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        注射型富血小板纖維蛋白對成骨細胞影響的研究

        2020-04-23 01:03:18王燦莉
        實用醫(yī)院臨床雜志 2020年1期
        關(guān)鍵詞:細胞骨架磷酸酶成骨細胞

        費 潛,王燦莉,孫 勇

        (1.西南醫(yī)科大學,四川 瀘州 646000;2.西南醫(yī)科大學附屬口腔醫(yī)院,四川 瀘州 646000)

        富血小板纖維蛋白(platelet-rich fibrin,PRF)在2001年由法國科學家 Choukroun 等[1]發(fā)現(xiàn),是繼富血小板血漿(platelet-rich plasma,PRP)后第二代血小板濃縮制品。PRF主要是由血小板、白細胞和纖維蛋白基質(zhì)等共同構(gòu)成,其分子結(jié)構(gòu)類似于天然血凝塊,富含多種細胞因子。PRF可以借助生長因子的調(diào)節(jié)作用進行組織修復(fù),具有誘導(dǎo)組織再生和促進組織愈合的特性[2]。另外,PRF是一種不含體外抗凝物質(zhì)的完全自體血濃縮物,不但內(nèi)含大量生長因子,且具有獲取途徑容易,制作過程簡單的優(yōu)點[3]。PRF目前已廣泛應(yīng)用于臨床,使用時主要制備成膜狀或凝膠狀。2014年,Choukroun團隊通過改變離心速率制得注射型富血小板纖維蛋白(injectable platelet-rich fibrin,i-PRF),通過利用非玻璃離心管在低速離心狀態(tài)下,降低纖維蛋白早期凝集,從而獲得i-PRF[4]。臨床使用時其制備方法更加簡化,為一步離心,操作更加便捷,不需要膜狀或凝膠狀的剪切和擠壓塑性。i-PRF同傳統(tǒng)的PRF類似,但i-PRF富含更多的白細胞,以及能夠釋放更多的生長因子[4]。本實驗使用的是i-PRF,觀察其對成骨細胞增殖、分化及細胞骨架的影響。

        1 材料與方法

        1.1 主要試劑和儀器α-MEM培養(yǎng)基(Hyclone 美國)、胎牛血清(FBS,浙江天杭生物科技股份有限公司)、CCK-8試劑盒(日本株式會社同仁化學研究所)、堿性磷酸酶(ALP)試劑盒(上海生工有限公司)、羅丹明-鬼筆環(huán)肽(Cytoskeleton 美國)、圖像分析軟件(Image-Pro Plus 6.0,Media Cybernetics美國)、低速離心機(湖南恒心科技股份有限公司,型號:0TD3WS)。

        1.2 方法

        1.2.1兔成骨細胞的制備 2017年12月至2018年6月,選擇 出生一周的同胎新西蘭乳兔4只(20~25 g,西南醫(yī)科大學實驗動物房提供)。頸椎脫臼法處死后置于75%酒精中浸泡30 min,無菌操作臺內(nèi)取出顱頂骨,通過改良膠原酶和胰酶分段消化結(jié)合組織塊培養(yǎng)法獲取兔原代成骨細胞。通過堿性磷酸酶染色和茜紅素染色法進行成骨細胞鑒定后取P3代細胞進行實驗。

        1.2.2i-PRF的制備 新西蘭大白兔(2~2.5 kg 西南醫(yī)科大學實驗動物房提供),適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。無菌條件下,于每次兔子進食后1 h后進行動脈血采集,一次性靜脈采血針配合i-PRF專用一次性真空采血管,每只兔子每次收集7 ml血液,立即置入TD3WS低速離心機(湖南恒心科技股份有限公司)中,設(shè)置i-PRF程序700 rpm/min,3 min,離心后可見血液分為2層:上層為i-PRF層,下層為紅細胞層。在超凈工作臺上,將每1 ml i-PRF加入5 ml α-MEM培養(yǎng)基,靜置3天后,1000 rmp條件下離心5 min,取上清液用0.22 μm細菌濾器過濾后即為i-PRF條件培養(yǎng)基。實驗分為實驗組(i-PRF組),對照組(α-MEM完全培養(yǎng)基 含10%FBS、2%雙抗)進行培養(yǎng)成骨細胞。

        1.2.3CCK-8檢測細胞增殖 重懸細胞,將細胞計數(shù)調(diào)整為1×105個/ml,取96孔板,表明時間節(jié)點,每組設(shè)置5個復(fù)孔,每孔加入50 μl上述細胞懸液,移入孵育箱2 h后取出,實驗組每孔按4∶1的比例加入i-PRF條件培養(yǎng)基和α-MEM完全培養(yǎng)基共100 μl,空白組加入α-MEM完全培養(yǎng)基100 μl,每2~3天換液。分別培養(yǎng)1、3、5、7天后,吸出原培養(yǎng)液,無菌PBS漂洗三次,向上述各孔加入CCK-8反應(yīng)液10 μl。按照CCK-8檢測試劑盒說明書進行操作,酶標儀450 nm處進行OD值檢測并記錄結(jié)果。

        1.2.4堿性磷酸酶(ALP)染色 將細胞計數(shù)約1×105個/ml的細胞懸液接種至24孔板,設(shè)置3個復(fù)孔,移入孵育箱2 h后取出,實驗組每孔按4∶1的比例加入i-PRF條件培養(yǎng)基和α-MEM完全培養(yǎng)基共100 μl,空白組加入α-MEM完全培養(yǎng)基100 μl,每2~3天換液。于細胞培養(yǎng)第5、7、9天,吸去培養(yǎng)液,無菌PBS漂洗三次,取細胞爬片進行堿性磷酸酶檢測并通過Image-Pro Plus 6.0軟件進行半定量分析。

        1.2.5細胞骨架形態(tài)觀察 將細胞以1×105個/ml的濃度置于6孔板中制作細胞爬片。每組每個時間節(jié)點設(shè)3個復(fù)孔,分別于12、24、48 h后吸去培養(yǎng)液,無菌PBS漂洗三次,4%多聚甲醛溫室固定10 min,PBS清洗30 s,0.5%Triton X-100溶液完全覆蓋細胞,溫室處理5 min,PBS清洗30 s,滴加200 μl 10 nm的羅丹明-鬼筆環(huán)肽,室溫避光處理30 min,PBS清洗30 s,在熒光顯微鏡下進行細胞骨架形態(tài)及細胞核觀察。

        1.3 統(tǒng)計學方法采用SPSS 16.0進行t檢驗,計量資料用均數(shù)±標準差表示。P< 0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 CCK-8檢測細胞增殖結(jié)果隨細胞培養(yǎng)時間延長,兩組細胞數(shù)量逐漸增加,各組細胞培養(yǎng)的OD值總體比較及不同時點組間兩兩比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P< 0.05);在每個時間節(jié)點實驗組的吸光度值均顯著高于對照組(P< 0.05)。見表1。

        表1 兩組細胞不同培養(yǎng)時間細胞增殖結(jié)果OD值比較

        2.2 兩組ALP染色結(jié)果比較隨培養(yǎng)天數(shù)的增加,鏡下成骨細胞數(shù)目及表達藍染顆粒的細胞數(shù)目均增加,5、7、9天細胞內(nèi)堿性磷酸酶藍染顆粒表達情況均表現(xiàn)為實驗組優(yōu)于對照組(P<0.05)。見圖1。2.3 i-PRF對細胞骨架形態(tài)的影響觀察對照組和實驗組成骨細胞數(shù)目均隨著培養(yǎng)時間的增加而增加,兩組細胞均表現(xiàn)出較好的增殖活性。成骨細胞培養(yǎng)的第12 h,空白組細胞呈現(xiàn)為較小的橢圓形,邊緣光滑整齊,無明顯的細胞突起,可見F-actin微絲蛋白環(huán)狀排列;實驗組細胞開始呈現(xiàn)出成骨細胞三角形、長梭形、多邊形等特點,F(xiàn)-actin微絲蛋白沿細胞長軸平行排列。成骨細胞培養(yǎng)的第24 h,對照組細胞開始呈現(xiàn)長梭形樣伸展并可見胞漿突起,F(xiàn)-actin微絲蛋白開始沿細胞長軸平行排列;實驗組細胞主要呈現(xiàn)為三角形、多邊形伸展,細胞伸展面積較對照組大,F(xiàn)-actin微絲蛋白沿細胞長軸有規(guī)律的平行排列或交織成網(wǎng)狀。成骨細胞培養(yǎng)的第48 h,對照組細胞呈現(xiàn)為多邊形伸展伴多個胞漿突起,伸展面積較前一時間節(jié)點明顯擴大,F(xiàn)-actin微絲蛋白沿細胞長軸平行排列或交織成網(wǎng)狀,排列相對紊亂;i-PRF組細胞呈現(xiàn)為三角形、多邊形及長梭形伸展,伴豐富胞漿突起并相互連接,細胞伸展面積明顯較空白組大,F(xiàn)-actin微絲蛋白匯集成較粗的束狀,均勻、平行排列,規(guī)律性的沿細胞長軸伸展。見圖2。

        圖1 兩組細胞不同培養(yǎng)時間ALP細胞染色結(jié)果比較 (×200) a:對照組5天;b:對照組7天;c:對照組9天;d:實驗組5天;e:實驗組7天;f:實驗組9天

        圖2 兩組細胞培養(yǎng)不同時間節(jié)點細胞骨架形態(tài)比較(熒光顯微鏡,×400) a:對照組12 h;b:對照組24 h;c:對照組48 h;d:實驗組12 h;e:實驗組24 h;f:實驗組48 h

        3 討論

        大量研究[5,6]證明,PRF可以有助于傷口愈合,保護術(shù)區(qū),促進軟組織修復(fù)的作用,當與骨移植材料混合時,可以促進干細胞向移植中心遷徙,促進新的血管形成。相關(guān)的動物實驗中已經(jīng)證實PRF不僅具有促進新骨形成的作用,且可作為骨組織工程支架材料的選擇之一[7]。另外,有實驗表明PRF可以單獨作為骨充填材料修復(fù)種植體周圍骨缺損,且修復(fù)的新骨與正常骨無明顯差異[8]。PRF中主要含有三種濃縮的細胞因子生長因子-β(TGF-β)、血小板生長因子(PDGF)和血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)。PDGF在骨細胞的分裂和增殖的早期階段起著重要作用;TGF-β可以調(diào)節(jié)骨形成和吸收;VEGF是骨代謝的一種重要的局部調(diào)節(jié)因子,在一定劑量時則以發(fā)揮成骨的調(diào)節(jié)效應(yīng),可以直接作用于成骨細胞。它們之間存在協(xié)同作用,加強各自的促進作用[9]。i-PRF作為一種新型的不加入任何抗凝劑的可注射型富血小板纖維蛋白,通過低速離心(700 rmp,3 min) 即可制得[4]。有實驗表明i-PRF較PRF能更好的誘導(dǎo)成骨細胞遷徙,并釋放不同濃度的生長因子的能力,更高的表達PDGF,TGF-β等[10]。Choukroun等[3]一項研究證明了降低離心力與生長因子釋放之間的關(guān)系,離心過程產(chǎn)生的總細胞數(shù)量和生長因子釋放水平在相同的血容量下只與特定的相關(guān)離心力暴露量有關(guān)。目前新的數(shù)據(jù)表明,白細胞和血小板的質(zhì)量、大小和密度范圍需要較低的相關(guān)離心力,這足以讓它們從血液中分離出來,且顯著增加白細胞、血小板數(shù)量,以及生長因子濃度[11]。且有進一步的研究顯示,i-PRF與骨移植材料混合時,可形成一移植骨塊,最大限度的減少骨移植顆粒的擴散和遷移[12]。但有研究指出,過高濃度的生長因子會抑制細胞的增殖分化[13],本實驗于無菌條件下,制取得到i-PRF條件培養(yǎng)液后稀釋至20%用于本實驗,與Miron等[10]在實驗中采用的i-PRF濃度一致。

        本實驗中,CCK-8結(jié)果顯示,隨細胞培養(yǎng)時間延長,兩組細胞數(shù)量逐漸增加,各組細胞培養(yǎng)1、3、5、7 d的OD值兩組間比較差異有統(tǒng)計學意義(P< 0.05);在每個時間節(jié)點實驗組的吸光度值均顯著高于對照組(P< 0.05)。此結(jié)果與董凱等[14]對富血小板纖維蛋白提取液(platelet-rich fibrin extrace,PRFe)對成骨細胞的實驗研究中,細胞增殖情況結(jié)果基本一致。本實驗 ALP染色結(jié)果顯示隨培養(yǎng)天數(shù)的增加,鏡下成骨細胞數(shù)目及表達藍染顆粒的細胞數(shù)目均增加,5、7、9 d細胞內(nèi)堿性磷酸酶藍染顆粒表達情況均表現(xiàn)為實驗組優(yōu)于對照組。其原因筆者認為通過低速離心獲得的i-PRF富含多種生長因子、白細胞及血小板,對成骨細胞表達堿性磷酸酶活性起著促進作用,但本實驗未對成骨細胞表達堿性磷酸酶活性進行定量檢測,這一假設(shè)仍需進一步研究來證實。本實驗 i-PRF對細胞骨架形態(tài)的影響觀察結(jié)果顯示,對照組和實驗組成骨細胞數(shù)目均隨著培養(yǎng)時間的增加而增加,兩組細胞均表現(xiàn)出較好的增殖活性,但實驗組細胞的細胞骨架較對照組有更好的排列及伸展。初步分析其原因與i-PRF中釋放的多種生長因子有密切關(guān)系,但實驗中未討論i-PRF的三維結(jié)構(gòu)對成骨細胞的影響,仍須今后進一步實驗研究。i-PRF運用時間較短,其生物性能有待進一步研究,需要進一步的相關(guān)臨床和實驗研究以優(yōu)化臨床效益。

        綜上所述,i-PRF能夠釋放一定濃度的生長因子促進成骨細胞增殖分化,促進細胞骨架的排列與伸展。這為臨床種植手術(shù)中的應(yīng)用提供了進一步的理論基礎(chǔ)。

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