萬鳴宏 羅富里 晏子友

1江西中醫(yī)藥大學（南昌330006）；2江西中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院（南昌330006）

許多慢性腎臟病進入腎衰竭階段都伴有腎間質纖維化（renal interstitial fibrosis，RIF）的病理改變，嚴重危害患者健康。目前治療方法多為抑制RIF的發(fā)展，達到延緩慢性腎臟病進展的治療初衷。周細胞-肌成纖維細胞轉分化（pericyte-myofibroblast transition，PMT）是RIF 形成過程中的重要環(huán)節(jié)[1-2]。周細胞是一種血管壁細胞，研究表明，腎臟中存在大量周細胞，而周細胞與腎臟病關系密切，例如間質纖維化和糖尿病腎病[3]。周細胞可調節(jié)微血管的穩(wěn)定性與滲透性、調節(jié)血管的新生與成熟，并且還是一種具有多種分化潛能的干細胞，可以分化成成纖維細胞等[4]。研究表明腎損傷后周細胞與肌成纖維細胞（myofibroblast，MF）的形成密切相關[5]。周細胞與內(nèi)皮細胞分離使腎小管周圍毛細血管穩(wěn)定性下降，導致腎小管血流量減少、供血不足以及細胞外基質（extracellular matrix，ECM）沉積，促進RIF 形成[6]。研究表明，α-平滑肌肌動蛋白（α-SMA）可作為MF的標記物，且α-SMA的表達量與ECM的表達量呈正相關[7]。血小板衍生生長因子受體（PDGFR）主要表達于周細胞、腎小球系膜細胞等[8]，且血小板衍生生長因子（PDGF）信號通路對周細胞的募集及轉分化非常重要[9]。此外還有研究發(fā)現(xiàn)，干預PDGF 信號通路可使腎臟中周細胞數(shù)量下降，α-SMA表達水平降低[10]。PDGF 通路的激活使神經(jīng)/膠質細胞2型硫酸軟骨素糖蛋白（NG-2）膠質細胞增多，NG-2的表達增加[11]。腎衰泄?jié)釡鶕?jù)RIF的中醫(yī)病機“虛、濕、瘀、毒”進行研制，本課題組之前的研究結果表明腎衰泄?jié)釡哂醒泳徛阅I衰竭的作用[12-13]。但機制尚不明確。本研究建立單側輸尿管梗阻（UUO）大鼠模型，觀察腎衰泄?jié)釡捌洳鸱礁深APMT 過程中相關蛋白PDGFR-β、NG-2、α-SMA表達的程度，討論腎衰泄?jié)釡捌洳鸱綄MT的影響，為臨床上防治RIF 提供治療依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 實驗動物選取1個月齡健康雌性SD 大鼠（SPF級）96只，體質量180～190 g[浙江省醫(yī)學科學院實驗動物中心培養(yǎng)，合格證號SCSK（浙）20170001]進行實驗。

1.2 藥物及試劑將實驗所需中藥（由江西中醫(yī)藥大學中藥飲片廠提供）常規(guī)水煎、濃縮，制成腎衰泄?jié)釡珴饪s劑，濃縮劑每1 mL 含生藥量1.2 g（劑量均相當于每1 kg 成人劑量10倍，依據(jù)沈映君《中藥藥理學》中藥實驗用藥換算大鼠用藥劑量換算）。中藥組及貝那普利組均按《中藥藥理學》給藥。各中藥組組成：補虛方組（生黃芪30 g、巴戟天10 g）、袪邪方組（生牡蠣30 g、蒲公英15 g、丹參15 g、生大黃（后下）10 g、槐花10 g）、腎衰泄?jié)釡M（生黃芪30 g、生牡蠣30 g、丹參15 g、蒲公英15 g、巴戟天10 g、生大黃10 g（后下）、槐花10 g）。水煎濃縮后真空密封包裝，每袋150 mL，5℃冰箱保存?zhèn)溆?。北京諾華制藥有限公司提供貝那普利（商品名：洛丁新）。福州邁新生物技術開發(fā)有限公司提供DAB 顯色試劑盒、免疫組化超敏SP 試劑盒、HE染色試劑盒、Masson染色試劑盒；北京中杉金橋生物技術有限公司提供磷酸緩沖液、檸檬酸緩沖液。

1.3 方法

1.3.1 分組與造模大鼠正常喂養(yǎng)7 d，取尿蛋白陰性大鼠用于實驗。按體質量隨機分為腎衰泄?jié)釡M、補虛方組、袪邪方組、貝那普利組、模型組、假手術組，每組16只。腎衰泄?jié)釡M、祛邪方組、補虛方組、貝那普利組、模型組建立UUO 動物模型，制作參照文獻制作[14]，假手術組不作處理。

1.3.2 動物給藥腎衰泄?jié)釡M按照1.2 g/mL 比例配制腎衰泄?jié)釡珴饪s劑給藥，即劑量為12 g/（kg·d）體質量灌胃；祛邪方組按照0.6 g/mL、補虛方組按照0.6 g/mL 比例配制腎衰泄?jié)釡珴饪s劑給藥，即劑量為6 g/（kg·d）體質量灌胃；貝那普利組大鼠予以貝那普利1.5 mg/（kg·d）體質量灌胃；模型組及假手術組大鼠予等量生理鹽水灌胃。術后7、14 d 隨機選取大鼠8只，給藥2 h 后腹主動脈取血并處死，立即將血液滴入含0.4 mL 4%EDTA-Na2的抗凝管中，250 g 離心10 min 并分離血清，存于-20℃冰箱內(nèi)。

1.4 檢測指標腎組織學檢查：取標本后予4%福爾馬林固定，脫水、石蠟包埋后切片，厚度大約為4 μm。行HE 及Masson染色后置于光鏡下觀察，進行UUO 腎小管損傷評估。

1.4.2 Western blot分析取150 mg 腎組織標本置于預冷的RIPA 裂解緩沖液中冰浴超聲裂解，在4℃下按12 000 r/min 離心10 min，取上清液用Bradford 法測蛋白濃度。測完后分裝蛋白并在95℃下煮沸10 min 使其變性，-20℃下保存，供Western blot 測定使用。使用抗體如下：α-SMA（1∶2 000）、NG-2（1∶1 000）、PDGFR-β（1∶500）、β-actin（1∶1 000），抗體均購自美國Santa Cruz公司。以βactin為內(nèi)參照進行帶灰度分析。將目標帶與參考帶的灰度比值作為蛋白質的相對表達，采用Image J 1.8 軟件進行圖片處理。北京普利萊生物科技有限公司提供RIPA 裂解液、Bradford 蛋白濃度測定試劑盒。

1.5 腎小管損傷程度評分及纖維化指數(shù)測定

1.5.1 HE染色分析光學顯微鏡單盲觀察視野內(nèi)腎小管病變（腎小管擴張、萎縮，紅細胞管型、蛋白管型、腎間質水腫等）數(shù)目。腎小管損傷指數(shù)按Banff 分級（0～3級）計分評定。計分標準：無明顯病理變化（腎小管病變數(shù)目0個）計0分；輕度病理改變（累及小管數(shù)目＜3個）計1分；中度病理改變（累及小管數(shù)目3～5個）計2分；重度病理改變（累及小管數(shù)目＞5個）計3 分。

1.5.2 Masson染色分析200倍視野下選取每只大鼠5 張組織切片，每張切片選取5個互不重疊的腎小管間質視野，觀察視野中染色面積占總視野面積的百分比，并取平均值。評分標準：陽性面積＜2%時計0分；陽性面積在2%～10%時計1分；陽性面積在11%～20%時計2分；陽性面積在21%～30%時計3分；陽性面積＞30%時計4 分。

1.6 統(tǒng)計學方法實驗所得數(shù)據(jù)用SPSS 23.0軟件包處理、分析，數(shù)據(jù)結果用（）表示，組間比較用方差分析與獨立樣本t檢驗。P＜0.05時表示差異具有統(tǒng)計學意義。

2 結果

2.1 各組大鼠腎臟病理變化光鏡下HE和Masson染色（圖1-2）。術后第7、14 d時，除假手術組外，各組術后均有炎癥表現(xiàn)；隨梗阻時間延長，除假手術組外，各組可見纖維化，模型組更為明顯，腎小管可見水腫、炎癥細胞，部分鈣化、壞死；假手術組腎臟結構未發(fā)生變化。各治療組較模型組有所改善。腎衰泄?jié)釡M改善明顯，病變損傷較輕。治療組較模型組效果好，腎衰泄?jié)釡M較其他中藥組及貝那普利組效果相對較好。

圖1 各組藥物對大鼠腎組織HE染色結果影響（HE，×200）Fig.1 Effects of each group of drugs on HE staining results in rat kidney tissue（HE，×200）

圖2 各組藥物對大鼠腎組織Masson染色結果影響（Masson，×200）Fig.2 Effect of each group of drugs on Masson staining results in rat kidney（Masson，×200）

2.2 各組大鼠術側腎臟HE評分及Masson評分比較術后第7、14天時，假手術組大鼠術側腎臟HE評分及Masson評分無明顯變化；模型組大鼠術側腎臟HE評分及Masson評分顯著升高，較假手術組高（P＜0.05）；各治療組腎臟HE評分及Masson評分均明顯低于模型組（P＜0.05，表1）。

2.3 Western Blot 法檢測UUO 大鼠腎組織中PDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白的表達術后第7天時，模型組大鼠PDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白表達較假手術組增多（P＜0.05），術后第14天時，模型組大鼠蛋白增多更明顯（P＜0.05）。第7、14天時，各治療組PDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白的表達有所下降，但較假手術組高。治療組中腎衰泄?jié)釡MPDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白減少較其他組明顯（P＜0.05，圖3）。

3 討論

許多因子[15]和信號通路[16-18]可加速RIF 進展，其中PMT是加速腎纖維化形成的關鍵[19]?，F(xiàn)在公認腎纖維化時PMT 使腎臟ECM 積累增多，且α-SMA 蛋白表達增多，與本實驗中α-SMA 蛋白表達隨大鼠腎臟纖維化程度加重逐漸增多基本一致。信號通路與腎纖維化的研究近年來趨于成熟[20]，但中藥復方對信號通路的影響研究結果較少，本實驗從該角度，運用中藥復方對PMT 進行干預，觀察到PDGFR-β蛋白表達上調，說明腎衰泄?jié)釡蓪DGF 通路產(chǎn)生影響，進而抑制PMT；另有研究指出，PDGF 通路還能調控NG-2 膠質細胞的增殖，使NG-2蛋白表達增多[21]，本實驗觀察到腎衰泄?jié)釡MNG-2蛋白表達較其他組少，與其結果相似。本實驗以PMT為研究RIF的切入點，通過觀察腎衰泄?jié)釡捌洳鸱綄MT 過程中α-SMA、PDGFRβ、NG-2蛋白表達的影響，提出抑制PMT 可能為腎衰泄?jié)釡捌洳鸱窖泳廟IF 發(fā)展的機制，為日后治療提供新思路。

表1 各組大鼠HE評分及Masson評分Tab.1 HE scores and Masson scores of rats in each group±s

表1 各組大鼠HE評分及Masson評分Tab.1 HE scores and Masson scores of rats in each group±s

注：與同時期模型組及各治療組比較，△P＜0.05；與同時期模型組及各治療組比較，#P＜0.05；與同時期不同治療組比較，*P＜0.05

組別假手術組模型組腎衰泄?jié)釡M祛邪組補虛組貝那普利組天數(shù)（d）7 14 7 14 7 14 7 14 7 14 7 14只數(shù)8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 HE評分0.21±0.12△0.23±0.11△1.69±0.56 2.42±0.53 1.11±0.23*1.52±0.33*1.32±0.29 1.59±0.34 1.33±0.32 1.61±0.37 1.34±0.33 1.67±0.32 Masson評分0.34±0.11△0.34±0.12△1.61±0.42 2.20±0.47＃0.74±0.22*1.02±0.32*0.83±0.18 1.22±0.39 0.88±0.18 1.25±0.49 0.87±0.19 1.23±0.42

圖3 各組大鼠腎組織α-SMA、NG-2、PDGFR-β蛋白的表達Fig.3 Expression of α-SMA，NG-2，PDGFR-β protein in kidney tissue of rats in each group

長期臨床實踐證明腎衰泄?jié)釡_實能延緩腎纖維化進程，保護腎功能[12-13]，但作用機制尚不明確。RIF 病機為“虛、濕、瘀、毒”，關鍵病機為“脾腎虧虛、濕毒內(nèi)蘊、瘀血阻滯”，為本虛標實之證[22]，治療上需標本兼顧，腎衰泄?jié)釡且来酥畏ㄑ兄?。在疾病前期，多以邪實（濕、瘀、毒）致病為主，活血化瘀、祛濕泄?jié)釣樵撈诨局畏?，方中生牡蠣軟堅除濕，下泄?jié)穸?，蒲公英清熱解毒，丹參活血化瘀，生大黃瀉濁毒、破積滯、化瘀血，槐花清瘀熱；到疾病晚期，正氣消耗過多，則以本虛為主，治以扶正、補腎，方中黃芪補氣升陽利尿，巴戟天補腎助陽化氣；祛邪與補虛的聯(lián)合運用，標本兼顧，體現(xiàn)了中醫(yī)治病的整體觀念。近年來，PMT 已成為RIF的研究熱點[23]，但國外對中藥復方抑制PMT的研究相對較少。目前本實驗通過研究腎衰泄?jié)釡捌洳鸱綄MT 相關蛋白的影響，尋找可能的作用機制。貝那普利可減輕RIF的程度，以其為對照組可以更好地觀察腎衰泄?jié)釡寞熜А１緦嶒灲Y果表明，第7、14天時，各治療組及貝那普利組治療后PDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白的表達較模型組降低，較假手術組升高；各治療組及貝那普利組治療后Masson、HE評分較模型組降低，較假手術組升高；說明各治療組及貝那普利組均可抑制PDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白的表達，改善RIF的進展。腎衰泄?jié)釡M各項指標優(yōu)于其余治療組，說明整體治療效果優(yōu)于單獨治療，標本兼顧可以起到更好的治療效果。本實驗局限在慢性腎臟病發(fā)病機制復雜，腎衰泄?jié)釡锌赡芨深A多條信號通路達到延緩RIF 作用，目前尚未詳細探討，缺乏整體性對比；且由于研究樣本數(shù)量較少，具體作用機制尚不明確，本課題組將繼續(xù)完善相關研究。

綜上所述，腎衰泄?jié)釡捌洳鸱綔p輕RIF的機制可能是通過減少PDGFR-β、α-SMA、NG-2蛋白的表達來抑制PMT的過程，達到延緩RIF 發(fā)展的作用。