方均燕 宋阿會 佟琰 丁峰 劉英莉
間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)具有多向分化及自我更新能力,可通過自分泌和旁分泌等作用調(diào)控免疫性疾病[1-2]。研究發(fā)現(xiàn),不同來源MSC的免疫調(diào)控功能有差異,其中人臍帶華通膠來源的間充質(zhì)干細(xì)胞(WJ-MSC)具備更好的免疫調(diào)控作用,其表面HLA-ABC分子較少,免疫原性更低,且來源于丟棄的臍帶,不受倫理限制,更適合應(yīng)用于臨床治療[3]。MSC分泌的外泌體在其旁分泌機制中發(fā)揮重要作用[4]。外泌體(Exosome)是一種由雙層磷脂分子層包裹的細(xì)胞外囊泡,直徑在30~150 nm。外泌體不僅是細(xì)胞排泄的代謝廢物,其中還包含多種蛋白質(zhì)、核酸、磷脂等物質(zhì),也能夠發(fā)揮細(xì)胞間通訊、細(xì)胞遷移、血管新生、腫瘤生長等多種功能[5-6]。外泌體存在于血液、尿液、唾液等體液中,性質(zhì)穩(wěn)定,不易被破壞,可通過超速離心、蔗糖差速離心、PEG沉淀等方法分離獲得。外泌體常見的表面標(biāo)志物包括CD9、CD63、CD81等,在透射電鏡(TEM)下可觀察到外泌體具有杯盞狀結(jié)構(gòu)[7]。研究發(fā)現(xiàn),通過炎癥刺激(如IL-1β、LPS)處理MSC,能夠增強其外泌體的免疫調(diào)控能力[8-9]。因此,通過改變WJ-MSC的培養(yǎng)條件,有可能進一步增加其免疫調(diào)節(jié)能力。
膿毒癥是一種由于宿主對感染的免疫反應(yīng)失調(diào)引起的臨床綜合征,由于缺乏早期的診斷和治療,易發(fā)展至多器官功能障礙而危及生命。針對嚴(yán)重的膿毒癥,目前尚缺乏特效的治療手段[10]。研究發(fā)現(xiàn),膿毒癥的發(fā)生以細(xì)菌內(nèi)毒素引起的免疫失調(diào)為主,內(nèi)毒素激活巨噬細(xì)胞后,促使其分泌多種促炎性細(xì)胞因子(如IL-6、TNF-α、IL-1β等),促進巨噬細(xì)胞轉(zhuǎn)化為促炎型巨噬細(xì)胞(M1),進一步加重組織器官的損傷[11-12]。體外研究表明,用LPS刺激THP-1巨噬細(xì)胞能夠模擬體內(nèi)炎癥反應(yīng)發(fā)生的啟動過程,有助于探究預(yù)處理后的WJ-MSC在這一炎癥反應(yīng)中發(fā)揮的作用。膿毒癥患者外周血中的外泌體在膿毒癥的發(fā)展中發(fā)揮細(xì)胞間通訊作用,參與調(diào)節(jié)多種免疫細(xì)胞的功能,因而有助于膿毒癥的早期診斷和監(jiān)測[13-14]。研究發(fā)現(xiàn),膿毒癥患者外周血中的外泌體攜帶的hsa-miR-7-5p能夠直接作用于抗凋亡基因,改善T細(xì)胞的凋亡,降低膿毒癥大鼠死亡率[15]。結(jié)合既往研究,提示膿毒癥大鼠外周血中的外泌體可能具備免疫特性,有望改善WJ-MSC的免疫調(diào)控能力。
本研究探索經(jīng)膿毒癥大鼠外周血來源的外泌體預(yù)處理后的WJ-MSC的細(xì)胞活性、凋亡、細(xì)胞因子的變化,并與LPS刺激下的THP-1細(xì)胞共培養(yǎng),檢測巨噬細(xì)胞的炎癥因子變化,以明確膿毒癥大鼠外周血外泌體對WJ-MSC的細(xì)胞增殖、凋亡及免疫調(diào)節(jié)特性的影響。
6~8周雄性SD大鼠,體質(zhì)量約220 g(上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院中心實驗室)。
外泌體提取試劑盒(QIAGEN,美國),αMEM培養(yǎng)基、1640完全培養(yǎng)基、10%胎牛血清、1%青霉素和鏈霉素(Hyclone,美國),PKH67(Sigma,美國),SYRB試劑盒(Takara,美國)。
細(xì)胞超凈工作臺(Thermo,美國),超速離心機、流式細(xì)胞儀(Beckman,美國),倒置熒光顯微鏡(Nikon,日本),酶標(biāo)儀(BioTek,美國),實時熒光定量PCR儀(ABI,美國)。
實驗組(n=6):SD大鼠麻醉后打開腹腔,暴露腸道,用棉簽勾出盲腸,將糞便擠壓至盲腸末端,在盲腸末端1/2至2/3間用1號縫線進行結(jié)扎,然后用4號針頭在結(jié)扎盲端處刺穿盲腸,并擠出少許糞便,然后將盲腸回納至腹腔,逐層縫合腹部皮膚。
對照組(n=6):僅進行腹腔打開、盲腸勾出等步驟,不結(jié)扎穿刺盲腸。
造模36 h后,麻醉兩組大鼠,每只大鼠心臟采血5 mL(每組總30 mL),2 000 r/min、4 ℃離心15 min,吸取上層血清,采用外泌體提取試劑盒提取外泌體,電鏡檢查外泌體的形狀,Western-blot檢測外泌體表面標(biāo)志物CD81和CD63的表達(dá)。
人臍帶華通膠間充質(zhì)干細(xì)胞(WJ-MSC)由上海市第一婦嬰保健院王凱教授課題組捐贈,已完成該原代細(xì)胞株的鑒定[16]。WJ-MSC的培養(yǎng)采用αMEM培養(yǎng)基,添加10%胎牛血清、1%青霉素和鏈霉素。取第3~7代WJ-MSC細(xì)胞以104個/孔接種至96孔板或106個/孔接種于六孔板,待其長至80%融合時分別加入對照組及實驗組大鼠外周血外泌體(20 μg/mL),孵育24 h后,取上清或細(xì)胞用作后續(xù)CCK8、Annexin-V-FITC/PI流式細(xì)胞檢測。
兩組外泌體分別用PKH67標(biāo)記4 h,PBS洗去多余的染料。將WJ-MSC細(xì)胞與標(biāo)記的外泌體共孵育24 h,然后用DAPI染W(wǎng)J-MSC細(xì)胞核,鬼筆環(huán)肽染細(xì)胞骨架,使細(xì)胞核及骨架可視化。熒光顯微鏡觀察染色的WJ-MSC外泌體(綠色)、細(xì)胞核(藍(lán)色)及細(xì)胞骨架(紅色)的位置。
人單核巨噬細(xì)胞(THP-1細(xì)胞)來源于中國細(xì)胞庫,采用1640完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清,1%青霉素和鏈霉素)進行培養(yǎng),先用佛潑酯(PMA,160 ng/mL)誘導(dǎo)成貼壁狀態(tài),再用LPS(100 ng/mL)進行培養(yǎng),或?qū)⒏鹘M外泌體預(yù)處理后的WJ-MSC聯(lián)合LPS與其共培養(yǎng)。實驗分為4組:未處理的THP-1細(xì)胞(空白組)、THP-1細(xì)胞+LPS(LPS組)、THP-1細(xì)胞+LPS+對照組外泌體(LPS+Ne組)、THP-1細(xì)胞+LPS+實驗組外泌體(LPS+Ce組)。
取經(jīng)過各組外周血外泌體預(yù)處理的WJ-MSC(1×106個),未處理的WJ-MSC作為空白對照組。實驗分為3組:未處理的WJ-MSC(空白對照組)、對照組外泌體預(yù)處理的WJ-MSC(Ne組,即對照組)、實驗組外泌體預(yù)處理的WJ-MSC(Ce組,即實驗組)。各孔加入10 μL CCK8,37 ℃孵育4 h后,用微孔酶標(biāo)儀檢測各孔在450 nm處的吸光值,Graphpad 5分析各組差異。
取經(jīng)過各組外周血外泌體預(yù)處理的WJ-MSC(1×106個),未處理的WJ-MSC作為空白對照組。實驗分為3組:未處理的WJ-MSC(空白對照組)、對照組外泌體預(yù)處理的WJ-MSC(Ne組,即對照組)、實驗組外泌體預(yù)處理的WJ-MSC(Ce組,即實驗組)。用0.25%胰蛋白酶消化各孔細(xì)胞,其余各孔細(xì)胞消化后1 000 r/min離心5 min,舍棄上清,用100 μL Annexin Buffer重懸后加入4 μL Annexin V,避光孵育10 min,加入4 μL PI,立即上機檢測,結(jié)果用CytExpert軟件進行分析。
分別取3組WJ-MSC細(xì)胞與4組THP-1細(xì)胞,用TRIzol法提取各組細(xì)胞總mRNA,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,接著用SYRB試劑盒進行實時定量PCR檢測,以GAPDH為內(nèi)參基因,檢測細(xì)胞因子(IL-6、IL-10、TNF-α、IL-1β)的表達(dá)。計算各組各細(xì)胞因子的RQ值(表1)。
所有實驗均用GraphPad軟件統(tǒng)計分析三次獨立實驗結(jié)果,計算各組間均值和標(biāo)準(zhǔn)差,多組間差異比較用ANOVA one-way檢驗,P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
為了確定分離提取大鼠外周血來源外泌體的方法可靠,本實驗使用電鏡拍攝各組外泌體的形狀,Western-blot檢測其表面標(biāo)志物,外泌體吞噬實驗檢測兩組外泌體被WJ-MSC吞噬的能力。電鏡結(jié)果顯示,對照組和實驗組外泌體形狀一致,似杯盞狀,直徑相似。Western-blot結(jié)果顯示對照組和實驗組的外泌體均能表達(dá)外泌體表面標(biāo)志物CD63和CD81(圖1 A、B)。
兩組外泌體經(jīng)PKH67標(biāo)記(綠色)后,與WJ-MSC細(xì)胞共孵育。結(jié)果顯示,標(biāo)記了PKH67的外泌體(綠色)圍繞著DAPI染色的細(xì)胞核(藍(lán)色),這表明兩種外泌體類型都能被WJ-MSC細(xì)胞攝取,且吞噬能力無明顯差異(圖1C)。
流式細(xì)胞儀檢測發(fā)現(xiàn),與空白對照組相比,Ne組和Ce組中WJ-MSC的凋亡細(xì)胞比例均明顯下降(P<0.01),但Ne組和Ce組之間無明顯差異(P>0.05)。CCK8結(jié)果顯示,與空白對照組相比,Ne組和Ce組中WJ-MSC的細(xì)胞增殖無明顯差異(P>0.05)(圖2)。
qPCR結(jié)果表明,與空白對照組相比,Ne組IL-10的mRNA表達(dá)降低,Ce組IL-10的mRNA表達(dá)則增加,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);且與Ne組相比,Ce組IL-10的mRNA表達(dá)也明顯增加(P<0.01);與空白對照組相比,Ne組WJ-MSC細(xì)胞中TNF-α的mRNA表達(dá)明顯增加(P<0.01);與Ne組相比,Ce組中TNF-α的mRNA表達(dá)降低,兩組之間具有統(tǒng)計學(xué)差異(P<0.05)(圖3)。
A:電鏡下外泌體的形狀;B:Western-blot檢測外泌體上CD81和CD63的表達(dá);C:熒光顯微鏡下觀察外泌體被WJ-MSC細(xì)胞的攝取a: The shape of exosomes observed under electron microscope; B: Expressions of CD81 and CD63 on exosomes detected by Western-blot; C: The uptake of exosomes by WJ-MSC observed under fluorescence microscope圖1 各組外泌體的鑒定Fig. 1 Identification of exosomes of each group
A、B:流式細(xì)胞儀檢測外泌體處理WJ-MSC后的凋亡細(xì)胞比例;C:CCK8檢測外泌體對WJ-MSC細(xì)胞活性的影響 A, B: The proportion of apoptotic cells after exosome treated with WJ-MSC detected by flow cytometry; C: The effects of exosomes on the activity of WJ-MSC detected by CCK8圖2 各組外泌體對WJ-MSC細(xì)胞增殖及凋亡的影響(**: 與空白對照組相比,P<0.01)Fig. 2 Effects of exosomes on proliferation and apoptosis of WJ-MSC in each group (**: compared with blank control group, P<0.01)
A:IL-10;B:TNF-α(**: 與空白對照組相比,P<0.01; &: 與Ne相比,P<0.05; &&: 與Ne相比,P<0.01)a: IL-10; B: TNF-α(**: compared with blank control group, P<0.01; &: compared with Ne group, P<0.05; &&: compared with Ne group, P<0.01)圖3 qPCR檢測各組外泌體對WJ-MSC中細(xì)胞因子mRNA水平的影響Fig. 3 Effects of exosomes on mRNA levels of cytokines in WJ-MSC detected by qPCR of each group
qPCR的結(jié)果顯示,與空白對照組相比,LPS組、LPS+Ne組和LPS+Ce組IL-10的mRNA水平均顯著升高(P<0.01);與LPS組相比,LPS+Ne組和LPS+Ce組中IL-10的mRNA水平略有升高,但無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05);LPS+Ne組和LPS+Ce組之間IL-10的mRNA水平無明顯差異(P>0.05)。
與空白對照組相比,LPS組、LPS+Ne組和LPS+Ce組IL-6的mRNA水平均明顯升高(P<0.05);LPS+Ne組和LPS+Ce組較LPS組該指標(biāo)均有所增加,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);LPS+Ne組和LPS+Ce組之間IL-6的mRNA水平無明顯差異(P>0.05)。
與空白對照組相比,LPS組、LPS+Ne組和LPS+Ce組IL-1β的mRNA水平均顯著升高(P<0.01);與LPS組相比,LPS+Ne組和LPS+Ce組中IL-1β的mRNA水平均顯著下降(P<0.01);但是,LPS+Ne組和LPS+Ce組之間的IL-1β的mRNA水平無明顯變化(P>0.05)。
與空白對照組相比,LPS組TNF-α的mRNA水平明顯升高(P<0.01);與LPS組相比,LPS+Ne組和LPS+Ce組TNF-α的mRNA水平均明顯下降(P<0.01);但LPS+Ne組和LPS+Ce組之間TNF-α水平無明顯差異(P>0.05)(圖4)。
A:IL-10;B:IL-6;C:IL-1β;D:TNF-α(**: 與空白對照組相比,P<0.01; &&: 與LPS組相比,P<0.01)a: IL-10; B: IL-6; C: IL-1β; D: TNF-α(**: compared with blank control group, P<0.01; &&: compared with LPS group, P<0.01)圖4 qPCR檢測不同預(yù)處理后WJ-MSC對LPS誘導(dǎo)下THP-1細(xì)胞中細(xì)胞因子mRNA水平的影響Fig. 4 qPCR was used to detect the effects of different pretreatment of WJ-MSC on the mRNA levels of cytokines in THP-1 cells induced by LPS
外泌體作為一種細(xì)胞外囊泡,由供體細(xì)胞通過胞吐方式分泌,再以胞吞形式被受體細(xì)胞攝取,釋放攜帶的多種物質(zhì),調(diào)節(jié)受體細(xì)胞的多項功能[17]。本研究提取了兩組大鼠外周血來源的外泌體,并通過Western-blot驗證了外泌體標(biāo)志物的表達(dá),電鏡下觀察到類似杯盞狀結(jié)構(gòu),證明了提取方法的可靠性及穩(wěn)定性。通過外泌體吞噬實驗,驗證了兩種外泌體均能夠被WJ-MSC細(xì)胞攝取。目前研究認(rèn)為,膿毒癥外周血來源的外泌體作為一個混合物,包含來自免疫細(xì)胞、血細(xì)胞等多種類型細(xì)胞的信息,能夠發(fā)揮促血栓形成、促炎癥、介導(dǎo)內(nèi)皮功能障礙或抗炎等作用,由病原微生物種類、宿主免疫狀態(tài)等決定其發(fā)揮保護或損傷作用[18-20]。Exline等[21]認(rèn)為,膿毒癥外周血來源的外泌體能夠釋放caspase-1,誘導(dǎo)淋巴細(xì)胞凋亡。本研究發(fā)現(xiàn),膿毒癥外周血來源的外泌體也能夠抑制WJ-MSC的細(xì)胞凋亡,但不影響其細(xì)胞增殖活性,具體作用機制仍需進一步研究。
既往研究提示,MSC經(jīng)缺氧、炎性因子、細(xì)菌及藥物等預(yù)處理后,所得外泌體具有更強的免疫調(diào)控能力,如LPS預(yù)處理后的MSC-EV,具有更加優(yōu)化的免疫調(diào)控能力,可以促使巨噬細(xì)胞向M2型極化增加,降低促炎性細(xì)胞因子水平(IL-1β,IL-6和TNF-α),降低膿毒癥死亡率[9]。另外還發(fā)現(xiàn),經(jīng)過膿毒癥外周血來源的外泌體預(yù)處理后的單核細(xì)胞,在LPS刺激下,分泌的TNF-α含量顯著降低,提示其能夠增強單核細(xì)胞的免疫耐受能力[22]。以上結(jié)果提示膿毒癥外周血外泌體有望成為增強WJ-MSC的免疫能力的刺激物。與在淋巴細(xì)胞中的研究發(fā)現(xiàn)類似,本研究發(fā)現(xiàn),膿毒癥大鼠外周血來源的外泌體能夠促進WJ-MSC細(xì)胞中抗炎因子(IL-10)的mRNA水平表達(dá),下調(diào)促炎性因子(TNF-α)的mRNA水平表達(dá),可能增強了WJ-MSC的免疫調(diào)控能力。
MSC通過自分泌或者旁分泌的方式,分泌細(xì)胞因子、趨化因子以及外泌體等,參與多種免疫性疾病的調(diào)節(jié)。為了進一步驗證兩種外泌體對WJ-MSC免疫調(diào)控能力的影響,我們利用細(xì)胞共培養(yǎng)體系,將經(jīng)過兩種外泌體預(yù)處理的WJ-MSC與LPS誘導(dǎo)下THP-1細(xì)胞共培養(yǎng),檢測THP-1細(xì)胞中細(xì)胞因子的mRNA水平表達(dá)變化。結(jié)果表明,經(jīng)過兩種外泌體預(yù)處理后的WJ-MSC均能夠降低THP-1細(xì)胞中促炎性因子(TNF-α、IL-1β)的mRNA水平,但兩組之間無明顯差異,表明膿毒癥大鼠外周血外泌體并不能更好地逆轉(zhuǎn)LPS刺激的THP-1細(xì)胞的急性炎癥反應(yīng)。
本研究首次驗證了膿毒癥外周血外泌體能夠抑制WJ-MSC的細(xì)胞凋亡,上調(diào)IL-10的表達(dá),抑制TNF-α的表達(dá),但并不能增強其對LPS刺激下THP-1細(xì)胞中炎性因子的抑制作用。但是,膿毒癥外周血外泌體發(fā)揮抑制WJ-MSC細(xì)胞凋亡及細(xì)胞因子水平的具體機制仍需進一步探究。此外,仍需探究經(jīng)兩種外泌體預(yù)處理的WJ-MSC對LPS誘導(dǎo)下THP-1細(xì)胞的吞噬等功能的影響。