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        肥胖胰島素抵抗大鼠血氣分析研究*

        2020-04-16 11:35:22曾國威余日躍盛譯萱李冰濤張啟云姜麗曾治君徐國良江西中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)基礎(chǔ)理論分化發(fā)展研究中心南昌330004江西省中藥藥理重點實驗室南昌330004江西省中醫(yī)病因生物學(xué)重點實驗室南昌330004
        關(guān)鍵詞:粘稠度高脂血氣

        ★ 曾國威 余日躍 盛譯萱 李冰濤,3 張啟云,3 姜麗,3 曾治君,3 徐國良,,3***(.江西中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)基礎(chǔ)理論分化發(fā)展研究中心 南昌 330004;.江西省中藥藥理重點實驗室 南昌330004;3.江西省中醫(yī)病因生物學(xué)重點實驗室 南昌 330004)

        流行病學(xué)調(diào)查顯示,我國成年人2型糖尿?。╰ype 2 diabetes mellitus,T2DM)患病率為9.7%~11.6%[1-2],已成為全球糖尿病患者最多的國家[3]。T2DM的治療與預(yù)防亟待解決,明確其發(fā)病機制意義重大。肥胖是T2DM的獨立危險因素,多數(shù)T2DM患者存在超重或肥胖[4]。肥胖是引發(fā)IR的主要因素[5],而IR是T2DM的重要發(fā)病機制[6]。慢性組織缺氧是IR形成的可能誘因[7]。肥胖者脂肪組織生長速度過快,超過血管生長速度,組織供氧不足造成局部缺氧[8],;T2DM患者也存在低氧血癥[9],但肥胖IR機體循環(huán)血液是否缺氧尚不明確。

        動脈血血氣分析可反應(yīng)機體氧合狀態(tài)。血氣分析指標,如氧分壓(pO2)、二氧化碳分壓(pCO2)、血氧飽和度(sO2)等,在缺氧診斷中具有重大意義。本研究通過高脂飼料喂養(yǎng)SD大鼠,建立肥胖大鼠模型,誘導(dǎo)產(chǎn)生IR,檢測其腹主動脈血液的pO2、pCO2、sO2、血細胞容積(Hct)、血紅蛋白含量量(ctHb)、血氧含量(ctO2)等血氣指標,探明肥胖IR機體循環(huán)血液是否缺氧,探討血氣指標變化與IR的相關(guān)性。

        1 材料

        1.1 動物及飼料 SPF級SD雄性大鼠36只,4~5周齡,體重(180±20)g,購買于湖南斯萊克景達實驗動物有限公司[SCXK(湘)2014-0002],飼養(yǎng)于江西中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物科技中心[SYXK(贛)2017-0004]。高脂飼料:36%脂肪供能,購于上海普路騰;普通飼料,購于武漢萬千佳興。

        1.2 主要試劑及儀器試劑 葡萄糖試劑[GL8322]購于寧波普瑞柏。血清胰島素ELISA試劑盒(Andygene,批號:201706)。儀器:羅氏Modular p800生化儀、高速冷凍離心機(德國Thermo Fisher)、BT225-電子分析天平(德國Sartorius)、雷度ABL80 血氣分析儀(上海雷度米特)。

        2 方法

        2.1 肥胖大鼠模型的建立 36只雄性SD大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)5d后按體重隨機分為正常組和模型組,正常組大鼠10只,給予普通飼料,模型組大鼠26只,給予高脂飼料,飼養(yǎng)12周。

        2.2 指標測量檢測 稱量大鼠體重,直尺測量體長(從大鼠鼻尖至肛門的長度),計算Lee’s指數(shù),Lee’s指數(shù) =[體重(g)(1/3)]/體長(cm)×1000。禁食12h,大鼠后眼眶采血1mL,分離血清,檢測空腹血清胰島素(FINS)及空腹血糖(FPG),計算IR指數(shù),IR指數(shù)=FPG×FINS/22.5。腹腔注射10%水合氯醛麻醉后,腹主動脈取血,立即使用血氣分析儀進行血氣分析,檢測pO2、pCO2、Hct、ctHb、sO2、ctO2。

        2.3 模型組組內(nèi)聚類分組 使用SPSS19.0軟件K-均值聚類,以第12周IR指數(shù)大小為依據(jù)聚類,分為IR組與非IR組。

        2.4 數(shù)據(jù)處理分析 采用SPSS 19.0進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)均以均值±標準差(±s)表示,兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,P<0.05代表有顯著差異;P<0.01代表有極其顯著差異。使用SPSS19.0軟件K-均值聚類聚類,以第12周IR指數(shù)大小為依據(jù)聚類。

        3 結(jié)果

        3.1 模型組組內(nèi)大鼠組內(nèi)聚類分組 以模型組各大鼠12周末的IR指數(shù)(見表1)為依據(jù)進行K-均值聚類與組件聯(lián)接法系統(tǒng)聚類,聚類得到聚類1(n=14)、聚類 2(n=2)、聚類 3(n=10),詳見表 2、圖1。將聚類2與和聚類3合并為胰島素抵抗組(IR)組(n=12),聚類1作為非IR組(n=14),進行后續(xù)分析。IR組占模型組動物總數(shù)的46.16%。

        表1 模型組第十二周各大鼠IR指數(shù)(n=26)

        表2 模型組大鼠聚類中心

        圖1 模型組大鼠聚類分析樹狀圖

        3.2 大鼠Lee's指數(shù)、血糖、血清胰島素、IR指數(shù)的變化 IR組與非IR組Lee's指數(shù)顯著高于正常組(P<0.05),表明高脂喂養(yǎng)的大鼠已形成肥胖;IR組IR指數(shù)顯著高于正常組(P<0.01),非IR組與正常組無顯著差異,表明IR組的肥胖大鼠產(chǎn)生胰島素抵抗。IR組、非IR組大鼠的空腹血糖與正常組無顯著差異,IR組大鼠血清胰島素顯著高于正常組(P<0.05)、非IR組顯著低于正常組(P<0.01)。結(jié)果見表3。

        表3 IR大鼠Lee’s 指數(shù)、FPG、FINS、IR指數(shù)的變化(±s)

        表3 IR大鼠Lee’s 指數(shù)、FPG、FINS、IR指數(shù)的變化(±s)

        注:與正常組比較,*P<0.05,**P<0.01。

        -1 -1組別 n Lee’s指數(shù) FPG/mmol·LFINS/pmol·LIR指數(shù)正常組 10 332.09±5.10 4.77±1.07 17.55±3.11 3.66±0.85 IR 組 12 336.58±2.32* 5.86±1.81 20.46±2.64* 5.18±1.02**非 IR 組 14 336.19±3.09* 4.98±0.80 14.82±2.63** 3.22±0.42

        3.3 大鼠氧分壓pO2、二氧化碳分壓pCO2IR組、非IR組大鼠pO2、pCO2均與正常組無具有統(tǒng)計學(xué)意義的差異,見表4。

        表4 IR大鼠pO2、pCO2的變化(±s)

        表4 IR大鼠pO2、pCO2的變化(±s)

        組別 n pO2/mmHg pCO2/mmHg正常組 10 103.10±8.35 35.86±4.43 IR組 12 102.08±5.37 37.64±2.75非IR組 14 101.71±6.06 35.71±3.36

        3.4 大鼠血細胞容積Hct、血紅蛋白含量ctHb、血氧飽和度sO2、血氧含量ctO2IR組Hct、ctHb、ctO2均高于正常組并有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),非IR組與正常組無顯著差異;sO2三組間無顯著差異,結(jié)果見表5。

        表5 IR大鼠Hct、ctHb、sO2、ctO2的變化 (±s)

        表5 IR大鼠Hct、ctHb、sO2、ctO2的變化 (±s)

        注:與正常組比較,*P<0.05。

        組別 n Hct/% ctHb/g·dL-1 sO2/% ctO2/Vol%正常組 10 43.70±2.00 14.28±0.61 97.72±0.48 19.58±0.83 IR 組 12 45.58±1.78*14.89±0.60*97.84±0.33 20.43±0.78*非IR組 14 43.64±1.74 14.28±0.53 97.98±0.44 19.64±0.78

        4 討論

        阻塞性呼吸睡眠暫停綜合征(OSA)的患者常伴有肥胖及更嚴重的IR[10]。肥胖者脂肪組織過度增生和肥大,與血管新生速度無法達到平衡,供氧不足使脂肪組織出現(xiàn)缺氧[11]。動物實驗發(fā)現(xiàn):間歇性缺氧即可增加ob/ob小鼠的IR[12],也可使得正常小鼠的骨骼肌糖利用降低而發(fā)生急性IR[13]。缺氧誘導(dǎo)因子 -1α(hypoxia inducible factor-1α,HIF-1α)是機體缺氧反應(yīng)的一個重要的標志物,是一個轉(zhuǎn)錄因子,缺氧時水平增加,引起其它多種基因表達增加,從而刺激紅細胞生成、血管生成和糖酵解[14]。王慧[15]對肥胖患者脂肪組織的研究表明,肥胖患者脂肪組織HIF-1α表達升高并存在IR,且兩者存在相關(guān)性。張莉亞等[16]在高脂飲食誘導(dǎo)肥胖小鼠的白色脂肪組織中也觀察到局部缺氧、糖耐量受損及IR。缺氧的脂肪細胞條件培養(yǎng)基孵育骨骼肌細胞可造成骨骼肌細胞IR[17]。以上研究均提示缺氧可能是周身IR形成的重要因素。本研究結(jié)果顯示肥胖IR大鼠pO2、pCO2與正常組無顯著差異,表明肥胖IR大鼠循環(huán)血液不缺氧。

        血細胞比容(Hct)是反映紅細胞數(shù)量與體積的綜合指標,同時也是血液粘稠度的主要決定因素。Moan A等[18]的對健康男性研究表明葡萄糖利用率(GDR)與Hct及血液粘稠度度呈負相關(guān)。高水平的胰島素增加肌肉毛細血管血流量和白蛋白轉(zhuǎn)運,導(dǎo)致血漿容量的降低和隨之而來的Hct提高。而Hct水平的增加,血流量的減少,通過降低葡萄糖和胰島素向外周器官的轉(zhuǎn)運,加劇IR,進而刺激機體提高胰島素水平。同時,慢性缺氧也會使紅細胞生成、血紅蛋白量代償性增多,以調(diào)節(jié)平衡缺氧狀態(tài),這將使血液中有形成分增多,影響血液粘稠度。長期缺氧將影響紅細胞膜變形能力[19],紅細胞內(nèi)粘稠度增強,而聚集性增強進一步增加了血液粘稠度。本研究中,肥胖IR大鼠Hct、ctHb、ctO2較正常大鼠顯著升高,可能源于機體對慢性缺氧的自我調(diào)節(jié)導(dǎo)致的紅細胞數(shù)量增多與體積增大。

        Barbieri M等[20]研究發(fā)現(xiàn)胰島素綜合征與人血液的紅細胞計數(shù)增加存在相關(guān)性。Unruh D[21]研究報道高脂飼料在肥胖早期誘發(fā)紅細胞功能障礙。徐黔寧等[22]在糖尿病患者抗凝血標本血細胞分析中發(fā)現(xiàn),糖尿病患者的紅細胞平均體積較正常者顯著升高。糖尿病病期內(nèi)存在紅細胞高凋亡狀態(tài)[23];紅細胞存在能量代謝、糖代謝等多種代謝紊亂,紅細胞膜脂質(zhì)組成及膜骨架蛋白結(jié)構(gòu)改變,導(dǎo)致紅細胞形態(tài)改變、膜流動性降低、變形能力降低[24],最終引起臟器的微循環(huán)血流灌注障礙,是糖尿病微血管病變的可能誘因[25]。以上研究均提示紅細胞功能障礙與糖尿病及其并發(fā)癥發(fā)展有關(guān)。本研究中,雖觀察到肥胖IR大鼠Hct、ctHb、ctO2較正常大鼠顯著升高,但未對紅細胞數(shù)量、體積及功能做詳細檢測,紅細胞功能障礙與IR形成的相關(guān)機制尚未完全闡明,有待進一步研究。

        本研究表明肥胖IR大鼠循環(huán)血液不缺氧,Hct、ctHb、ctO2顯著升高,可能源于血液粘稠度增高和機體對慢性缺氧的自我調(diào)節(jié)導(dǎo)致的紅細胞增多與體積增大。

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