孫禹凡,謝鳳英,鐘明明,齊寶坤,2,3,*,李 楊,2,3,*
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150030;2.哈爾濱市食品產(chǎn)業(yè)研究院,黑龍江 哈爾濱 150028;3.國家大豆工程技術(shù)研究中心,黑龍江 哈爾濱 150086)
油體是植物種子中用來貯存油脂的細(xì)胞器,是由磷脂及油體結(jié)合蛋白包裹液態(tài)甘油三酯形成的球體結(jié)構(gòu),直徑通常為0.5~2.5 μm。其中,Oleosin蛋白(OL)是油體結(jié)合蛋白的主要成分且含量最為豐富(占油體結(jié)合蛋白的80%~90%),是一類疏水、堿性小分子蛋白,分子質(zhì)量通常為16~24 kDa[1]。Tzen等[2]深入研究發(fā)現(xiàn)OL分子含有3 個區(qū)域,其中央疏水區(qū)由兩列反向排列的β-折疊的氨基酸殘基插入油相中,形成發(fā)卡狀構(gòu)型。對天然油體環(huán)境穩(wěn)定性起著關(guān)鍵作用[3]。然而,正是由于這種穩(wěn)定結(jié)構(gòu)的存在,使得天然油體較難封裝天然疏水性化合物,限制了其應(yīng)用領(lǐng)域。因此,人們開始模擬天然油體結(jié)構(gòu),建造類似于天然油體穩(wěn)定結(jié)構(gòu)的重組油體乳液,用于裝載營養(yǎng)素(如姜黃素類)和藥物(用于持續(xù)釋放喜樹堿,一種疏水性抗癌藥物)等[4]。
1992年Tzen[5]通過混合甘油三酯、三亞油酸甘油酯和磷脂酰膽堿(phosphatidyl choline,PC),以及分別從小麥、水稻、油菜籽和大豆分離的OL,首次成功地制備了物理穩(wěn)定良好的重組油體乳液。此后科學(xué)家試圖拓展其應(yīng)用領(lǐng)域,裝載不同的功能成分。目前,研究者利用重組油體乳液進(jìn)行功能性物質(zhì)的包封和運載。Chiang等[6-7]分別利用OL、油脂和磷脂自組裝油體靶向遞送疏水性藥物,并利用石斑魚吸收模型對重組油體的封裝效果和緩釋進(jìn)行了研究,也證明了采用重組油體可將90%以上功能成分封裝,并且延長了功能性成分的釋放曲線。Vargo等[8]將重組油體與磁性氧化鐵融合,成功構(gòu)建出一種磁性納米材料,并成功負(fù)載藥物,精確地靶向配體達(dá)到靶向治療的效果。此外,油體乳液穩(wěn)定不易被氧化的特點也漸漸吸引人們的眼球,Wijesundera等[9]利用金槍魚油、菜籽中提取的OL和磷脂模仿天然油體來制備重組油體,從而形成含有高度不飽和脂肪酸的物理和氧化穩(wěn)定的食品乳液。目前,對于重組油體乳液的構(gòu)建及應(yīng)用研究相對較多,但OL與磷脂間的相互作用對重組油體乳液功能性質(zhì)的研究較少,且OL與磷脂間的比例對構(gòu)建重組油體穩(wěn)定性的影響研究也鮮有報道。
本實驗研究不同組分質(zhì)量分?jǐn)?shù)的OL與磷脂中主要成分PC相互作用對重組油體乳液穩(wěn)定性的影響。以天然油體中主要成分甘油三酯、PC和OL為原料,利用超聲處理構(gòu)建重組油體,探究重組油體中關(guān)鍵組分互作模式,建立重組油體結(jié)構(gòu)與界面模型,評價其穩(wěn)定性與界面特性,為穩(wěn)定乳液的構(gòu)建及包埋功能性物質(zhì)提供理論基礎(chǔ)。
大豆(東農(nóng)36號)由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)大豆研究所提供;蔗糖 天津科密歐化學(xué)試劑有限公司;大豆油為市售一級大豆油;異辛烷 天津市富宇精細(xì)化工有限公司;異丙醇、丁醇、甲醇、氯仿、丙酮、氫氧化鈉 天津市天力化學(xué)試劑有限公司;試劑均為分析純。
KC-701超微粉碎機 北京開創(chuàng)同和科技發(fā)展有限公司;UP-400S超聲波細(xì)胞破碎儀 寧波新芝生物科技股份有限公司;UV-2600/2700紫外-可見分光光度計 島津企業(yè)管理(中國)有限公司;F-4500型熒光分光光度計日立高新技術(shù)公司;Nano-ZS90粒度分析儀、Bohlin-CVO流變儀 英國馬爾文公司;PHSJ-4A型實驗室pH計中國上海雷磁公司;分析天平(0.000 1 g) 北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;FD5-3型冷凍干燥機 美國SIM公司;IX71奧林巴斯倒置顯微鏡 上海豫光儀器有限公司;TNZ1-5700傅里葉紅外光譜儀 英國Thermo Fisher公司;OCA20視頻接觸角測量儀 德國Data Physics儀器股份有限公司。
1.3.1 OL的提取
參考Deleu等[10]的方法提取OL,并做適當(dāng)修改。將大豆和水以料液比1∶5(g/mL)浸泡,在4~6 ℃條件下放置18~20 h。用組織搗碎機以18 000 r/min 磨漿90 s,用四層脫脂紗布過濾除去豆渣,并收集濾液。將濾液中加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%氯化鈉,冰水浴攪拌15 min,轉(zhuǎn)移到離心管中,在4 ℃條件下,19 000 r/min 離心30 min,收集上層乳狀物,并重復(fù)此步驟2 次,最后用去離子水清洗;將處理后的上層乳狀液用0.22 μm的濾膜過濾,將過膜處理后的乳狀液與3 倍體積的乙醚混合后,以5 000 r/min離心15 min除去中性脂質(zhì),該過程重復(fù)3 次。將獲得的殘渣再用氯仿-甲醇-去離子水(4∶2∶1,V/V)混合后,以5 000 r/min離心15 min,收集中間白色膠體;并與3 倍體積的冰丙酮混合,以5 000 r/min離心15 min,收集沉淀即為OL。最后將OL置于氮氣下以除去剩余的有機溶劑,冷凍干燥后用于進(jìn)一步分析。
1.3.2 OL十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)
參考Surewicz等[11]的實驗方法稍作修改。SDS-PAGE分離膠質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%,濃縮膠質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%。將OL溶于水配制成質(zhì)量濃度為3 μg/mL的溶液,取樣品加上樣緩沖液煮沸5 min。上樣量15 μL,在80 V條件下運行30 min,進(jìn)入分離膠后增至120 V。采用考馬斯亮藍(lán)溶液進(jìn)行凝膠染色后進(jìn)行脫色。
1.3.3 重組油體乳液構(gòu)建
在pH 7.4下構(gòu)建重組油體乳液。使用OL、PC和大豆油構(gòu)建重組油體,具體添加量如表1所示。為保障OL和PC混合均勻,在室溫下不斷攪拌2 h。然后將錐形瓶置于冰水浴中1 h,將超聲波處理器的鈦探頭(直徑0.636 cm)插入液面下,距離錐形瓶底部1 cm處,在20 kHz條件下,輸出功率200 W處理6 min,超聲時間4 s,間隔時間2 s,并每5 min向冰水浴中加入冰塊保持低溫。
表1 重組油體乳液中不同組分質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 1 Percentages of various components in reconstituted emulsions%
1.3.4 乳化活性及乳化穩(wěn)定性測定
乳化性的測定參考Li Chen等[12]方法。將均質(zhì)的乳狀液用0.1% SDS溶液稀釋100 倍,在500 nm波長處用紫外分光光度計測定吸光度,按式(1)計算乳化活性指數(shù)(emulsifying activity index,EAI)。靜置30 min后測定吸光度,按式(2)計算乳化穩(wěn)定性(emulsion stability index,ESI)。
式中:N為稀釋倍數(shù)(100);C為乳化液形成前乳化劑質(zhì)量濃度(g/mL);φ為乳化液中油相體積分?jǐn)?shù)/%;A0為第0分鐘時的吸光度;A10為第10分鐘時的吸光度;T10-T0為時間差(10 min)。
1.3.5 接觸角測定
使用接觸角分析儀在25 ℃通過座滴的方法測定。乳液涂抹于載玻片制備成直徑為13 mm且厚度為2 mm的薄膜。使用高精度注射器將一滴水(5 μL)沉積在薄膜的表面上。在通過攝像機從注射器下落之后立即記錄液滴圖像,并且液滴的輪廓被數(shù)值求解并且適合于Laplace-Young方程,可確定其界面張力。每個樣品在3 個顆粒中的每個上測量接觸角,并對每個顆粒進(jìn)行3 次測量[13]。
1.3.6 貯藏穩(wěn)定性測定
參考Saeidy等[14]方法稍作修改。取新鮮乳液至10 mL透明玻璃瓶中,封口密閉,置于室溫,避光貯存每隔7 d觀察,上層為乳析層,下層為清液層。乳析指數(shù)(creaming index,CI)計算如下:
式中:Hc為下層清液高度/cm;Ht為整個乳化液的高度/cm。
1.3.7 Zeta電位、粒徑的測定
采用Malvern Zetasizer Nano ZS電位及粒度分布儀測定乳液的Zeta電位。利用Malvern Mastersizer 2000激光粒度儀測定乳液的液滴直徑。稀釋乳液的倍數(shù)約為1∶1 000。乳液液滴的平均粒徑采用體積平均直徑(D4,3)表示。所有的測試均在25 ℃條件下進(jìn)行,平行測定3 次。
1.3.8 濁度測定
將不同組分質(zhì)量分?jǐn)?shù)的重組油體乳液分別用pH 7.4的磷酸鹽緩沖液溶液稀釋100 倍后,以pH 7.4的磷酸鹽緩沖液為空白對照,用紫外分光光度計測定600 nm波長處的吸光度,濁度計算如下:
式中:A為稀釋乳液在600 nm波長處的吸光度;V為稀釋倍數(shù);I為光程差0.01 m。
1.3.9 微觀結(jié)構(gòu)的測定
利用配有DP27型顯微數(shù)碼相機的奧林巴斯BX53型生物顯微鏡對重組油體乳液的顯微結(jié)構(gòu)進(jìn)行觀察。用0.01 mol/L pH 7.4的磷酸緩沖溶液將樣品稀釋10 倍,用吸管取2~3 滴稀釋后的重組油體乳液于干凈干燥的載玻片上,輕輕的加上蓋玻片后,置于顯微鏡明場放大20 倍進(jìn)行觀察。
1.3.10 內(nèi)源熒光光譜的測定
應(yīng)用F-4500熒光分光光度計測定樣品的熒光光譜[15]。將超聲處理后的樣品稀釋,使其質(zhì)量濃度達(dá)到0.15 mg/mL。光譜測定條件設(shè)置為激發(fā)波長287.5 nm,掃描波長300~500 nm,激發(fā)狹縫5 nm,發(fā)射狹縫寬5 nm。重復(fù)掃描3 次。
1.3.11 三維熒光光譜的測定
采用熒光光譜儀并參考Li Yang等[16]方法測定不同OL/PC比例下構(gòu)建重組油體的三維熒光光譜,將制備好的重組油體乳液稀釋50 倍后,取一定量置于比色皿中測定得到三維熒光結(jié)構(gòu)圖。初始激發(fā)波長為280 nm,掃描波長為200~500 nm,譜帶寬度10 nm,掃描16 條曲線。
圖1OL的SDS-PAGE圖譜Fig. 1 SDS-PAGE of oleosin
圖1 表明,采用Nikiforidis等[17]方法所提取的OL除去了油體表面大部分的其他結(jié)合蛋白,其中24 kDa被認(rèn)為是OL,通過凝膠成像儀表明OL質(zhì)量分?jǐn)?shù)高達(dá)95.6%,滿足實驗純度要求。
圖2 不同OL/PC質(zhì)量比對重組油體乳化特性的影響Fig. 2 Effects of OL/PC ratio on EAI and ESI
由圖2可知,與單獨添加磷脂或蛋白相比,OL-PC相互作用制備乳液可明顯提高其乳化特性。并且,隨著磷脂添加量的增加,重組油體乳液的乳化性呈先升高后降低的趨勢。當(dāng)OL/PC=1.5時,重組油體的EAI和ESI均最高,分別為33.11 m2/g、74.22 min,較單獨添加磷脂形成的乳液分別提高2.87、7.65 倍。這可能是由于PC與OL發(fā)生疏水相互作用,從而改變OL表面活性,并對其結(jié)構(gòu)和表面電荷進(jìn)行修飾,隨著PC添加量的增加甚至可能將OL完全包裹至PC形成的膠束和囊泡中。此外,二者相互作用可在乳液油-水界面均勻分散,降低重組油體乳液的界面張力,從而改變其乳化特性。然而,當(dāng)?shù)鞍妆壤掷m(xù)增加(OL/PC>1.5)時,重組油體乳液的乳化性又有所下降,與Torrezan等[18]研究結(jié)果相似,這是因為當(dāng)溶液中添加過量的OL時,OL與PC在油-水界面處發(fā)生競爭吸附的現(xiàn)象,乳液中的PC分子被替換下來,從而導(dǎo)致乳化能力降低。
圖3 不同OL/PC質(zhì)量下重組油體乳液的接觸角Fig. 3 Effects of OL/PC ratio on contact angle
圖4 不同OL/PC質(zhì)量下重組油體乳液乳液界面張力Fig. 4 Effects of OL/PC ratio on dynamic interfacial tension
接觸角是指在氣、液、固三相交點處所作的氣-液界面的切線,此切線在液體一方,與固-液交界線之間的夾角為θ,是潤濕程度的量度[19]。從圖3觀察得知,與單獨添加蛋白相比,向重組油體乳液中添加PC時,接觸角均有所下降,結(jié)果表明接觸角的改變主要受PC添加量的影響,可能是由于親水性磷脂吸附在乳液的表面增加了乳液的親水性。當(dāng)OL/PC=1.5時,接觸角降至最小值(25.7°),說明此時重組油體乳液親水性最強,OL-PC結(jié)合效果最佳,而OL/PC>1.5時,接觸角又所上升,當(dāng)添加過量的OL時,OL與PC在油-水界面處發(fā)生競爭吸附的現(xiàn)象,在油-水界面處OL占據(jù)了主導(dǎo)地位。另一方面,Yu Long等[20]研究表明,乳液的穩(wěn)定性與界面張力和界面壓的大小有著密切相關(guān),界面張力越小,界面壓越大,乳液越穩(wěn)定。
由圖4得知,OL/PC=1.5時界面張力值也是最小的,說明OL/PC=1.5時所形成的重組油體乳液最穩(wěn)定。猜測由于在此濃度下OL與PC結(jié)合度最高,OL-PC復(fù)合物吸附在重組油體乳液的油-水界面,在增加了乳液的親水性的同時又起到良好的穩(wěn)定劑的作用。
圖5 不同OL/PC質(zhì)量比對重組油體貯藏穩(wěn)定性的影響Fig. 5 Effects of OL/PC ratio on storage stability
不同OL/PC質(zhì)量比例下形成的重組油體乳液貯藏穩(wěn)定性如圖5所示。乳層析指數(shù)表征的是乳液抵抗重力分層的能力,單獨添加PC時,樣品在室溫條件下放置24 h內(nèi)即出現(xiàn)相分離現(xiàn)象,這可能由于乳液表面的組成物質(zhì)單核含量較低,乳液液滴之間未能提供足夠的排斥力阻止乳層析現(xiàn)象的發(fā)生[21]。除此之外,Nur Hanani等[22]研究發(fā)現(xiàn),乳化劑的組成成分也是影響乳層析指數(shù)的重要因素。重組油體乳液主要是由OL、PC和油脂組成,其中OL在油-水界面上作為主要成分阻止乳液重力分層,也可與PC發(fā)生疏水相互作用形成更為致密的乳化層,使乳液在幾天之內(nèi)保持相對穩(wěn)定。因此,與單獨添加PC時相比,OL-PC乳液顯示連續(xù)穩(wěn)定的狀態(tài),原因可能是乳化劑的組成成分中OL柔性結(jié)構(gòu)舒張與PC對接后復(fù)合體系的構(gòu)象發(fā)生改變而提高兩者之間的相互作用。當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)含量過少時,乳化效果較差;蛋白質(zhì)含量過高時,則高濃度的OL與PC出現(xiàn)競爭吸附,乳液的穩(wěn)定性由此受到影響。當(dāng)OL/PC=1.5時,乳液顯示出最低的乳層析指數(shù)21.5%,說明此時乳液的穩(wěn)定性最好。
超聲處理后乳液液滴的破碎與重聚同時發(fā)生,但粒徑D4,3的測量可迅速捕捉液滴平均粒徑的變化,不同OL/PC質(zhì)量比重組油體乳液的平均粒徑和粒徑分布變化如圖6A、B所示。當(dāng)單獨添加OL時重組油體乳液的粒徑最大為3 703 nm,相反單獨添加磷脂時乳液得到最小粒徑為490 nm,這是由于磷脂本身為小分子乳化劑,具有較小的分子質(zhì)量[23]。隨著PC含量的增加,重組油體乳液的平均粒徑呈現(xiàn)先降低后增加的趨勢,OL/PC=1.5時,粒徑為810.4 nm,且粒徑分布圖從多峰變成單峰,說明乳液呈現(xiàn)均一穩(wěn)定的狀態(tài)。Magnusson等[24]研究發(fā)現(xiàn)磷脂的添加對乳狀液的乳析動力學(xué)和粒子密度產(chǎn)生影響,粒徑減小與界面層電荷增加有關(guān),可阻止乳液發(fā)生絮凝和聚沉。然而,當(dāng)OL/PC>1.5,乳液的平均粒徑逐漸增加。當(dāng)OL/PC=50時,D4,3達(dá)到2 114 nm,且粒徑分布呈現(xiàn)多峰趨勢,這可能是隨著蛋白含量的增加,導(dǎo)致油-水界面上的磷脂分子被替換,OL與PC之間的相互作用減弱,不足以維持重組油體以小液滴的形式存在,所以粒徑有所上升,這與Crespo-Villanueva等[25]研究結(jié)果一致。
圖6 不同OL/PC質(zhì)量比對重組油體乳液平均粒徑(A)、粒徑分布(B)、Zeta電位(C)和濁度(D)的影響Fig. 6 Effects of OL/PC ratio on mean particle size (A), droplet size distribution (B), zeta-potential (C) and turbidity (D) of reconstituted emulsion
由圖6C可知,與未添加PC相比,單獨添加OL時重組油體乳液呈現(xiàn)最低的靜電荷11.4 mV,并隨著PC含量的增加,Zeta電位絕對值均有不同程度的增加,說明添加PC后可以增加乳液的電負(fù)性,這可能是由于OL與PC發(fā)生疏水相互作用,使蛋白結(jié)構(gòu)發(fā)生改變氨基酸結(jié)構(gòu)暴露,使重組油體乳液帶有更多的負(fù)電荷。當(dāng)OL/PC=1.5時,重組油體乳液Zeta電位的絕對值最大為46.1 mV,說明此時乳液液滴表面的同種電荷含量較高,彼此間的靜電斥力保證乳液在貯存期間發(fā)生液滴擾動效應(yīng),因此穩(wěn)定性較強[26]。該結(jié)果與2.3節(jié)中樣品乳化穩(wěn)定性結(jié)論一致。
乳液的濁度也可以表現(xiàn)乳液的穩(wěn)定性。有研究表明當(dāng)油相體積分?jǐn)?shù)固定,乳液粒徑是影響濁度的主要因素,二者呈正相關(guān),乳滴平均粒徑越大,體系濁度越高[27],本實驗濁度與粒徑變化結(jié)果保持一致。由圖6D可知,當(dāng)OL/PC>1.5時,濁度隨OL質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加而增加,這是可能是油水界面處蛋白含量達(dá)到飽和,連續(xù)相中未被吸附蛋白含量增加,最終導(dǎo)致重組油體乳液濁度的增加。
圖7 不同OL/PC質(zhì)量比對重組油體微觀結(jié)構(gòu)的影響Fig. 7 Effect of OL/PC ratio on microstructure of recombinant oil body
由圖7可知,PC=0和OL=0時乳化體系中乳滴分布較為不均,且乳滴大小不均一,有少量乳滴發(fā)生輕微聚集現(xiàn)象,這可能是由于乳液中乳滴較大促進(jìn)了絮凝現(xiàn)象的產(chǎn)生。而當(dāng)OL/PC=1.5時,相對于其他樣品乳液液滴大小較為均一,且分布均勻,因此乳液乳化穩(wěn)定性較強,這與之前乳化穩(wěn)定性測定結(jié)果相似,其微觀結(jié)構(gòu)與粒徑分布趨勢一致。
如圖8所示,經(jīng)超聲處理后的OL最大發(fā)射波長為310 nm。由此可知本實驗所測試OL殘基分布趨向蛋白分子外部環(huán)境[28]。OL的內(nèi)源熒光主要來源于Trp殘基,PC與OL結(jié)合使Trp殘基的微環(huán)境發(fā)生改變,從而OL的熒光強度發(fā)生改變。由圖8可知,隨著PC的不斷加入,雖然OL的熒光光譜的峰形不變,但OL的內(nèi)源熒光強度逐漸降低,λmax紅移2.0 nm,表明PC對OL的內(nèi)源熒光產(chǎn)生了強烈的猝滅作用,PC與OL發(fā)生相互作用可使OL的空間構(gòu)象發(fā)生改變,進(jìn)而使Trp殘基微環(huán)境發(fā)生改變,由疏水環(huán)境轉(zhuǎn)變?yōu)橛H水環(huán)境。同時表明熒光猝滅是因小分子與熒光物質(zhì)相互作用而使其熒光強度下降的現(xiàn)象。該結(jié)果與2.5節(jié)中粒徑、Zeta電位中的推測結(jié)果一致。
圖8 不同PC添加量對OL熒光光譜的影響Fig. 8 Effect of different amount of added PC on OL fluorescence spectrum
圖9 不同PC添加量對OL三維熒光光譜的影響Fig. 9 Effect of different amounts of added PC on three-dimensional fluorescence spectrum of OL
三維熒光在二維的基礎(chǔ)上增加了測量的維數(shù),更加便于直觀觀測熒光強度狀態(tài)的變化,增加了光譜的分辨率[29]。OL和PC之間的相互作用很大程度上影響OL的理化性質(zhì),從而對OL-PC所形成的重組油體乳液產(chǎn)生影響,因此使用三維熒光進(jìn)行研究。圖9顯示,在添加不同PC時對OL三維熒光光譜的影響,實驗組前期研究證明OL的激發(fā)波長和發(fā)射波長都在220 nm處,證明其發(fā)色基團(tuán)主要出現(xiàn)在此波長下;當(dāng)OL與PC相互結(jié)合時在激發(fā)波長200~500 nm范圍內(nèi),出現(xiàn)第2個峰,證明二者發(fā)生相互作用[16]。實驗數(shù)據(jù)顯示,當(dāng)OL/PC=1.5時,熒光強度較其他樣品明顯下降,這可能是由于在該條件下OL中多肽鏈發(fā)生解折疊,OL中的發(fā)色基團(tuán)被埋在復(fù)合物的疏水區(qū)域中發(fā)生熒光猝滅效應(yīng),暫時無法被識別,導(dǎo)致熒光強度明顯降低[30]。這也表明當(dāng)OL/PC=1.5時,二者結(jié)合程度最大,更有利于重組油體乳液的形成,與上述其他研究結(jié)果一致。
OL-PC復(fù)合乳化體系的乳化活性、乳化穩(wěn)定性等功能性質(zhì),因OL與PC比例的不同而具有差異性。當(dāng)OL/PC=1.5時,重組油體乳液的乳化活性和乳化穩(wěn)定性最高。乳液分散均勻、界面張力及接觸角最小,并通過熒光光譜分析得出此時二者結(jié)合程度最大。
通過界面特性分析得出,當(dāng)添加過量的OL時,OL與PC在油-水界面處發(fā)生競爭吸附的現(xiàn)象,在油-水界面處OL占據(jù)了主導(dǎo)地位導(dǎo)致乳化能力及穩(wěn)定性的降低。而當(dāng)OL/PC=1.5時,OL會促進(jìn)與PC的相互作用,在油-水界面上形成較穩(wěn)定的界面膜,利于重組油體的穩(wěn)定。
OL-PC的添加比對重組油體乳液會產(chǎn)生一定的影響。適量添加OL會明顯改善重組油體乳液的乳化及貯藏穩(wěn)定性,這將為穩(wěn)定乳液的構(gòu)建提供理論基礎(chǔ)。