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        美洲型豬繁殖與呼吸綜合征病毒RT-LAMP 可視化快速檢測方法的建立與應(yīng)用

        2020-06-08 11:23:30
        中國動物檢疫 2020年6期
        關(guān)鍵詞:檢測方法

        (北京市動物疫病預(yù)防控制中心,北京 102629)

        豬繁殖與呼吸綜合征(porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)引起的一種以懷孕母豬繁殖障礙、哺乳仔豬呼吸困難為特征的高度接觸性傳染病,俗稱“豬藍(lán)耳病”。PRRS 1987 年首次暴發(fā)于美國,隨后相繼在加拿大以及歐洲和亞洲國家出現(xiàn),目前已在世界范圍內(nèi)流行[1]?;疾∧肛i通常表現(xiàn)早產(chǎn)、流產(chǎn)以及死胎數(shù)增加等不良臨床癥狀,給養(yǎng)豬業(yè)帶來巨大損失[2]。PRRSV 容易變異、毒株多樣、感染時(shí)間長,因此防控難度較大[3-4]。1995 年我國首次發(fā)現(xiàn)PRRS。2006 年我國全面暴發(fā)了以體溫高、發(fā)病率高、死亡率高為主要臨床特征的豬“高熱病”,而導(dǎo)致該病的病原是高致病性PRRSV(highly pathogenic PRRSV,HPPRRSV)。

        PRRSV 為單股正鏈RNA 病毒。根據(jù)病毒基因組及血清型特性,可將PRRSV 劃分為兩種基因型,即以LV 株為代表的基因1 型(歐洲型)和以VR2332 株為代表的基因2 型(美洲型)。我國主要流行基因2 型(美洲型)毒株。PRRS 的傳播方式主要有接觸傳播、空氣傳播、精液傳播以及垂直傳播,病豬、帶毒豬和患病母豬所產(chǎn)的仔豬,以及被污染的環(huán)境、用具等都是重要的傳染源。各種品種、年齡和用途的豬均可被感染,但以妊娠母豬和1 月齡以內(nèi)的仔豬最易感。40 日齡以內(nèi)仔豬的PRRS 病死率可高達(dá)100%,育肥豬病死率約為50%;在一些地區(qū)的豬場,PRRS 的發(fā)病率可接近100%,病死率為30%~50%,有的可達(dá)80%以上[5]。PRRS 發(fā)病沒有明顯的季節(jié)性,各個(gè)季節(jié)均可發(fā)病,而且發(fā)病迅速,短期內(nèi)便可波及全群或鄰近群。因此,在臨床上我國迫切需要一種能夠快速診斷美洲型PRRSV 毒株的檢測方法。

        環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)是一種新型核酸體外等溫?cái)U(kuò)增技術(shù),利用鏈置換型DNA 聚合酶,在恒溫條件下進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng),可在15~60 min 內(nèi)實(shí)現(xiàn)109~1010倍的擴(kuò)增[6],具有快速、特異、精確、簡便等特點(diǎn)[7]。LAMP 反應(yīng)能產(chǎn)生大量擴(kuò)增產(chǎn)物,即焦磷酸鎂白色沉淀,通過添加鈣黃綠素(螯合劑)肉眼觀察有無黃綠色熒光,即可判斷靶基因是否存在。與常規(guī)PCR 相比,該方法不需要模板的熱變性、溫度循環(huán)、電泳及紫外觀察等過程,只需要一個(gè)簡單的恒溫裝置,即可實(shí)現(xiàn)現(xiàn)場高通量快速檢測,并且可與各種系統(tǒng)結(jié)合,在靈敏度、特異性和檢測范圍等指標(biāo)上能媲美甚至優(yōu)于PCR 技術(shù),而檢測成本卻遠(yuǎn)低于熒光定量PCR[8-10]。

        本研究根據(jù)GenBank 中美洲型PRRSV 經(jīng)典毒株JXA1 序列,通過在線生物設(shè)計(jì)軟件設(shè)計(jì)合成LAMP 引物,同時(shí)在LAMP 技術(shù)的基礎(chǔ)上添加了熒光,建立了美洲型PRRSV(NA-PRRSV)RTLAMP 可視化快速檢測方法。該方法無需后續(xù)的電泳檢測,可直接在儀器上檢測熒光或者肉眼判定,因而提高了檢測的靈敏度,為NA-PRRSV 的快速、準(zhǔn)確鑒別提供了有效手段。

        1 材料

        1.1 菌(毒)株及相關(guān)試驗(yàn)材料

        美洲型JXA1、VR2332、類NADC30 毒株,歐洲型LV 株以及豬健康細(xì)胞培養(yǎng)物,均由中國農(nóng)業(yè)大學(xué)動物流行病學(xué)與人畜共患病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室惠贈;豬瘟活疫苗C 株,購自廣東永順生物制藥股份有限公司;豬偽狂犬病毒Bartha-K61 株,購自瑞普(保定)生物藥業(yè)有限公司;豬圓環(huán)病毒2 型DNA 基因組,由本實(shí)驗(yàn)室保存。陽性質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)品,為含有美洲型經(jīng)典毒株基因組RNA 的提取液,陰性質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)品為無RNA 酶蒸餾水,均由本實(shí)驗(yàn)室制備并保存。

        1.2 主要試劑耗材和設(shè)備

        核糖核酸擴(kuò)增試劑盒(生產(chǎn)批號87001)、熒光目視檢測試劑盒(生產(chǎn)批號94001)、loopamp?實(shí)時(shí)濁度測定儀器,均購自榮研生物科技(中國)有限公司;無RNA 酶蒸餾水(生產(chǎn)批號N10108),購自北京索萊寶科技有限公司;磁珠法病毒DNA/RNA 提取試劑盒(生產(chǎn)批號20200101),購自杭州博日科技有限公司;PRRSV 實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 檢測試劑盒(生產(chǎn)批號HPRRS20180524P),購自北京世紀(jì)元亨動物防疫技術(shù)有限公司;熒光定量PCR 儀ABI Quant Studio7,購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司;TGuide S32 全自動核酸提取純化儀,購自天根生化科技有限公司;移液器,購自德國Eppendorf公司。

        2 方法

        2.1 引物合成

        根據(jù)GenBank 已發(fā)表的美洲型經(jīng)典毒株JXA1序列(GenBank:EF112445.1),運(yùn)用在線生物軟件(http://primerexplorer.jp/),通過調(diào)整Tm 值、GC 含量、dG 臨界值、擴(kuò)增長度和片段區(qū)域等參數(shù),設(shè)計(jì)適用于RT-LAMP 的特異性外引物和內(nèi)引物。通過試驗(yàn)篩選出最佳外引物和內(nèi)引物,并在此引物組基礎(chǔ)上,設(shè)計(jì)最佳環(huán)引物,最終得到本研究的引物組合(表1)。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

        表1 引物序列

        2.2 核酸提取

        按照磁珠法病毒DNA/RNA 提取試劑盒說明書提供的操作方法,對美洲型 JXA1、VR2332、類NADC30 毒株,歐洲型毒株LV 株以及豬健康細(xì)胞培養(yǎng)物,豬瘟活疫苗C 株、豬圓環(huán)病毒2 型DNA基因組,豬偽狂犬病毒Bartha-K61株進(jìn)行核酸提取,提取產(chǎn)物置-40 ℃冰箱保存。

        2.3 反應(yīng)體系建立及條件優(yōu)化

        2.3.1 反應(yīng)體系建立 在loopamp?實(shí)時(shí)濁度測定儀器上,使用設(shè)計(jì)的引物組合進(jìn)行LAMP 擴(kuò)增。擴(kuò)增反應(yīng)體系為25 μL:RT-LAMP預(yù)混液18 μL(2×反應(yīng)緩沖液12.5 μL、5 μmol/L 的外引物F3 1 μL、5 μmol/L 的外引物B3 1 μL、40 μmol/L 的內(nèi)引物FIP 1 μL、40 μmol/L 的內(nèi)引物BIP 1 μL、20 μmol/L的環(huán)引物L(fēng)B 1 μL、無RNA 酶蒸餾水0.5 μL)、酶溶液1 μL、熒光目視檢測試劑1 μL 和RNA 樣品5 μL。同時(shí)設(shè)置陰、陽性對照。擴(kuò)增反應(yīng)工作程序?yàn)椋?5 ℃、45 min。檢測結(jié)果判定:呈現(xiàn)綠色或有特定擴(kuò)增曲線為陽性,呈現(xiàn)橘黃色或無特定擴(kuò)增曲線為陰性。

        2.3.2 反應(yīng)溫度優(yōu)化 以美洲型JXA1、VR2332、類NADC30 毒株提取的核酸(10 ng/μL)為模板,利用建立的LAMP 反應(yīng)體系,在loopamp?儀器上進(jìn)行擴(kuò)增,設(shè)置58、60、63、65 ℃等溫度進(jìn)行篩選。擴(kuò)增反應(yīng)工作程序?yàn)?5 ℃、45 min。

        2.4 引物特異性驗(yàn)證

        選用美洲型 JXA1、VR2332、類NADC30 毒株以及歐洲型LV 毒株、豬瘟病毒、豬圓環(huán)病毒2 型、豬偽狂犬病毒和豬健康細(xì)胞培養(yǎng)物提取核酸,在loopamp?實(shí)時(shí)濁度測定儀器上,利用建立的LAMP反應(yīng)體系,對設(shè)計(jì)的引物組合(表1)進(jìn)行特異性驗(yàn)證。擴(kuò)增反應(yīng)工作程序?yàn)?5 ℃、120 min。

        2.5 靈敏度試驗(yàn)

        將JXA1 毒株提取核酸,經(jīng)數(shù)字PCR 定量為104copies/μL,進(jìn)行10 倍倍比稀釋后,分別進(jìn)行RT-LAMP 和real-time PCR 擴(kuò)增,檢測靈敏度。

        RT-LAMP總擴(kuò)增反應(yīng)體系為25 μL:RTLAMP 預(yù)混液18 μL、酶溶液1 μL、熒光目視檢測試劑1 μL 和RNA 樣品5 μL。擴(kuò)增反應(yīng)工作程序?yàn)?5 ℃、45 min。

        實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 反應(yīng)體系:按照PRRSV 實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 檢測試劑盒使用說明書進(jìn)行操作。

        2.6 特異性試驗(yàn)

        用建立的LAMP 反應(yīng)體系,分別以美洲型VR2332 株、JXA1 株、類NADC30 株,歐洲型LV株以及豬瘟病毒、豬圓環(huán)病毒2 型、豬偽狂犬病毒、豬健康細(xì)胞培養(yǎng)物等提取的核酸為模板進(jìn)行試驗(yàn),驗(yàn)證反應(yīng)體系的特異性。

        2.7 臨床樣品檢測

        將已知背景的30 份臨床樣品(22 份陰性、8份陽性)按要求處理后,分別進(jìn)行RT-LAMP 和實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 擴(kuò)增,分析兩種檢測結(jié)果的符合率。

        3 結(jié)果與分析

        3.1 引物特異性驗(yàn)證

        引物特異性擴(kuò)增結(jié)果如圖1 所示:美洲型JXA1(編號1)、VR2332(編號2)、類NADC30(編號3)毒株均在30 min 內(nèi)檢出,歐洲型LV 毒株、豬瘟病毒、豬圓環(huán)病毒2 型、豬偽狂犬病毒和豬健康細(xì)胞培養(yǎng)物(編號4~8)在120 min 內(nèi)均未檢出,表明篩選的引物組合具有較高的擴(kuò)增效率和特異性。

        圖1 不同毒株在同種引物下的擴(kuò)增效率

        3.2 反應(yīng)體系建立及條件優(yōu)化

        試驗(yàn)結(jié)果顯示,以美洲型JXA1、VR2332、類NADC30 毒株提取的核酸為模板,當(dāng)退火溫度為65 ℃時(shí),引物的擴(kuò)增效率最高,因此確定65 ℃為最佳退火溫度。最終反應(yīng)體系為25 μL:RTLAMP 預(yù)混液18 μL、酶溶液1 μL、熒光目視檢測試劑1 μL 和RNA 樣品5 μL。擴(kuò)增反應(yīng)工作程序?yàn)?5 ℃、45 min。

        3.3 靈敏度試驗(yàn)

        RT-LAMP 檢測結(jié)果(圖2)顯示,管1~4 均為陽性(顯示綠色),即該方法的檢測最低限為10 copies/μL,與實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 檢測靈敏度(圖3)基本一致。

        圖2 PRRSV 靈敏度試驗(yàn)檢測結(jié)果

        圖3 PRRSV 實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 檢測結(jié)果

        3.4 特異性試驗(yàn)

        引物組合制備的試劑盒特異性檢測結(jié)果(圖4)顯示:該檢測方法可以成功檢測出美洲型的VR2332 株、JXA1 株、類NADC30 株(分別對應(yīng)管1~3),歐洲型LV 株、豬瘟病毒、豬圓環(huán)病毒2 型、豬偽狂犬病毒和豬健康細(xì)胞培養(yǎng)物均未檢出(分別對應(yīng)管4~8),表明本檢測方法具有良好的特異性。

        圖4 試劑盒特異性檢測結(jié)果

        3.5 臨床檢測試驗(yàn)

        將采集的30 份病料,提取核酸后分別進(jìn)行RT-LAMP 方法與實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 方法檢測。結(jié)果(表2)顯示,所建立的RT-LAMP 方法與熒光定量RT-PCR 方法檢測結(jié)果一致,符合率為100%,但RT-LAMP 擴(kuò)增時(shí)間(45 min)比實(shí)時(shí)熒光RT-PCR(80 min)短,說明建立的RT-LAMP檢測方法特異性好、靈敏度高、方便快捷、結(jié)果準(zhǔn)確可靠。

        表2 RT-LAMP 與實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 方法檢測結(jié)果比對單位:份

        4 討論

        PRRS 是一種豬的高度接觸性傳染病,1995 年在我國首次出現(xiàn),1996 年首次在我國分離到病原,隨后在我國迅速蔓延[11]。2006 年我國全面暴發(fā)了由HP-PRRSV 導(dǎo)致的PRRS 疫情。該毒株較之前國內(nèi)流行的經(jīng)典美洲型毒株出現(xiàn)了NSP2缺失[12],對養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的沖擊。PRRS 臨床癥狀與豬瘟病毒、豬偽狂犬病毒、豬圓環(huán)病毒感染相似,且常呈混合感染,導(dǎo)致確診困難。

        傳統(tǒng)的PRRSV 檢測方法主要包括病毒分離與鑒定、免疫過氧化物酶單層試驗(yàn)(IPMA)、間接免疫熒光試驗(yàn)(IFA)和間接酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(間接ELISA)等[13]。目前最常用的核酸檢測方法有常規(guī)PCR 和熒光定量PCR 等。傳統(tǒng)的PRRSV 檢測方法存在需要使用高成本儀器設(shè)備,試驗(yàn)所需時(shí)間較長等不足。RT-PCR 和實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 雖然較以往方法具有特異性更強(qiáng)、靈敏度高、重復(fù)性好,且自動化程度高等優(yōu)點(diǎn),但是對于操作人員的分子生物學(xué)技術(shù)背景要求很高,試劑成本很貴,難以在基層實(shí)際生產(chǎn)中普及應(yīng)用。

        2000 年環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP)由日本學(xué)者 Notomi 等[14]在《Nucleic Acids Res》雜志上公開介紹,隨即受到了世界衛(wèi)生組織(WHO)、各國學(xué)者和相關(guān)政府部門的關(guān)注。LAMP 技術(shù)作為一種新的適用于基因診斷的恒溫核酸擴(kuò)增技術(shù),具有快速、特異、敏感、簡便等優(yōu)點(diǎn),因而在核酸快速檢測領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用。LAMP 方法的優(yōu)勢除了高特異性和高靈敏度外,操作還十分簡單,在應(yīng)用階段對儀器的要求低,結(jié)果判讀也非常簡單,直接肉眼觀察白色沉淀或者綠色熒光即可,不像普通PCR 方法需要進(jìn)行凝膠電泳觀察結(jié)果,因而是一種適合現(xiàn)場、基層快速檢測的方法。而且此方法的結(jié)果判斷均不需要開蓋檢測,從而很好地避免了擴(kuò)增產(chǎn)物污染,也適用于實(shí)驗(yàn)室相關(guān)研究[15]。

        本研究針對美洲型PRRSV 經(jīng)典毒株JXA1 序列,建立了熒光可視化的RT-LAMP 檢測方法,證實(shí)可有效快速檢測美洲型PRRSV。該方法靈敏性和特異性良好,最低檢測限為10 copies/μL。同時(shí)RT-LAMP 檢測方法擴(kuò)增時(shí)間為45 min,與實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 相比,在靈敏度相同的情況下能節(jié)省約35 min 的時(shí)間,且在任何一個(gè)恒溫儀器上都可操作,十分便利。因此,本研究建立的RT-LAMP 可視化檢測方法特異、靈敏、快速,適用于臨床NAPRRSV 的快速檢測,不僅可為豬場的病原篩查和疫情防控提供技術(shù)支撐,還能為了解病毒變異、預(yù)測疫情變化及采取有效防控措施提供參考。

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