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        蘭州百合鱗莖多糖超聲波輔助提取工藝優(yōu)化及穩(wěn)定性研究

        2020-05-11 13:26:04李剛剛伏衡一效碧亮
        食品與機械 2020年3期
        關鍵詞:影響

        李剛剛 - 孫 靜 伏衡一 - 效碧亮 -

        (蘭州理工大學技術工程學院,甘肅 蘭州 730050)

        蘭州百合為百合科百合屬多年生草本球根植物,纖維少,色澤潔白如玉,是中國唯一食用甜百合[1]。因其多糖含量較多,具有抗衰老、提高免疫力、降低血脂等功能[2]。楊穎等[3]研究發(fā)現(xiàn)蘭州百合多糖可通過提高機體免疫功能增強化療藥物的抑瘤效果,并降低化療的毒性損傷。目前中國對蘭州百合多糖提取已有較多研究[4-5],主要采用熱回流水提法,該法浸取率偏低且提取時間較長。

        試驗擬以蘭州百合廢棄鱗莖為原料,采用超聲波輔助法提取其多糖,并對多糖的穩(wěn)定性進行測定,為蘭州百合廢棄物的綜合利用提供借鑒。

        1 材料與方法

        1.1 試劑與儀器

        蘭州百合:產(chǎn)地甘肅蘭州彭家坪;

        葡萄糖標準品:上海金穗生物科技有限公司;

        無水乙醇、濃硫酸、苯酚等:分析純,國藥集團化學試劑有限公司;

        真空干燥箱:DZF-6020型,上海圣科儀器設備有限公司;

        旋轉蒸發(fā)儀:RE-52A型,上海亞榮儀器廠;

        數(shù)控超聲波清洗器:KQ-500DB型,上海圣科儀器設備有限公司;

        冷凍干燥機:Scientz-10N 型,寧波新芝生物科技有限公司;

        分光光度計:UV-3000型,上海美譜達儀器有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 蘭州百合多糖的提取 蘭州百合廢棄鱗莖,干燥(50 ℃,12 h),粉碎,過40目篩得百合粉。稱取10.0 g百合粉,按料液比1∶10(g/mL),超聲頻率40 kHz,超聲池水位120 mm,超聲功率200 W,50 ℃超聲波輔助提取60 min,減壓抽濾,濾液濃縮至原濾液1/4后,加入4倍體積無水乙醇靜置醇沉,離心(4 000 r/min,15 min)分離,所得沉淀冷凍干燥(冷阱溫度-60 ℃,真空度0.09 MPa,干燥12 h),得蘭州百合粗多糖[4-7]。

        1.2.2 蘭州百合多糖含量及提取率的測定 采用苯酚—硫酸法[8-9]測定蘭州百合多糖含量。以葡萄糖標準品繪制標準曲線,得線性回歸方程:A=0.013m-0.009(R2=0.998)。按式(1)計算蘭州百合多糖提取率。

        E=(CV/M)×100%,

        (1)

        式中:

        E——蘭州百合多糖提取率,%;

        C——蘭州百合多糖提取液濃度,mg/mL;

        V——蘭州百合多糖提取液體積,mL;

        M——蘭州百合粗多糖質量,mg。

        1.2.3 單因素試驗設計

        (1)料液比:在超聲功率200 W,超聲頻率40 kHz,超聲時間60 min,超聲溫度50 ℃的條件下,考察料液比[1∶5,1∶10,1∶15,1∶20,1∶25(g/mL)]對蘭州百合多糖提取率的影響。

        (2)超聲功率:在料液比1∶15(g/mL),超聲頻率40 kHz,超聲時間60 min,超聲溫度50 ℃的條件下,考察超聲功率(100,150,200,250,300 W)對蘭州百合多糖提取率的影響。

        (3)超聲溫度:在料液比1∶15(g/mL),超聲功率250 W,超聲頻率40 kHz,超聲時間60 min的條件下,考察超聲溫度(50,60,70,80,90 ℃)對蘭州百合多糖提取率的影響。

        (4)超聲時間:在料液比1∶15(g/mL),超聲功率250 W,超聲頻率40 kHz,超聲溫度70 ℃的條件下,考察超聲時間(20,40,60,80,100 min)對蘭州百合多糖提取率的影響。

        1.2.4 正交試驗設計 在單因素試驗基礎上,以蘭州百合多糖提取率為評價指標進行正交試驗,篩選最佳提取工藝條件。

        1.2.5 蘭州百合多糖穩(wěn)定性試驗

        (1)H2O2對蘭州百合多糖提取物穩(wěn)定性的影響:取蘭州百合粗多糖0.100 0 g 溶解于100 mL水中配制成母液,加入30%的H2O2,使H2O2含量為0.15%,0.30%,0.45%,0.60%,0.75%,0.90%,混合后密封靜置冷藏24 h后,在 490 nm處測定吸光度[10-11]。

        (2)Na2SO3對蘭州百合多糖提取物穩(wěn)定性的影響:取蘭州百合粗多糖 0.100 0 g溶解于100 mL水中配制成母液,加入適量Na2SO3,使Na2SO3含量為0.25%,0.50%,0.75%,1.00%,混合后密封靜置冷藏24 h后,在490 nm處測定吸光度[10-11]。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        采用Excel 2007制作圖表,SPSS Statistios17.0軟件進行數(shù)據(jù)處理分析。

        2 結果與討論

        2.1 單因素試驗結果

        綜合圖1及蘭州百合多糖提取效果可知,蘭州百合多糖提取工藝條件為:料液比1∶15(g/mL)、超聲功率250 W、超聲溫度70 ℃、超聲時間60 min。當料液比達到1∶15(g/mL)時,多糖提取率達到最大,隨溶劑量增大,大量非多糖類水溶性物質浸出,導致提取率減小;超聲時間60 min時達到最大值,因初始提取液中百合多糖濃度低,延長提取時間有助于多糖的溶出,但當多糖的溶出達到一定程度后,單純延長時間很難再促進多糖的進一步溶解,甚至使多糖降解[9],影響蘭州百合多糖提取率。

        圖1 不同因素對蘭州百合多糖提取率的影響

        2.2 蘭州百合多糖提取工藝優(yōu)化

        依據(jù)單因素試驗結果,確定正交試驗的因素水平見表1。正交試驗結果見表2。

        表1 正交試驗因素水平表

        Table 1 Orthogonal test factors and treatment level arrangement

        因素A料液比(g/mL)B超聲功率/WC超聲溫度/℃D超聲時間/min11︰10200604021︰15250706031︰203008080

        表2 正交試驗結果

        由表2可知,影響蘭州百合多糖提取率因素的主次順序為:A(料液比)>B(超聲功率)>C(超聲溫度)>D(超聲時間),最佳提取工藝為:料液比 1∶20(g/mL),超聲功率250 W,超聲溫度 60 ℃,超聲時間 60 min。經(jīng)3次重復實驗驗證,蘭州百合多糖提取率為18.44%。由表3可知,料液比、超聲功率和超聲溫度對蘭州百合多糖提取率有顯著影響。在細胞壁表面多糖組分傳質擴散速率較慢,而超聲波的空化效應能加速物質中分子的運動[12],增強細胞滲透效應與毛細管效應,有利于蘭州百合中的多糖組分轉移、擴散[13],提高多糖提取率,縮短提取時間,對蘭州百合多糖結構及理化性質影響較小。

        表3 方差分析表

        2.3 H2O2對蘭州百合多糖提取物穩(wěn)定性的影響

        由圖2可見,當H2O2濃度為0.15%~0.90%時,蘭州百合多糖提取物水溶液的吸光度隨H2O2濃度的增大逐漸減小,因為H2O2具有較強的氧化性,使多糖羥基氧化,分子鏈斷裂,說明蘭州百合多糖抗氧化性較差。

        圖2 氧化劑H2O2對蘭州百合多糖提取物穩(wěn)定性的影響

        Figure 2 Effects of oxidants H2O2on the stability of polysaccharide extracts fromLiliumdavidiivar

        2.4 Na2SO3對蘭州百合多糖提取物穩(wěn)定性的影響

        由圖3可知,蘭州百合多糖提取物水溶液的吸光度隨還原劑Na2SO3濃度的增大略有減小,可能是還原劑Na2SO3未與蘭州百合多糖發(fā)生化學反應,多糖結構相對穩(wěn)定,說明其具有良好的抗還原性。

        3 結論

        采用正交試驗優(yōu)化蘭州百合多糖超聲波輔助提取工藝,得最佳條件為料液比 1∶20(g/mL),超聲功率250 W,超聲溫度 60 ℃,超聲時間 60 min。此條件下,蘭州百合多糖提取率為18.44%。采用此工藝提取蘭州百合多糖,提取率高于熊明郁等[4]、高丹丹等[5]采用的水提法。蘭州百合多糖提取物的穩(wěn)定性研究表明,蘭州百合多糖提取物抗氧化性較差,易被H2O2氧化,具有良好的抗還原性。

        圖3 還原劑Na2SO3對蘭州百合多糖提取物穩(wěn)定性的影響

        Figure 3 Effect of reducing agent Na2SO3on the stability of polysaccharide extracts fromLiliumdavidiivar

        試驗提供了一種簡單高效的提取方法,后期可采用微波、生物酶、粒子液體等其他方法進一步減少提取時間。

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