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        超聲處理對(duì)紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物結(jié)構(gòu)和功能性質(zhì)的影響

        2020-07-13 11:48:46尹歡歡趙城彬許秀穎吳玉柱劉景圣
        食品科學(xué) 2020年11期
        關(guān)鍵詞:葉黃素巰基溶解度

        杜 琛,尹歡歡,趙城彬*,許秀穎,曹 勇,吳玉柱,張 浩,劉景圣*

        (吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,小麥和玉米深加工國家工程實(shí)驗(yàn)室,吉林 長春 130118)

        葉黃素是一種具有抗氧化作用的天然類胡蘿卜素,廣泛存在于綠色植物中,在玉米、萬壽菊中含量豐富。有越來越多的證據(jù)表明葉黃素可以改善人體健康,延緩老化,并且能夠抑制白內(nèi)障和黃斑變性這兩種常見眼病的發(fā)生[1]。紅豆(Phaseolus angularis)又名赤豆,是一種高蛋白、低脂肪、營養(yǎng)豐富的食品。Meng等[2]對(duì)紅豆中的蛋白質(zhì)做了詳細(xì)的研究,發(fā)現(xiàn)紅豆中約50%的蛋白質(zhì)為球蛋白,其中7S球蛋白為主要的組成成分,11S球蛋白次之;紅豆球蛋白的氨基酸組成優(yōu)于聯(lián)合國糧食及農(nóng)業(yè)組織/世界衛(wèi)生組織的標(biāo)準(zhǔn),通過圓二色譜研究發(fā)現(xiàn),紅豆蛋白富含α-螺旋和β-轉(zhuǎn)角。

        近年來,蛋白質(zhì)與具有抗氧化作用的小分子如茶多酚、花青素、姜黃素、槲皮素等物質(zhì)結(jié)合后發(fā)生物理化學(xué)性質(zhì)的變化以及發(fā)生變化后的蛋白質(zhì)對(duì)于健康的影響已經(jīng)成為研究的一大熱點(diǎn)。Chen Gang等[3]發(fā)現(xiàn)添加0.08%的茶多酚能夠使大豆蛋白溶解度增加至0.50 g/mL,乳化活性提高約3 倍,達(dá)43.5%。Sui Xiaonan等[4]指出花青素的加入改變了大豆分離蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu),導(dǎo)致β-折疊含量減少,β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)卷曲含量增加。Chen Feiping等[5]報(bào)道了超聲處理下大豆分離蛋白與姜黃素絡(luò)合顯著增加了蛋白質(zhì)的粒徑和ζ-電位,但導(dǎo)致表面疏水性的降低。Wang Yufang等[6]研究發(fā)現(xiàn)槲皮素與大豆蛋白結(jié)合后,其2,2’-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)自由基清除能力優(yōu)于游離槲皮素。目前,蛋白質(zhì)與小分子結(jié)合的研究多集中于動(dòng)物蛋白,如乳蛋白、魚類蛋白、牛血清白蛋白等,植物蛋白主要是大豆蛋白,而與紅豆蛋白結(jié)合的研究相對(duì)較少。

        超聲波處理技術(shù)引起了食品工業(yè)的日益關(guān)注。超聲波在食品中可用于輔助提取、滅菌、乳化、結(jié)晶、干燥等,主要是利用超聲波的空化作用、機(jī)械效應(yīng)及熱效應(yīng)等。Hu Hao等[7]報(bào)道大豆蛋白的游離巰基含量、表面疏水性和溶解度經(jīng)超聲波處理后均增加,而這些性質(zhì)的改變可能有利于蛋白質(zhì)與葉黃素的結(jié)合。為研究超聲處理能否促進(jìn)紅豆蛋白與葉黃素的結(jié)合,從而提高葉黃素對(duì)紅豆蛋白的修飾和功能改善作用,本實(shí)驗(yàn)采用超聲處理制備紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物,采用差示掃描量熱儀(differential scanning calorimeter,DSC)和傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)TIR)儀分析其熱特性和二級(jí)結(jié)構(gòu),并研究其表面疏水性、巰基含量、溶解度、起泡和乳化特性,試圖探究結(jié)構(gòu)變化與功能性質(zhì)改善之間的構(gòu)效關(guān)系,從而為研發(fā)功能性紅豆蛋白及其產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用提供理論參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        實(shí)驗(yàn)材料所用紅豆為‘白紅11號(hào)’(蛋白質(zhì)21.59%(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)、淀粉56.82%、脂肪0.74%、纖維7.98%、水分8.12%、灰分3.43%),購自吉林省白城市,將紅豆中不完整的、有蟲眼的顆粒及雜質(zhì)除去,挑選顆粒光滑飽滿、大小均勻的籽粒作為實(shí)驗(yàn)材料。玉米葉黃素為小麥和玉米深加工國家工程實(shí)驗(yàn)室自制。

        8-苯胺基-1-萘磺酸(8-anilino-1-naphthalenesulfonate,ANS) 上海源葉生物科技有限公司;溴化鉀、5,5’-二巰基-2-硝基苯甲酸(5,5’-dithiobis-2-nitrobenzoic acid,DTNB) 美國Sigma公司;三羥甲基氨基甲烷(Tris) 美國Genview公司;乙酸乙酯(純度99.5%)、無水乙醇等試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        高速離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;ST300 pH計(jì)奧豪斯儀器(常州)有限公司;PC-620D磁力攪拌器美國Corning公司;723PC可見分光光度計(jì) 上海歐茂儀器有限公司;JY98-IIIN超聲波細(xì)胞粉碎機(jī) 寧波新芝生物科技股份有限公司;K1100全自動(dòng)凱氏定氮儀濟(jì)南海能儀器股份有限公司;FLUO star Omega多功能酶標(biāo)儀 德國BMG LRBTECH公司;Alpha1-4LDplus冷凍干燥機(jī) 德國Christ公司;Q2000 DSC 美國TA公司;VERTEX 70 FTIR儀 德國Bruker公司;FA28間歇式高剪切機(jī) 德國Fluko公司。

        1.3 方法

        1.3.1 紅豆蛋白提取

        根據(jù)徐向東[8]的方法,并稍作修改。稱取豆粒,按1∶5(m/V)的比例加入蒸餾水在室溫下浸泡24 h。將浸泡過的豆瓣去除種皮和胚芽,并沖洗干凈。分批按質(zhì)量比1∶3加入蒸餾水后利用打漿機(jī)將其充分打磨成漿,將豆渣和豆?jié){的混合物過100 目篩,此步驟重復(fù)3~4 次,棄去篩上物。用NaOH溶液調(diào)節(jié)pH值至8~9,室溫下攪拌4 h,使蛋白質(zhì)充分溶解,用離心機(jī)4 000 r/min離心15 min。分離上清液,將沉淀重復(fù)以上步驟,合并上清液。將所得溶液用HCl溶液調(diào)節(jié)pH值至4.5,室溫下攪拌30 min,4 000 r/min離心15 min,將沉淀復(fù)溶后用HCl、NaOH溶液調(diào)節(jié)至pH值為7,然后冷凍干燥即得到紅豆蛋白。采用凱氏定氮法(GB/T 5009.5—2010《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中蛋白質(zhì)的測定》)測定蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù),得到紅豆蛋白中蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為79.87%。

        1.3.2 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物制備

        將紅豆蛋白溶解于pH 7.4、10 mmol/L磷酸鹽緩沖液中,用磁力攪拌器攪拌4 h形成1 g/100 mL的蛋白溶液,保存在4 ℃下。將葉黃素分散在乙醇中使其濃度為2 mmol/L,貯存在4 ℃下備用。在磁力攪拌下將葉黃素溶液逐漸滴加到紅豆蛋白溶液中,使葉黃素濃度為60 μmol/L,而蛋白質(zhì)量濃度保持不變,在室溫下繼續(xù)攪拌1 h,得到紅豆蛋白-葉黃素混合液。將混合液置于冰浴中,使其溫度低于2 ℃,然后將超聲探頭插入液面以下,距離溶液底部1 cm處,在20 kHz的頻率下按表1進(jìn)行超聲處理,超聲處理采用間歇式,即每次超聲4 s,間隔2 s。對(duì)超聲處理后的溶液一部分進(jìn)行結(jié)合率的測定,另一部分溶液冷凍干燥,貯存在室溫下的密封袋中備用。對(duì)照組為未經(jīng)過超聲處理的紅豆蛋白-葉黃素混合液,其他操作與超聲處理的樣品相同。

        表1 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物制備的超聲處理?xiàng)l件Table 1 Ultrasonic treatment conditions for preparation of red bean protein-lutein complexes

        1.3.3 結(jié)合率的測定

        將超聲處理后的溶液在5 000 r/min下離心20 min,取上清液進(jìn)行萃取。在攪拌條件下,按體積比為1∶3的比例加入乙酸乙酯萃取溶液30 s,然后靜置30 min,使其完全分離成乙酸乙酯和水層,測定上清液在500 nm波長處的吸光度。將2 mmol/L的葉黃素醇溶液加入到一定體積的乙酸乙酯中,使乙酸乙酯中葉黃素濃度分別為25、50、75、100、200 μmol/L,然后測定溶液在500 nm波長處的吸光度,得到以葉黃素濃度為x、吸光度為y的標(biāo)準(zhǔn)曲線:y=0.009 2x+0.012 8(R2=0.999 2)。通過標(biāo)準(zhǔn)曲線得到上清液的葉黃素濃度,再通過公式(1)計(jì)算葉黃素的結(jié)合率。

        1.3.4 熱特性的測定

        樣品的熱特性通過DSC測定,參考趙城彬等[9]的方法。稱取2 mg樣品粉末于鋁盤中,密封壓片后,放入DSC中準(zhǔn)備測定,以空鋁盤為對(duì)照,測定條件為掃描速率10 ℃/min,掃描范圍25~200 ℃。

        1.3.5 FTIR光譜的測定

        根據(jù)Zhao Chengbin等[10]的方法,使用FTIR儀分析樣品蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)。將樣品與KBr以1∶100(m/m)混合均勻,并進(jìn)行壓片。光譜記錄在600~4 000 cm-1的范圍內(nèi),并且以4 cm-1的分辨率進(jìn)行11 次掃描。通過Peakfit 4.12軟件擬合α-螺旋、β-折疊、β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)卷曲的特征峰。

        1.3.6 表面疏水性的測定

        按照Zhao Chengbin等[11]的方法并進(jìn)行了一些修改,使用熒光探針ANS測定樣品的表面疏水性。用10 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.4)稀釋樣品得到0.01、0.02、0.05、1.00 mg/mL溶液,取8 mmol/L的ANS溶液20 μL與蛋白質(zhì)溶液2 mL混合,并在25 ℃下靜置3 min。將試樣(200 μL)置于96 孔酶標(biāo)板中用于熒光強(qiáng)度(fluorescence intensity,F(xiàn)I)的測定。建立以蛋白質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)、FI值為縱坐標(biāo)的曲線,并將這些曲線的初始斜率作為表面疏水性。

        1.3.7 巰基含量的測定

        用Ellman試劑法[12]測定巰基含量。總巰基含量測定:用Tris-Gly緩沖液(含0.086 mol/L Tris、0.09 mol/L Gly、0.04 mol/L EDTA,pH 8)配制質(zhì)量濃度為4 mg/mL的DTNB溶液,即Ellman試劑。測定時(shí),將15 mg樣品溶于5 mL Tris-Gly緩沖液,加入50 μL Ellman試劑,在25 ℃條件下保溫反應(yīng)1 h,5 000×g離心10 min,取上清液在412 nm波長處測定吸光度,以等量蒸餾水替代樣品作為空白對(duì)照。游離巰基含量測定:除Tris-Gly緩沖液(0.086 mol/L Tris、0.09 mol/L Gly、0.04 mol/L EDTA、8 mol/L尿素,pH 8)與總巰基含量測定時(shí)不同,其余步驟均相同。

        1.3.8 溶解度的測定

        將樣品溶液(5 mg/mL)以10 000×g離心20 min,收集上清液,通過凱氏定氮法測定氮含量/(g/g),蛋白質(zhì)溶解度通過公式(2)計(jì)算。

        1.3.9 乳化性及乳化穩(wěn)定性測定

        取10 mL 0.1 g/100 mL待測樣品溶液(樣品溶于pH 7的磷酸鹽緩沖液中),加入大豆油3 mL,在室溫下用均質(zhì)機(jī)以10 000 r/min的轉(zhuǎn)速攪拌1 min,迅速從底部取樣,用0.1 g/100 mL的十二烷基硫酸鈉溶液將其稀釋100 倍,然后在500 nm波長處測定其吸光度(A0),以A0表征乳化性;在25 ℃下放置30 min后,再測500 nm波長處的吸光度(A30)。乳化穩(wěn)定性通過公式(3)計(jì)算。

        1.3.10 起泡性及泡沫穩(wěn)定性測定

        取20 mL 1 g/100 mL的樣品溶液使用均質(zhì)機(jī)以10 000 r/min攪打2 min產(chǎn)生泡沫。記錄剛形成泡沫的樣品溶液的體積(V0/mL);靜置30 min后,記錄體積(V30/mL)。起泡性和泡沫穩(wěn)定性分別通過公式(4)、(5)計(jì)算。

        1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

        所有測定至少設(shè)3 個(gè)平行,結(jié)果均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。利用SPSS軟件進(jìn)行單因素方差分析和Duncan檢驗(yàn),P<0.05表示差異顯著。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同超聲處理下復(fù)合體系中紅豆蛋白與葉黃素的結(jié)合率

        圖1 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的結(jié)合率Fig. 1 Binding rate of red bean protein-lutein complexes

        如圖1所示,與未進(jìn)行超聲處理的對(duì)照組相比,在不同超聲處理?xiàng)l件下,紅豆蛋白與葉黃素的結(jié)合率得到不同程度的提高,由65.18%(對(duì)照組)提高到71.70%~91.82%,在240 W超聲處理10 min(處理5)時(shí)結(jié)合率達(dá)到最大,表明超聲處理可以促進(jìn)葉黃素與紅豆蛋白的結(jié)合。無論超聲功率的強(qiáng)弱,隨著超聲時(shí)間的延長,結(jié)合率先升高后下降;而超聲時(shí)間較短(5 min)時(shí),結(jié)合率隨超聲功率升高而升高,超聲10 min時(shí),呈先增加后減少的趨勢,超聲時(shí)間達(dá)20 min時(shí),超聲功率越大其結(jié)合率反而越小。原因可能是適度的超聲處理會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)的展開,使疏水基團(tuán)更多地暴露,從而導(dǎo)致超聲促進(jìn)了葉黃素與蛋白質(zhì)的結(jié)合;而過度超聲處理嚴(yán)重破壞了蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu),可能會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子重新聚集[13],阻礙了其與葉黃素的結(jié)合。

        2.2 不同超聲處理下紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的熱特性分析結(jié)果

        圖2 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的DSC圖Fig. 2 Differential scanning calorimetric thermograms of red bean protein-lutein complexes

        峰值溫度(Tp)反映蛋白質(zhì)的變性溫度,熱焓變(ΔH)表示誘導(dǎo)蛋白質(zhì)變性所需的熱量,而蛋白質(zhì)有序構(gòu)象的情況可以通過ΔH反映[14]。由圖2可知,所有紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物與紅豆蛋白都是在100 ℃附近出現(xiàn)一個(gè)吸收峰,經(jīng)過超聲處理的復(fù)合物比對(duì)照組的圖譜稍向左偏移。葉黃素晶體在157 ℃出現(xiàn)熔融峰,而復(fù)合物在此溫度未見熔融峰,說明葉黃素以無定形形式存在于粉末顆粒中,表明紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的形成。

        表2為紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的熱力學(xué)參數(shù)。與紅豆蛋白相比,對(duì)照組的Tp由108.34 ℃下降至101.10 ℃,ΔH從283.90 J/g減少至270.90 J/g,說明紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的變性溫度降低,在變性時(shí)所需的熱量減少。超聲處理后復(fù)合物的Tp和ΔH進(jìn)一步降低,但是Tp下降得并不顯著(P>0.05),而ΔH顯著下降(P<0.05),且在240 W超聲處理10 min(處理5)時(shí)Tp和ΔH達(dá)到最低,這可能與此超聲條件下較高的結(jié)合率有關(guān)。此外,Nazari等[15]對(duì)超聲處理谷子蛋白的功能性質(zhì)和結(jié)構(gòu)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)超聲作用也能夠促使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)變得松散和無序化,這有可能利于蛋白質(zhì)功能性質(zhì)的改善。然而,高功率長時(shí)間的超聲處理(360 W、20 min)又會(huì)使ΔH有所上升,這可能是蛋白質(zhì)分子重新聚集導(dǎo)致的[16]。

        表2 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的熱力學(xué)參數(shù)Table 2 Thermodynamic parameters of red bean protein-lutein complexes

        2.3 不同超聲處理下紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的FTIR分析結(jié)果

        由圖3可知,紅豆蛋白的FTIR光譜與紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物不同,主要是在3 100~3 600 cm-1波數(shù)范圍內(nèi),復(fù)合物形成了較寬的強(qiáng)吸收峰,表明這些官能團(tuán)參與了與葉黃素的結(jié)合,形成了穩(wěn)定的蛋白質(zhì)-葉黃素復(fù)合物,這一結(jié)果與Xiang Huan等[17]對(duì)大豆蛋白-姜黃素復(fù)合物的研究結(jié)果類似。葉黃素的加入引起了紅豆蛋白的酰胺II帶從1 572 cm-1移至1 541 cm-1處,說明葉黃素引起了紅豆蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化。Shen Fei等[18]研究卵清蛋白和茶多酚的相互作用發(fā)現(xiàn),在pH 7.5的條件下加入茶多酚后卵清蛋白的酰胺I、II帶發(fā)生藍(lán)移。常用酰胺I帶(1 700~1 600 cm-1)和酰胺II帶(1 600~1 500 cm-1)的紅外吸收光譜研究蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu),酰胺I帶的特征振動(dòng)取決于C=O與N—H之間的氫鍵性質(zhì),酰胺II帶主要是由C—N伸縮振動(dòng)和N—H彎曲振動(dòng)產(chǎn)生的[19]。與紅豆蛋白相比,無論是否經(jīng)過超聲處理,紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的酰胺I帶和酰胺II帶的紅外吸收強(qiáng)度都出現(xiàn)增加,這表明葉黃素分子中的氧原子、羥基與蛋白分子中C=O、C—N基團(tuán)可能通過疏水作用力等結(jié)合[20],說明葉黃素使紅豆蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)有一定程度的改變。

        圖3 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的FTIR光譜Fig. 3 Fourier transform infrared spectra of red bean protein-lutein complexes

        蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的定量關(guān)系與其酰胺I帶的光譜吸收密切相關(guān),通過Peakfit 4.12軟件擬合得到紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的二級(jí)結(jié)構(gòu)含量,結(jié)果見表3。對(duì)照組與紅豆蛋白相比,α-螺旋相對(duì)含量降低4.78%,β-折疊相對(duì)含量降低7.02%,無規(guī)卷曲相對(duì)含量增加17.93%,β-轉(zhuǎn)角相對(duì)含量沒有顯著變化(P>0.05),這說明紅豆蛋白與葉黃素結(jié)合后,蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)變得無序,花青素與大豆分離蛋白的相互作用也是類似結(jié)果[4]。不同超聲處理?xiàng)l件對(duì)紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的二級(jí)結(jié)構(gòu)具有不同影響。在低功率和短時(shí)間(處理1)的超聲處理下,與對(duì)照組相比,復(fù)合物的α-螺旋相對(duì)含量減少,無規(guī)卷曲相對(duì)含量增加,而β-折疊和β-轉(zhuǎn)角相對(duì)含量均沒有顯著變化(P>0.05),這說明低功率和短時(shí)間的超聲處理能夠使復(fù)合物二級(jí)結(jié)構(gòu)由α-螺旋轉(zhuǎn)變?yōu)闊o規(guī)卷曲,這種轉(zhuǎn)變?cè)?40 W超聲處理10 min(處理5)時(shí)效果最明顯。α-螺旋是通過肽鏈的內(nèi)部氫鍵穩(wěn)定,而β-折疊通過肽鍵之間的氫鍵而穩(wěn)定,由于超聲處理導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)展開,氫鍵被削弱,從而使蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)變得無序和靈活[21],這也可能是超聲能夠促進(jìn)紅豆蛋白與葉黃素結(jié)合的原因,進(jìn)而利于蛋白質(zhì)功能性質(zhì)的發(fā)揮[22]。然而,隨著超聲處理的不斷進(jìn)行,在高功率和長時(shí)間的超聲處理下,復(fù)合物的α-螺旋和β-折疊相對(duì)含量降低,β-轉(zhuǎn)角相對(duì)含量開始增加,而無規(guī)卷曲相對(duì)含量變化不顯著(P>0.05),這說明高功率和長時(shí)間的超聲處理可能不利于α-螺旋結(jié)構(gòu)向無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變,而是轉(zhuǎn)變成另一種有序的β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu)。然而,Hu Hao等[7]在對(duì)大豆分離蛋白進(jìn)行超聲波處理時(shí)發(fā)現(xiàn),高功率(400 W和600 W)、長時(shí)間(30 min)超聲處理可以增加α-螺旋相對(duì)含量,減少β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)卷曲相對(duì)含量,與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果矛盾,這可能是超聲條件、溶劑環(huán)境、蛋白質(zhì)類型等不同導(dǎo)致的。

        表3 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的二級(jí)結(jié)構(gòu)含量Table 3 Secondary structure contents of red bean protein-lutein complexes

        2.4 不同超聲處理下紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的表面疏水性

        圖4 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的表面疏水性Fig. 4 Surface hydrophobicity of red bean protein-lutein complexes

        蛋白質(zhì)表面疏水性是表征與極性水環(huán)境接觸的蛋白質(zhì)表面疏水基團(tuán)數(shù)目的指標(biāo),并且與其乳化性質(zhì)密切相關(guān)。由圖4可知,葉黃素與紅豆蛋白的結(jié)合使蛋白質(zhì)表面疏水性顯著下降(P<0.05),這可能是由于葉黃素與蛋白質(zhì)通過疏水鍵結(jié)合,這一現(xiàn)象與對(duì)姜黃素-大豆分離蛋白復(fù)合物的研究結(jié)果[5]一致。經(jīng)超聲處理后的復(fù)合物表面疏水性顯著升高(P<0.05),且高于紅豆蛋白,這表明超聲處理對(duì)紅豆蛋白表面疏水性的增加作用大于葉黃素對(duì)表面疏水性的降低作用。對(duì)β-伴大豆球蛋白[23]和黑豆蛋白[24]進(jìn)行超聲處理時(shí),也觀察到類似現(xiàn)象。隨著超聲功率增加和超聲時(shí)間的延長,表面疏水性呈先升高后降低的趨勢,在240 W超聲處理10 min(處理5)時(shí),復(fù)合物的表面疏水性達(dá)到最大。這表明適當(dāng)?shù)某曁幚碚T導(dǎo)蛋白質(zhì)分子發(fā)生一定程度的解折疊,從而導(dǎo)致最初在分子內(nèi)部的疏水基團(tuán)和區(qū)域暴露于極性環(huán)境的數(shù)量增加;當(dāng)超聲處理過度時(shí),蛋白顆粒之間通過靜電等非共價(jià)作用發(fā)生聚集,導(dǎo)致部分疏水基團(tuán)又被重新包埋。

        2.5 不同超聲處理下紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的巰基含量

        圖5 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的巰基含量Fig. 5 Sulfhydryl contents of red bean protein-lutein complexes

        含有巰基的功能蛋白主要是通過巰基與二硫鍵的相互轉(zhuǎn)化來實(shí)現(xiàn)其功能的。游離巰基對(duì)于維持蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)有重要作用,可參與次級(jí)鍵的形成,其含量能夠反映蛋白質(zhì)的變性程度,但是極容易被氧化成二硫鍵。由圖5可知,葉黃素的結(jié)合使紅豆蛋白游離巰基含量顯著下降(P<0.05),這可能是由于蛋白質(zhì)與葉黃素中羥基基團(tuán)發(fā)生相互作用,導(dǎo)致巰基含量的下降,Sui Xiaonan等[4]在花青素-大豆蛋白復(fù)合物的研究中也觀察到類似的現(xiàn)象。超聲處理可使紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的游離巰基含量顯著升高(P<0.05),這可能是由于超聲處理改變了蛋白質(zhì)的構(gòu)象,破壞了蛋白質(zhì)分子之間的一些二硫鍵,形成新的游離巰基[25]。與未經(jīng)超聲處理的復(fù)合物相比,在較短超聲時(shí)間(5 min)處理時(shí),復(fù)合物的游離巰基含量增加,且隨超聲功率增加而增加,但低于紅豆蛋白的游離巰基含量。當(dāng)超聲條件達(dá)到240 W處理10 min(處理5)以后,復(fù)合物的游離巰基含量高于紅豆蛋白,這表明適當(dāng)?shù)某曁幚砟軌蛴行б种迫~黃素對(duì)紅豆蛋白游離巰基的降低作用,甚至改善其游離巰基的暴露。然而,在較高超聲功率(360 W)和較長超聲時(shí)間(20 min)處理時(shí),復(fù)合物的游離巰基含量相較于處理5、6、7、8組而言又有一定程度的降低,這可能是長時(shí)間高功率的處理使游離出來的巰基被氧化導(dǎo)致的[26]。對(duì)于總巰基含量,經(jīng)不同超聲處理后,其變化并沒有明顯的趨勢,這一現(xiàn)象與Jambrak等[27]的研究結(jié)果一致。

        2.6 不同超聲處理下紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的溶解度

        蛋白質(zhì)與水之間的作用力主要是蛋白質(zhì)中的肽鍵(偶極-偶極相互作用或氫鍵),或氨基酸的側(cè)鏈(解離的、極性甚至非極性基團(tuán))同水分子之間發(fā)生了相互作用,蛋白質(zhì)變性的程度也可以通過蛋白質(zhì)溶解度評(píng)價(jià)。由圖6可知,與葉黃素的結(jié)合能夠顯著提高紅豆蛋白的溶解度(P<0.05),其原因可能歸結(jié)于葉黃素與蛋白質(zhì)之間的非共價(jià)作用使蛋白的表面疏水性下降(圖4)。與對(duì)照組相比,所有經(jīng)超聲處理的紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的溶解度均顯著增加(P<0.05)。從整體上看,隨著超聲時(shí)間延長及超聲功率的增加,紅豆蛋白的溶解度呈先增加后減小的趨勢,當(dāng)超聲條件為240 W處理20 min(處理5)時(shí),復(fù)合物的溶解度達(dá)到最大值(71.48%),這可能與復(fù)合物具有較高的結(jié)合率有關(guān)。這意味著適當(dāng)?shù)某曁幚砜蛇M(jìn)一步提高蛋白質(zhì)-葉黃素復(fù)合物的溶解度。一方面,超聲的空化作用能夠破壞蛋白質(zhì)內(nèi)部的二硫鍵,使蛋白質(zhì)分子展開,分子體積減小,與水的相互接觸面積增大,從而導(dǎo)致溶解度的增加[7];另一方面,超聲處理使蛋白質(zhì)分子發(fā)生變性,強(qiáng)化了蛋白質(zhì)與水的相互作用,因此復(fù)合物的溶解度有所提高。然而,過度超聲處理會(huì)使將蛋白質(zhì)分子聚集在一起的一些物理作用力遭到高強(qiáng)度超聲的破壞,釋放出不溶性蛋白質(zhì)聚集體,導(dǎo)致溶解度降低[28]。

        2.7 不同超聲處理下紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的乳化性及乳化穩(wěn)定性

        圖7 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的乳化性及乳化穩(wěn)定性Fig. 7 Emulsifying capacity and emulsion stability of red bean protein-lutein complexes

        由圖7可知,與未處理的紅豆蛋白相比,紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的乳化性和乳化穩(wěn)定性均有所增加,但是變化不顯著(P>0.05)。蛋白質(zhì)乳化作用與其溶解度和表面疏水性均有關(guān),雖然與葉黃素的結(jié)合使紅豆蛋白的溶解度增加,但會(huì)降低其表面疏水性,這可能是導(dǎo)致其乳化性沒有顯著變化的原因。與對(duì)照組相比,超聲處理會(huì)顯著提高復(fù)合物的乳化性和乳化穩(wěn)定性(P<0.05)。隨著超聲功率的增加和超聲時(shí)間的延長,乳化性先增加后減小。在較低功率(120 W)或較短時(shí)間(5 min)的超聲處理下,復(fù)合物的乳化穩(wěn)定性隨超聲處理時(shí)間延長或超聲功率增加呈增加趨勢;而在高功率(360 W)和長時(shí)間(20 min)的超聲處理下,復(fù)合物的乳化穩(wěn)定性與360 W、10 min和240 W、20 min處理組相比出現(xiàn)了顯著降低(P<0.05)。當(dāng)超聲條件為240 W處理10 min(處理5)時(shí),乳化性和乳化穩(wěn)定性達(dá)到最大,這與此超聲條件下復(fù)合物具有最高的溶解度和表面疏水性有關(guān)。適當(dāng)?shù)某暪β剩?40 W)和處理時(shí)間(10 min)能夠使蛋白質(zhì)空間結(jié)構(gòu)分散,蛋白質(zhì)發(fā)生適度變性,有效暴露出疏水基團(tuán),同時(shí)增強(qiáng)其溶解度,促進(jìn)了蛋白質(zhì)與葉黃素的相互作用,從而使乳化性和乳化穩(wěn)定性提高[29]。此外,此超聲條件下復(fù)合物的結(jié)構(gòu)更加松散、熱穩(wěn)定性更低,二級(jí)結(jié)構(gòu)更加無序和靈活,這也可能是導(dǎo)致乳化作用增強(qiáng)的原因。然而,高功率(360 W)和長時(shí)間(20 min)的超聲處理會(huì)使蛋白質(zhì)嚴(yán)重變性,產(chǎn)生較多的不溶性蛋白[30]。同時(shí),過度超聲處理使復(fù)合物中蛋白質(zhì)分子重新聚集,使其結(jié)構(gòu)更加緊密和有序,導(dǎo)致其乳化作用降低,與DSC和FTIR分析結(jié)果符合。研究證明不同超聲處理對(duì)大豆蛋白在油-水界面的結(jié)構(gòu)重排分散產(chǎn)生不同的影響,從而表現(xiàn)出不同的乳化性和乳化穩(wěn)定性[27]。

        2.8 起泡性及泡沫穩(wěn)定性分析

        圖8 紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的起泡性及泡沫穩(wěn)定性Fig. 8 Foaming capacity and foam stability of red bean protein-lutein complexes

        由圖8可知,與未處理的紅豆蛋白相比,與葉黃素的結(jié)合不會(huì)使蛋白質(zhì)的起泡性發(fā)生顯著變化(P>0.05)。然而,超聲處理可以顯著提高紅豆蛋白-葉黃素復(fù)合物的起泡性。隨超聲時(shí)間延長或超聲功率增加,在較低功率(120 W)或較短時(shí)間(5 min)的超聲處理下復(fù)合物的起泡性呈增加趨勢;而在較長時(shí)間(20 min)時(shí),復(fù)合物的起泡性又顯著降低(P<0.05),同時(shí)在功率240W、10 min處理下起泡性最大,這說明適當(dāng)?shù)某曁幚砟軌蛴行Ц纳茝?fù)合物的起泡性。這可能是由于超聲作用使蛋白質(zhì)內(nèi)部疏水基團(tuán)暴露,在提高表面疏水性的同時(shí)降低了氣-水界面的表面張力[31]。畢爽等[32]研究指出蛋白質(zhì)經(jīng)超聲處理解聚成小分子亞基,增加了氣-水界面的蛋白分子數(shù)目,導(dǎo)致起泡能力提高。而高功率和長時(shí)間的超聲作用使復(fù)合物中蛋白質(zhì)發(fā)生聚集,導(dǎo)致其起泡性的降低。此外,復(fù)合物起泡性的變化也可能與超聲作用引起其結(jié)構(gòu)改變有關(guān),這在本實(shí)驗(yàn)熱穩(wěn)定性和二級(jí)結(jié)構(gòu)的分析中可以得到證明。紅豆蛋白與葉黃素形成復(fù)合物后泡沫穩(wěn)定性沒有顯著變化(P>0.05),且超聲處理也不會(huì)明顯改善復(fù)合物的泡沫穩(wěn)定性,這與大豆蛋白[13]和蛋清蛋白[25]經(jīng)超聲處理的研究結(jié)果一致。然而,Tan等[33]指出隨著超聲功率增加和超聲時(shí)間的延長,乳清蛋白泡沫穩(wěn)定性增加,產(chǎn)生這種差異的原因可能與蛋白質(zhì)種類和濃度、分子結(jié)構(gòu)、親水/疏水能力以及超聲處理?xiàng)l件等因素有關(guān)。

        3 結(jié) 論

        超聲處理能夠促進(jìn)紅豆蛋白與葉黃素的結(jié)合,在240 W超聲處理10 min時(shí),結(jié)合率達(dá)到最大(91.82%)。熱特性分析表明紅豆蛋白與葉黃素形成了復(fù)合物,復(fù)合物的形成使峰值溫度(Tp)和熱焓值(ΔH)降低,超聲處理會(huì)使復(fù)合物的Tp和ΔH進(jìn)一步下降,結(jié)構(gòu)變得松散。適當(dāng)?shù)某曁幚頃?huì)使復(fù)合物二級(jí)結(jié)構(gòu)中的α-螺旋轉(zhuǎn)變?yōu)闊o規(guī)卷曲結(jié)構(gòu),無序化增加導(dǎo)致表面疏水性和游離巰基含量升高。功能性質(zhì)分析表明與葉黃素的結(jié)合增加了紅豆蛋白的溶解度,而復(fù)合物的乳化性和乳化穩(wěn)定性以及起泡性和泡沫穩(wěn)定性沒有顯著改變。超聲處理進(jìn)一步改善了復(fù)合物的功能性質(zhì),在240 W超聲處理10 min時(shí),復(fù)合物的溶解度、乳化性、乳化穩(wěn)定性和起泡性達(dá)到最大。然而超聲處理并未對(duì)復(fù)合物的泡沫穩(wěn)定性產(chǎn)生明顯影響。這些功能性質(zhì)的改善可能與蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)變的松散和無序化程度增加有關(guān)。

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