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        北沙參多糖分離純化及經(jīng)腸道菌群降解對(duì)體外免疫細(xì)胞增殖的影響

        2020-06-02 09:32:08于欽輝杜寶香杜以晴馬青云
        中成藥 2020年5期
        關(guān)鍵詞:小鼠

        于欽輝,杜寶香,杜以晴,楊 佳,馬青云,文 冉,容 蓉

        (山東中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,山東 濟(jì)南250355)

        北沙參為傘形科植物珊瑚菜Glehnia littoralisFr.Schmidtex Miq 的干燥根,是臨床上常用中藥。本品性甘、微苦、性微寒,歸肺、胃經(jīng)。有益胃生津、養(yǎng)陰清肺之功效,臨床上主要用于肺熱燥咳、勞嗽痰血、胃陰不足、熱病津傷、咽干口渴等癥[1]。研究表明北沙參所含的主要成分有香豆素、木脂素、聚炔類、多糖類等[2]。其中多糖類成分含有量最高有調(diào)節(jié)或增強(qiáng)機(jī)體免疫功能,治療陰虛證的作用[3]。目前對(duì)北沙參多糖的研究更多的偏向于提取工藝優(yōu)化及理化性質(zhì)等方面[4-5],對(duì)其免疫活性的研究較少。課題組報(bào)道過(guò)純化后的北沙參多糖對(duì)脾淋巴細(xì)胞的增殖活性的影響[6],但尚未見(jiàn)關(guān)于純化后的北沙參多糖經(jīng)腸道菌群降解后對(duì)免疫細(xì)胞增殖活性影響的相關(guān)報(bào)道。

        大多數(shù)中藥多糖在疾病治療方面發(fā)揮著關(guān)鍵作用,但大分子碳水化合物在人體內(nèi)很難被直接吸收。腸道微生物群在人類消化生理及大腸內(nèi)穩(wěn)態(tài)有著很重要的作用[7]。腸道中某些類型微生物可以多糖為能量來(lái)源,將其分解為易利用的小分子物質(zhì),從而使多糖更好地發(fā)揮提高機(jī)體免疫力的作用[8]。大量研究結(jié)果顯示,北沙參化學(xué)成分眾多,其中多糖被認(rèn)為是北沙參重要的有效成分之一[3-6]。然而目前對(duì)北沙參單糖組成等初步結(jié)構(gòu)表征研究較少,并且由于多糖本身不易被機(jī)體吸收,故其作用機(jī)制始終未能明確。本研究對(duì)獲得的2 種多糖組分進(jìn)行單糖組成分析,并通過(guò)小鼠腸道菌群在體外對(duì)多糖成分進(jìn)行降解,測(cè)定2 種單糖降解前后對(duì)細(xì)胞增殖活性的影響,以期為腸道菌群在中藥代謝中的作用提供依據(jù)。本研究旨對(duì)分離純化得到的北沙參多糖,通過(guò)腸道菌群體外降解,觀察其對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞、脾臟細(xì)胞增殖活性的影響,探討腸道菌群對(duì)體內(nèi)多糖的降解作用及增效機(jī)制。

        1 材料

        1.1 儀器 UV-2550 型紫外分光光度計(jì)(日本島津儀器有限公司);安捷倫6890 N 型氣相色譜儀、安捷倫1200 型高效液相色譜儀(美國(guó)Agilent 公司);Mettler AE240 電子天平(十萬(wàn)分之一,瑞士梅特勒公司);高速離心機(jī)TD5A(鹽城凱特實(shí)驗(yàn)儀器有限公司)。

        1.2 藥材與試劑 北沙參藥材購(gòu)于山東省中醫(yī)院(批號(hào)170501),經(jīng)山東中醫(yī)藥大學(xué)徐凌川教授鑒定為傘形科植物珊瑚菜Glehnia littoralisFr.Schmidtex M iq 的干燥根。對(duì)照品D-無(wú)水葡萄糖(批號(hào)MUST-14072601,純度>98%)、D-(+) -木糖(批號(hào)MUST-16041913,純度>98%),均購(gòu)自成都曼斯特生物科技有限公司;對(duì)照品L-巖藻糖,L-鼠李糖(批號(hào)SA0411GA13,純度>98%),D-阿拉伯糖(批號(hào)AJ0702FA14,純度>98%),D-甘露糖(批號(hào)AA0416LA13,純度>98%),D-半乳糖 (批 號(hào)YM0506YA14,純 度>98%),均購(gòu)自上海源葉生物科技有限公司;DEAE-52 纖維素(批號(hào)20170622,北京索萊寶科技有限公司);牛血清白蛋白(批號(hào)130102,上海伯奧生物科技有限公司);考馬斯亮藍(lán)G-250 (批號(hào)20130102,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);厭氧培養(yǎng)基(批號(hào)20180410,山東拓普生物工程有限公司);濃硫酸(批號(hào)20160508,萊陽(yáng)經(jīng)濟(jì)技術(shù)開(kāi)發(fā)區(qū)精細(xì)化工廠);苯酚、無(wú)水乙醇、正丁醇、三氯甲烷、氯化鈉、氫氧化鈉等均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>

        1.3 動(dòng)物與細(xì)胞株 BALB/c 雄性小鼠,體質(zhì)量18~20 g,購(gòu)自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司RAW264.7 細(xì)胞,購(gòu)自上海生命科學(xué)研究院生物化學(xué)與細(xì)胞生物學(xué)研究所。本研究涉及的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)經(jīng)山東中醫(yī)藥大學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn),批準(zhǔn)號(hào)2016-007。

        2 方法

        2.1 北沙參粗多糖制備 稱取北沙參藥材2.0 kg,粉碎,過(guò)4 號(hào)篩,加入6 倍體積80% 乙醇,加熱回流提取2 次,每次2 h,抽濾,提取液另器存放;藥渣自然晾干至無(wú)醇味,加入10 倍量水于94.9 ℃浸提2 次[9],每次120 min,2 次提取液合并,離心取上清液,上清液濃縮后加入4 倍量無(wú)水乙醇于4 ℃冰箱靜置過(guò)夜,過(guò)濾取沉淀,沉淀冷凍干燥后得北沙參粗多糖,在干燥器中放置保存。

        2.2 北沙參多糖分離純化 采用DEAE-52 纖維素對(duì)北沙參粗多糖進(jìn)行分離。取“2.1” 項(xiàng)下北沙參粗多糖適量,蒸餾水溶解,分別以蒸餾水、0.05、0.1、0.3 mol/L NaCl溶液梯度洗脫,等體積收集流分,苯酚-硫酸法跟蹤檢測(cè),以洗脫管數(shù)為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制洗脫曲線,合并同一洗脫峰流分,冷凍干燥,分別制得蒸餾水、0.05、0.1、0.3 mol/L NaCl 溶液洗脫組分(D1、D2、D3、D4)。取得率較高的流分D1、D2 做后續(xù)分析[10]。

        2.3 蛋白質(zhì)含有量測(cè)定 以0.100 6 mg/mL 的牛血清蛋白溶液為對(duì)對(duì)照品溶液,分別量取對(duì)照品溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL 于具塞刻度管中,加去離子水補(bǔ)足至1 mL,分別向每只試管中加入3 mL 考馬斯亮藍(lán)G-250 溶液,混勻后室溫放置20 min,以蒸餾水為空白,在紫外585 nm 處測(cè)定其吸光度[11]。

        樣品液制備,精密稱取“2.2” 項(xiàng)下D1、D2 組分適量,配成質(zhì)量濃度約為10.0 mg/mL 的供試品溶液,后續(xù)操作同對(duì)照品的處理方法。

        2.4 總糖含有量測(cè)定 以0.145 8 g/L 的葡萄糖溶液為對(duì)照品溶液,分別量取對(duì)照品溶液0、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL 于試管中,加去離子水補(bǔ)足至總體積2 mL,每個(gè)濃度重復(fù)3 個(gè)樣品,分別向每只試管中加入5%苯酚溶液1.0 mL,濃硫酸5.0 mL,迅速混合均勻。沸水浴中反應(yīng)30 min,以蒸餾 水為空 白,在490 nm 波長(zhǎng)下進(jìn)行掃描[11-12]。

        樣品液制備,精密稱取“2.2” 項(xiàng)下D1、D2 組分適量,配置成0.145 8 g/L 的多糖溶液,取0.7 mL,加去離子水補(bǔ)足至2 mL,后續(xù)操作同對(duì)照品的處理方法。

        2.5 北沙參多糖單糖組成分析

        2.5.1 北沙參多糖組分完全酸水解 精密稱取D1、D2 組分10.00 mg 于10 mL 具塞試管中,加入2 mol/L 三氟乙酸(TFA) 適量溶解多糖組分,置于100 ℃烘箱中水解10 h,40 ℃氮?dú)獯蹈?,甲醇洗滌,吹干,重?fù)此操作3~4 次,至TFA 蒸發(fā)完全。

        2.5.2 標(biāo)準(zhǔn)單糖衍生物制備 分別稱取L-鼠李糖、D-阿拉伯糖、D-甘露糖、D-無(wú)水葡萄糖、巖藻糖、D-半乳糖、D-木糖各5 mg,分別加入鹽酸羥胺5 mg,吡啶0.55 mL,肌醇六乙酸酯4 mg,混合均勻,于90 ℃水浴中反應(yīng)30 min。取出,待溫度降至室溫,加入0.55 mL 乙酸酐,90 ℃水浴反應(yīng)30 min 使乙酰化反應(yīng)完全。75 ℃氮?dú)獯蹈?,氯仿溶解,過(guò)0.22 μm 濾膜于液相小瓶中,備用。取各對(duì)照單糖衍生物100 μL,混合均勻,得混合對(duì)照單糖衍生物,供GC分析用[13]。

        2.5.3 水解多糖衍生物制備 取“2.5.1” 項(xiàng)下水解多糖樣品適量,按“2.5.2” 項(xiàng)下方法進(jìn)行衍生化處理,氯仿溶解,過(guò)0.22 μm 微孔濾膜于液相小瓶中,備用。

        2.5.4 色譜條件 HP-5 毛細(xì)管柱 (320 μm× 30 m,0.25 μm);FID 檢測(cè)器;升溫程序?yàn)槌跏紲囟?70 ℃保持3 min,以2 ℃/min 速率升至230 ℃,保持5 min;載氣N2;進(jìn)樣器溫度250 ℃;檢測(cè)器溫度300 ℃;氮?dú)怏w積流量1.2 mL/min,氫氣體積流量30 mL/min,空氣體積流量300 mL/min;進(jìn)樣量1.0 μL;進(jìn)樣方式分流進(jìn)樣;分流比60 ∶1。

        2.6 多糖在腸道菌群中的體外降解[14-15]

        2.6.1 厭氧培養(yǎng)液制備 稱取厭氧培養(yǎng)基9.5 g 于1 L 蒸餾水,加熱煮沸2 min 使徹底溶解,分裝,120 ℃高壓滅菌15 min,備用。

        2.6.2 小鼠腸道菌群培養(yǎng)液制備 取小鼠新鮮糞便適量粉碎后置于100 mL EP 管中,按1 g ∶ 30 mL 的比例加入?yún)捬跖囵B(yǎng)液,充分渦旋,離心(1 000 r/min) 10 min,取上清。將上清液轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿內(nèi),每皿30 mL,37 ℃氣浴震蕩培養(yǎng)24 h,即得。

        2.6.3 小鼠腸道菌群對(duì)北沙參多糖的降解 分別向“2.6.2” 項(xiàng)下培 養(yǎng)皿中加入 D1、D2 多糖水溶液(5 mg/mL)5 mL,混勻,繼續(xù)37 ℃氣浴震蕩12 h。同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照組,即以等體積的蒸餾水代替多糖溶液。分別收集不同皿內(nèi)的培養(yǎng)液,離心(8 000 r/min) 10 min 取上清液,上清液用500 Da 的超濾膜進(jìn)行超濾,以去除培養(yǎng)液成分對(duì)后期實(shí)驗(yàn)的干擾。取膜內(nèi)溶液,冷凍干燥后得到北沙參多糖降解產(chǎn)物。

        2.6.4 降解產(chǎn)物分析 Agilent PL aquagel-OH MIXED-M 凝膠柱(7.5 mm × 300 mm,8 μm);流動(dòng)相去離子水;進(jìn)樣量10 μL;體積流量1.0 mL/min;柱溫35 ℃;RID 檢測(cè)器溫度40 ℃。已知分子量對(duì)照品多糖為Dextran T 系列對(duì)照品品,分子量分別為5、10、12、50、100 kDa,以其分子量對(duì)數(shù)值與其相應(yīng)保留時(shí)間作標(biāo)準(zhǔn)曲線。將降解前后的色譜圖進(jìn)行對(duì)比并對(duì)多糖降解結(jié)果進(jìn)行分析。取降解前后的北沙參多糖樣品適量,蒸餾水溶解,過(guò)0.45 μm 微孔濾膜,備用。

        2.7 多糖及其降解產(chǎn)物對(duì)脾淋巴細(xì)胞及巨噬細(xì)胞增殖活性研究[16-17]

        2.7.1 小鼠脾淋巴細(xì)胞制備 取清潔級(jí)BALB/c 雄性小鼠,脫頸椎處死,70%酒精浸泡5 min,于超凈工作臺(tái)內(nèi)用手術(shù)剪剖開(kāi)小鼠腹部,取出脾臟,用注射器吸取PBS 緩沖液沖洗脾臟中血液,以除去紅細(xì)胞。沖洗干凈后脾臟經(jīng)200 目篩網(wǎng)研磨,收集研磨液置于1.5 mL 離心管中,離心(1 000 r/min,10 min),棄 上清,用RPMI-1640 培養(yǎng)液(加10%血清和1%雙抗) 重懸細(xì)胞制得。

        2.7.3 MTT 法測(cè)定細(xì)胞增殖 取RAW264.7 細(xì)胞稀釋至1×105/mL,接種于96 孔培養(yǎng)板中,每 孔100 μL,37 ℃,5% CO2培養(yǎng)12 h 后,加入不同濃度的多糖溶液(15.6、31.2、62.5、125、250、500 μg/mL) 100 μL,繼續(xù)孵育24 h。對(duì)于脾淋巴細(xì)胞,按 “2.7.1” 項(xiàng)下方法制得后,稀釋細(xì)胞濃度至1 × 106/mL,接種于96 孔培養(yǎng)板中,直接加入上述不同濃度的多糖溶液100 μL,培養(yǎng)44 h。各實(shí)驗(yàn)組同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照組,即不加藥液加入等體積的培養(yǎng)基。各細(xì)胞加藥培養(yǎng)相同時(shí)間后,每孔加入10 μL MTT,培 養(yǎng)4 h 后,棄上清,每孔加 入100 μL DMSO 溶 液,37 ℃震 蕩10 min 后,于酶標(biāo) 儀490 nm 處測(cè)定各孔OD 值,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次后取平均值進(jìn)行分析。

        3 結(jié)果

        3.1 北沙參多糖分離純化 北沙參多糖經(jīng)DEAE-52 纖維素柱層析分離得到4 個(gè)北沙參多糖組分D1、D2、D3、D4。其中D3、D4 組分得率較低,故僅對(duì)D1、D2 組分進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)分析。

        3.2 蛋白質(zhì)含有量測(cè)定 以牛血清白蛋白對(duì)照品溶液的濃度為橫坐標(biāo)(X),吸光度為縱坐標(biāo)(Y),得線性回歸方程Y=7.475 1X+0.864 (R2=1)。根據(jù)方程計(jì)算北沙參多糖D1、D2 組分中蛋白含有量分別為0.03%、0.14%。

        3.3 總糖含有量測(cè)定 以葡萄糖對(duì)照品溶液的濃度為橫坐標(biāo)(X),吸光度為縱坐標(biāo) (Y),得線性回歸方程Y=15.592 0X-0.038 4 (R2=0.999 1),根據(jù)方程計(jì)算北沙參多糖D1、D2 組分中總糖含有量分別為72.99%、80.04%。

        3.4 單糖組成分析 混合對(duì)照品單糖及D1、D2 組分GC色譜圖譜圖見(jiàn)圖1,記錄各色譜峰的保留時(shí)間。測(cè)得各單糖的摩爾比,結(jié)果見(jiàn)表1。

        3.5 多糖的腸道菌群降解產(chǎn)物分析 分離純化后的多糖D1、D2 分別被小鼠腸道菌群降解,得到降解產(chǎn)物DD1、DD2。本實(shí)驗(yàn)采用凝膠滲透色譜對(duì)腸道菌群降解前后的北沙參多糖進(jìn)行分析。見(jiàn)圖2,可知DD1、DD2 的保留時(shí)間較之于D1、D2 明顯增加,表明北沙參多糖在腸道菌群作用下降解為分子量較小的多糖。

        3.6 北沙參多糖及其腸道菌群降解產(chǎn)物對(duì)臟細(xì)胞及巨噬細(xì)胞增殖作用的影響

        3.6.1 對(duì)脾淋巴細(xì)胞增殖作用 由圖3 可知,與空白對(duì)照組比較,D1、DD1 均能促進(jìn)小鼠脾淋巴細(xì)胞的增殖,且在實(shí)驗(yàn)濃度下,呈現(xiàn)鐘罩型量-效關(guān)系,在質(zhì)量濃度62.5 μg/mL時(shí)增殖活性達(dá)到最大。圖中顯示,在質(zhì)量濃度15.6、250 μg/mL 時(shí)D1 的增殖活性強(qiáng)于DD1,其他質(zhì)量濃度下,DD1 的增殖活性明顯強(qiáng)于D1 組分。

        圖1 各成分GC 色譜圖

        表1 各多糖單糖組成

        圖2 各多糖降解前后HPLC 色譜圖

        圖3 D1 及其降解產(chǎn)物對(duì)小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖活性的影響

        由圖4 可知,與空白對(duì)照組相比,D2、DD2 均能促進(jìn)小鼠脾淋巴細(xì)胞的增殖,D2 的增殖活性在質(zhì)量濃度125 μg/mL 時(shí)達(dá)到最大,DD2 的增殖 活性在 質(zhì)量濃 度250 μg/mL 時(shí)達(dá)到最大。圖中顯示,在質(zhì)量濃度250 μg/mL 時(shí)DD1 的增殖活性強(qiáng)于D1,其他質(zhì)量濃度下,2 組分的增殖活性差別不明顯。

        圖4 D2 及其降解產(chǎn)物DD2 對(duì)脾淋巴細(xì)胞增殖活性的影響

        3.6.2 對(duì)巨噬細(xì)胞增殖作用比較 由圖5 可知,與空白對(duì)照組比較,D1、DD1 均能提高小鼠巨噬細(xì)胞的增殖。在質(zhì)量濃度31.2、125 μg/mL 時(shí)D1 和DD1 的增殖活性分別達(dá)到最大。圖中顯示,在質(zhì)量濃度小于62.5 μg/mL 時(shí)D1 的增殖活性強(qiáng)于DD1,在質(zhì)量濃度大于62.5 μg/mL 時(shí)DD1的增殖活性強(qiáng)于D1。

        圖5 D1 及其降解產(chǎn)物DD1 對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞增殖活性的影響

        由圖6 可知,與空白對(duì)照組比較,D2、DD2 均能提高小鼠巨噬細(xì)胞的增殖,且在實(shí)驗(yàn)濃度下,呈現(xiàn)鐘罩型量-效關(guān)系。在質(zhì)量濃度62.5 μg/mL 時(shí)增殖活性達(dá)到最大。圖中顯示,DD2 的增殖活性明顯強(qiáng)于DD1。

        4 討論

        圖6 D2 及其降解產(chǎn)物DD2 對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞增殖活性的影響

        目前,常用的單糖測(cè)定色譜方法主要包括HPLC 法、離子色譜法、氣相色譜法和高效毛細(xì)管色譜法[18],其中HPLC 法靈敏度較低[19],離子色譜法雖然靈敏度較高,但糖類在電極表面能將某些分子氧化或還原,并且易受環(huán)境溫度的影響,進(jìn)而對(duì)結(jié)果產(chǎn)生影響[20]。氣相色譜法具有測(cè)定結(jié)果準(zhǔn)確、靈敏度高、適應(yīng)性強(qiáng)等特點(diǎn),因此本實(shí)驗(yàn)中多糖采用三氟乙酸進(jìn)行水解并進(jìn)行GC 分析,區(qū)別于課題組之前的HPLC 分析。

        北沙參成分復(fù)雜,研究表明北沙參有諸多的藥理活性[21]。多糖在北沙參中含有量較多,具有增強(qiáng)小鼠腹腔巨噬細(xì)胞吞噬功能的作用[22]。課題組之前在北沙參多糖提取工藝優(yōu)化[9]、結(jié)構(gòu)表征[23]及純化后多糖的體外活性免疫研究[6]等方面做過(guò)詳細(xì)報(bào)道。據(jù)報(bào)道,目前市場(chǎng)上含多糖的中成藥制劑品種中口服制劑約占總品種的74.00%[24]。但是多糖在人體內(nèi)很難被直接吸收,其在人體內(nèi)的吸收代謝過(guò)程及作用機(jī)制尚不明確。胃腸道是口服藥物的必經(jīng)通道,其中大腸內(nèi)豐富的腸道菌群,在藥物的降解過(guò)程中起著重要的作用[25]。腸道菌群通過(guò)還原、脫羥、脫糖、脫甲基、乙?;?、脫羧等代謝反應(yīng),轉(zhuǎn)化多種異物,可能形成新的活性物質(zhì),進(jìn)而提高藥效。本研究首次將分離純化的北沙參多糖與腸道菌群降解相結(jié)合,探討多糖在經(jīng)腸道菌群降解后對(duì)細(xì)胞增殖活性的影響。

        本研究尚存在若干不足之處,北沙參多糖降解產(chǎn)物的單糖組成與分子量范圍,以及體內(nèi)腸道菌群降解過(guò)程與降解產(chǎn)物的藥效作用機(jī)制,有待于進(jìn)一步研究。

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