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        乳鼠心肌細(xì)胞片狀生長的分離、培養(yǎng)及純化

        2020-06-05 07:26:40張宇楊帆
        中國現(xiàn)代醫(yī)藥雜志 2020年4期
        關(guān)鍵詞:小鼠實驗

        張宇 楊帆

        隨著社會進步與人們生活水平提高,心血管疾病的發(fā)病率日趨增高并逐步年輕化[1],心血管疾病研究一直是科研工作者不斷探索及關(guān)注的領(lǐng)域。在分子醫(yī)學(xué)及細(xì)胞生物學(xué)快速發(fā)展的今天,乳鼠心肌細(xì)胞是目前心血管疾病研究與治療的主要對象,乳鼠心肌細(xì)胞原代培養(yǎng)則是進行心血管疾病研究的最基礎(chǔ)手段[2]。動物體內(nèi)環(huán)境復(fù)雜,不利于進行細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路、基因表達(dá)及細(xì)胞生理病理學(xué)特性等研究,故需要穩(wěn)定、有效的體外細(xì)胞培養(yǎng)模 型[3]。心肌細(xì)胞具有培養(yǎng)簡易方便,且實驗重復(fù)性好等優(yōu)點,被認(rèn)為是進行心臟基因測序及細(xì)胞學(xué)研究的有效對象,從而推進心臟疾病的治療進程[4]。成熟心肌細(xì)胞分離培養(yǎng)難度較大,并且由于每個實驗室體外細(xì)胞培養(yǎng)的條件與方法不一致[5,6],導(dǎo)致原代培養(yǎng)的心肌細(xì)胞的存活率、純度等有很大差異,不僅浪費人力物力,而且導(dǎo)致實驗數(shù)據(jù)不穩(wěn)定與差異性大等問題,無法滿足實驗需求,影響實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性和可比性。本研究在傳統(tǒng)乳鼠心肌細(xì)胞原代分離、培養(yǎng)技術(shù)基礎(chǔ)上進行改良,使乳鼠心肌細(xì)胞能夠成片狀生長,有利于心肌細(xì)胞生理、病理及毒理等的基礎(chǔ)實驗研究進展。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實驗動物 出生24h 內(nèi)的C57BL/6J 乳小鼠30只,由貴州醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供。

        1.1.2 實驗設(shè)備 生物安全柜(新加坡ESCO 公司),恒溫培養(yǎng)振蕩器(美國Thermo 公司),CO2恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國Thermo 公司),倒置相差光學(xué)顯微鏡(德國Leica 公司),倒置熒光顯微鏡(德國Leica 公司)。

        1.1.3 實驗試劑 Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)高糖型培養(yǎng)基(美國Corning 公司),胎牛血清(FBS,以色列BI 公司),5-溴脫氧尿嘧啶核苷(BrdU,美國Sigma 公司),明膠(美國Sigma 公司),0.25%胰蛋白酶(簡稱胰酶,杭州吉諾生物公司),Ⅱ型膠原酶(美國Thermo 公司),青霉素-鏈霉素溶液(簡稱雙抗,杭州吉諾生物公司),Troponin I 兔多克隆抗體(美國Abcam 公司),Dylight488 標(biāo)記羊抗兔IgG(美國Abcam 公司),TrionX-100(上海碧云天公司),牛血清白蛋白(BSA,美國AMRESCO公司),臺盼藍(lán)(北京索萊寶公司),無水乙醇(上海滬試),甲醛(上海滬試),磷酸鹽緩沖液(PBS,杭州吉諾生物公司)。

        1.2 試劑配制

        1.2.1 培養(yǎng)基A 含體積分?jǐn)?shù)為10% FBS 及1%雙抗配制的DMEM 高糖型培養(yǎng)基。

        1.2.2 培養(yǎng)基B 含體積分?jǐn)?shù)為10% FBS、1%雙抗以及0.1mmol/L BrdU 配制的DMEM 高糖型培養(yǎng)基。

        1.2.3 消化液 將0.1%胰酶與0.1%膠原酶Ⅱ型混勻,現(xiàn)用現(xiàn)配。

        1.3 細(xì)胞培養(yǎng)方法

        1.3.1 取材 乳小鼠置于75%乙醇中消毒后,移入超凈工作臺,固定其四肢,用無菌眼科剪開胸并取出心臟,剪去心房及結(jié)締組織部分,僅留取左心室,放入預(yù)冷PBS 中反復(fù)清洗血液,并移入另一無菌玻璃皿中,將心室組織剪為1mm3組織塊,在冰上進行上述操作。

        1.3.2 細(xì)胞消化 第一次消化心室組織:將剪碎后的心室組織移入50ml 離心管,加入10ml 消化液,放入37℃搖床100rpm,15min,棄掉上清,收集沉淀。第二次消化心室組織:將第一次消化后沉淀的心室組織中加入10ml 消化液,37℃搖床100rpm,10min,充分吹打后靜止,待未消化完全細(xì)胞沉淀后小心收集上清(避免吸入組織塊)置于20ml 培養(yǎng)液中。重復(fù)5~6次消化步驟,至完全消化為止,收集上清。用200μm篩網(wǎng)過濾,1 000rpm,4℃,離心8min,收集上清。

        1.3.3 細(xì)胞培養(yǎng) 用培養(yǎng)基A 將收集到的細(xì)胞懸液再次重懸,接種于T25 培養(yǎng)瓶,放入5% CO2恒溫(37℃)細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)1.5h(即差速貼壁分離法)。將T25 培養(yǎng)瓶中的上清液轉(zhuǎn)移至另一無菌T25 培養(yǎng)瓶,放入細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)1h,進行第二次差速貼壁。同時,在六孔板中鋪0.5%明膠,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1h 備用。收集上清并計數(shù)后,離心1 000rpm,4℃,8min,棄上清,留取細(xì)胞沉淀。用培養(yǎng)基B 重懸細(xì)胞沉淀,按照1.5×105/10cm2的細(xì)胞密度接種于包被0.5%明膠的六孔板中,放入細(xì)胞培養(yǎng)箱。同時,取200μl 未接種的細(xì)胞懸液進行細(xì)胞存活率檢測。細(xì)胞培養(yǎng)24h 后給予培養(yǎng)基B 換液,前3 天每天使用培養(yǎng)基B 換液培養(yǎng),以后使用培養(yǎng)基A(即不加BrdU)常規(guī)培養(yǎng)。

        1.4 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察、細(xì)胞純度及存活率檢測

        1.4.1 光學(xué)顯微鏡 細(xì)胞培養(yǎng)24h 后,于倒置相差光學(xué)顯微鏡下觀察。

        1.4.2 細(xì)胞免疫熒光染色及細(xì)胞純度鑒定 實驗前1d 將細(xì)胞消化后按照1.5×105/10cm2的細(xì)胞密度重新鋪于24 孔板中培養(yǎng)24h。次日,拿出細(xì)胞吸出培養(yǎng)基,用預(yù)冷PBS 輕柔清洗細(xì)胞3 次。用4%甲醛溶液固定10min,預(yù)冷PBS 輕柔清洗細(xì)胞3 次;用0.2% TritonX-100 破膜10min,預(yù)冷PBS 輕柔清洗細(xì)胞3 次。3% BSA 室溫封閉1h,預(yù)冷PBS 輕柔清洗細(xì)胞3 次。加入Troponin I 兔多克隆抗體(一抗?jié)舛?∶400),放入細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育16~20h。次日,吸出一抗,預(yù)冷PBS 輕柔清洗細(xì)胞3 次,加入Dylight488 標(biāo)記羊抗兔IgG 抗體(二抗?jié)舛?∶400),室溫孵育1h,預(yù)冷PBS 輕柔清洗細(xì)胞3 次,在倒置熒光顯微鏡下觀察。細(xì)胞純度=熒光染色陽性細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)×100%。

        1.4.3 細(xì)胞存活率檢測 利用臺盼藍(lán)染色法評價細(xì)胞存活率,是目前常規(guī)的檢測方法。留取200μl 細(xì)胞懸液,加入等量0.4%臺盼藍(lán)染液,室溫染色2~ 3min。將染色后的細(xì)胞懸液涂于載玻片上,蓋玻片封片,于倒置相差光學(xué)顯微鏡下觀察。任意選取5個視野,統(tǒng)計被染色細(xì)胞(死細(xì)胞)和未被染色細(xì)胞(活細(xì)胞)。細(xì)胞存活率(%)=未被染色細(xì)胞/(被染色細(xì)胞+未被染色細(xì)胞)×100%。

        2 結(jié)果

        2.1 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察及細(xì)胞純度檢測

        2.1.1 光學(xué)顯微鏡 細(xì)胞培養(yǎng)24h 后,心肌細(xì)胞基本全部貼壁,伸出偽足,呈梭形、三角形或不規(guī)則形,核仁清楚(圖1A)。培養(yǎng)48h 后,細(xì)胞偽足逐漸增多,呈局部片狀。培養(yǎng)72h 后,大部分心肌細(xì)胞的突起相互交聯(lián),形成片狀(圖1B)。

        圖1 乳小鼠原代培養(yǎng)的心肌細(xì)胞圖

        2.1.2 細(xì)胞免疫熒光染色 培養(yǎng)24h 和培養(yǎng)72h 后,通過免疫熒光染色檢測貼壁心肌細(xì)胞,細(xì)胞呈梭形、三角形或不規(guī)則形。培養(yǎng)24h 后,細(xì)胞呈簇狀或團狀分布(圖2A);培養(yǎng)72h 后,細(xì)胞已相互連接,形成片狀(圖2B)。隨機選取5 個不同鏡下視野計算出心肌細(xì)胞純度為(95.30±1.36)%。

        圖2 乳小鼠原代培養(yǎng)的心肌細(xì)胞熒光染色圖

        2.2 細(xì)胞搏動頻率在倒置顯微鏡下觀察,細(xì)胞培養(yǎng)24h 后有少數(shù)自發(fā)性搏動;培養(yǎng)48h 后出現(xiàn)局部片狀搏動,節(jié)律、頻率不等,收縮頻率為(99.33±5.13)次/min;培養(yǎng)第5 天,大部分心肌細(xì)胞呈同步收縮,收縮頻率為(100.67±6.43)次/min;培養(yǎng)第7 天、第9 天、第11 天,細(xì)胞仍保持均一搏動,收縮頻率分別為(104±10)次/min、(92.67±10.02)次/min、(97.00±9.17)次/min(圖3)。

        2.3 細(xì)胞存活率通過臺盼藍(lán)染色法我們檢測出在培養(yǎng)第2 天、第5 天、第7 天、第9 天、第11 天的細(xì)胞存活率分別為(95.33±2.51)%、(83.00±3.60)%、(63.33±3.51)%、(57.67±3.06)%、(48.67±3.21)%(圖4)。

        圖3 乳小鼠原代培養(yǎng)心肌細(xì)胞搏動頻率

        圖4 乳小鼠原代培養(yǎng)心肌細(xì)胞存活率

        3 討論

        心血管疾病的基礎(chǔ)研究技術(shù)歷經(jīng)50年的發(fā)展,現(xiàn)今的電生理、鈣瞬變、蛋白質(zhì)組學(xué)及基因水平轉(zhuǎn)移等研究,對探索心肌細(xì)胞病理生理狀態(tài)的功能改變起到至關(guān)重要的推進作用[7]。心肌細(xì)胞的分離與培養(yǎng)則是深入研究心血管疾病最基礎(chǔ)的手段[2]。體外培養(yǎng)的心肌細(xì)胞去除了體內(nèi)復(fù)雜的體液、神經(jīng)等因素的作用,尤其相較于心肌細(xì)胞株H9C2 更能有效反映心臟生理特性、信號傳導(dǎo)通路及基因表達(dá)等,是研究心血管生理、病理、毒理的常用細(xì)胞模型[4]。心肌細(xì)胞對物理、化學(xué)等損傷極為敏感,這將導(dǎo)致體外分離培養(yǎng)的心肌細(xì)胞產(chǎn)量和存活率低等問題。此外,心肌細(xì)胞占心臟組織的25%,其余心臟成分以成纖維細(xì)胞為主[8],成纖維細(xì)胞分裂增殖能力強,更能成為體外培養(yǎng)的優(yōu)勢細(xì)胞。因此,為了在體外培養(yǎng)出純度高、活性強的心肌細(xì)胞,我們根據(jù)實驗研究經(jīng)驗,在傳統(tǒng)的實驗技術(shù)方法上進行 改良。

        在小鼠年齡選擇上,傳統(tǒng)的心肌細(xì)胞培養(yǎng)選用出生3 天的乳鼠[5],認(rèn)為此時的心肌細(xì)胞增殖更快,但是由于出生時間短的小鼠心臟組織中膠原組織含量少,細(xì)胞消化過程省時省力,并且能減少對心肌細(xì)胞的損害,因此,我們選用出生24h 內(nèi)的小鼠進行實驗。在實驗操作的時間節(jié)點選擇上,傳統(tǒng)的實驗方法是差速貼壁1 次,時間為1.5h[2,8],但是我們發(fā)現(xiàn),在第1 次差速貼壁后的上清液中仍有大量成纖維細(xì)胞,由于心肌細(xì)胞的貼壁時間為4~24h,因此,我們將第1 次差速貼壁后收集的上清液進行第二次差速貼壁,時間為1h。在培養(yǎng)細(xì)胞接種密度上,細(xì)胞接種密度對細(xì)胞正常生長也同樣重要,細(xì)胞過密導(dǎo)致營養(yǎng)不良,細(xì)胞過疏也將降低細(xì)胞間信號傳遞,由于大多數(shù)實驗室暫無標(biāo)準(zhǔn)化的細(xì)胞接種密度,我們根據(jù)William 等[9]的研究,推薦使用1.5×105/10cm2的細(xì)胞密度進行接種。我們所分離培養(yǎng)的心肌細(xì)胞在搏動節(jié)律上一致,搏動頻率在培養(yǎng)第2~11天無明顯差異。通過以上三點的改進,我們在體外分離培養(yǎng)的心肌細(xì)胞存活率在培養(yǎng)第2 天達(dá)(95.33±2.51)%,在培養(yǎng)第11 天達(dá)(48.67±3.21)%,是前面的研究所沒有觀察到的[8,10]。

        綜上所述,我們在短時間內(nèi)體外分離培養(yǎng)獲得純度高、存活率高、生長狀態(tài)良好的成片狀的原代心肌細(xì)胞,有利于今后為心血管疾病的基礎(chǔ)研究提供參考。

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