Prx 基因表達量發(fā)生異常,提示Prx 基因可能在NNK 導致組織損傷的過程中發(fā)揮一定的作用,極有可能與NNK 誘導下的ROS 生成有關,這就為后續(xù)Prx 基因在NNK處理下的功能研究提供了參考。
在小鼠腎組織中,與對照組相比,NNK 處理后Prx5 基因表達量升高,其他Prx 基因表達量降低;Prx1、Prx2 和Prx4 基因表達量比Prx3、Prx5 和Prx6基因低;NNK 處理組小鼠腎組織中Prx 基因的最高表達量是對照組的26.4 倍。同樣,在小鼠睪丸組織中,與對照組相比,NNK 處理后Prx5 基因表達量升高,其他Prx 基因表達量降低;NNK 處理組小鼠睪丸組織中Prx 基因的最高表達量是對照組的7.0 倍。
結(jié)合本實驗室及國內(nèi)外其他學者的研究結(jié)果推測,在NNK 作用后,小鼠器官組織中的ROS 升高,ROS 會攻擊細胞中DNA 的脫氧鳥苷,使8-羥基鳥嘌呤脫氧核苷酸水平升高,進而促進腫瘤的發(fā)生,而在這一過程中,Prx 基因可以通過調(diào)節(jié)其表達量,進一步清除多余的ROS,從而使機體保持氧化還原的平衡狀態(tài)。
對小鼠進行了NNK 腹腔注射,并利用HE 染色和qRT-PCR 技術評價了NNK 對小鼠的毒性和Prx 基因表達的影響。與對照組小鼠相比,NNK 處理組小鼠好斗性增強,進食量無較大變化,但在染毒5 周后,小鼠體質(zhì)量有所降低。HE 染色結(jié)果表明,處理組小鼠肺組織肺泡隔增生,肝組織肝血竇與肝細胞核增大,腎小球出現(xiàn)玻璃樣變性、破碎,睪丸生精小管中各級精細胞明顯減少。在NNK處理后,所有Prx 基因均被誘導,同一Prx 基因在不同組織中的表達量不同,且在肝組織中處理組小鼠Prx 基因的表達量最高,為對照組的34.8 倍。在NNK 脅迫下,Prx 基因的表達發(fā)生異常,結(jié)果提示Prx 基因可能在NNK 導致組織損傷的過程中發(fā)揮一定的作用,這就為后續(xù)Prx 基因在NNK 處理下的功能研究奠定了基礎,并且不同Prx 基因的功能還可能是互補的。對照組小鼠所有組織中Prx5基因的表達量均較低,而在NNK 處理后其表達量有所升高,在5.0 mg/kg NNK 處理后,其表達量升高較明顯,這表明Prx5 基因在NNK 脅迫下可能發(fā)揮更重要的作用,對下一步研究Prx5 在NNK 導致組織損傷的過程中可能發(fā)揮的功能和作用機制提供了理論依據(jù)。