鄭文學(xué), 荊 哲, 郭文昀, 張 濤, 陳 霞, 吳兆琦, 崔恒強, 楊紅寧, 張玉秀, 惠 玲, 陳永清△
(中國人民解放軍聯(lián)勤保障部隊第九四〇醫(yī)院 1心血管內(nèi)科, 2醫(yī)學(xué)實驗科, 甘肅 蘭州 730000)
糖尿病高血糖可導(dǎo)致心血管系統(tǒng)多種病理性改變,但有關(guān)高血糖對心肌細胞凋亡作用的機制研究仍然有限。近年來有研究發(fā)現(xiàn)線粒體鈣離子單向轉(zhuǎn)運體(mitochondrial calcium uniporter, MCU)通過依靠線粒體膜電位(mitochondrial membrane potential, Δψm)高選擇性地攝取Ca2+調(diào)節(jié)線粒體內(nèi)游離鈣離子濃度(mitochondrial free Ca2+concentration, [Ca2+]m)穩(wěn)態(tài)[1-2]。[Ca2+]m可以作用于線粒體三羧酸循環(huán)中丙酮酸脫氫酶(pyruvate dehydrogenase, PDH)進而影響線粒體能量代謝及功能[3-4],而線粒體功能障礙和線粒體氧化應(yīng)激增強引起心肌細胞凋亡是糖尿病心肌病發(fā)病的主要病理生理機制[5-7]。精胺(spermine, Sp)是MCU的激動劑,可能通過變構(gòu)激活作用增加MCU對Ca2+的跨膜轉(zhuǎn)運[8-11],在心肌細胞中精胺可通過激動MCU增加Ca2+向線粒體內(nèi)轉(zhuǎn)運[12-13]。有研究表明高糖(high glucose,HG)培養(yǎng)的心肌細胞[Ca2+]m降低[14-15],但是關(guān)于高糖培養(yǎng)的心肌細胞中MCU表達變化及[Ca2+]m穩(wěn)態(tài)與心肌細胞凋亡之間的具體機制尚不清楚。
本研究采用高糖培養(yǎng)的大鼠心肌H9c2細胞模擬糖尿病高糖對心肌細胞損傷的病理過程,探討高糖通過降低MCU表達導(dǎo)致的活性下降促進心肌H9c2細胞凋亡的機制,以期為糖尿病心肌病的防治研究提供理論依據(jù)。
心肌H9c2細胞購自中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會細胞庫。
DMEM細胞培養(yǎng)基和胰蛋白酶(HyClone);胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司);精胺、RIPA細胞裂解液、BCA蛋白含量測定試劑、PMSF、Ⅰ抗、ATP檢測試劑盒、JC-1檢測試劑盒、活性氧簇(reactive oxygen species, ROS)檢測試劑盒、β-actin抗體和Ⅱ抗(上海碧云天生物技術(shù)有限公司);Rhod-2 AM、MCU、caspase-9和caspase-3抗體(Abcam);PDH活性檢測試劑盒(上海索寶生物科技有限公司);TRIzol、引物合成、反轉(zhuǎn)錄試劑盒和熒光定量PCR檢測試劑盒(TaKaRa)。
3.1細胞分組 細胞隨機分為3組:正常對照(control)組(5.5 mmol/L葡萄糖+19.5 mmol/L甘露醇處理細胞)、HG組(25 mmol/L 葡萄糖處理細胞)和HG+Sp組(25 mmol/L葡萄糖+5 μmol/L精胺處理細胞)。各組細胞均在處理后于37 ℃、5% CO2細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)72 h。
3.2Western blot檢測細胞蛋白表達 RIPA裂解細胞,BCA法測定蛋白濃度并將其調(diào)整一致。各蛋白樣本取20 μg進行12%SDS-PAGE,然后轉(zhuǎn)至PVDF膜,5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,分別用MCU(1∶500)、caspase-9(1∶500)、caspase-3(1∶500)和β-actin(1∶500)Ⅰ抗4 ℃孵育過夜。洗膜后,用辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgGⅡ抗(1∶3 000)室溫孵育膜1 h。洗膜后,超敏ECL化學(xué)發(fā)光法顯色。采用目的蛋白與內(nèi)參照β-actin灰度值的比值反映蛋白的表達水平。
3.3RT-qPCR 檢測mRNA表達 TRIzol法提取細胞總RNA并反轉(zhuǎn)錄為cDNA后進行qPCR。MCU的上游引物序列為5’-GAGACTGAGAGACCCGCTACA-3’,下游引物序列為5’-AAGGCGTGAGTTACAAACAGG-3’;β-actin的上游引物序列為5’-AGCCATGTACGTAGCCATCCA-3’,下游引物序列為5’-TCTCCGGAGTCCATCACAATG-3’。反應(yīng)條件為:94 ℃ 3 min; 94 ℃ 30 s,60 ℃ 45 s,72 ℃ 45 s,40個循環(huán);72 ℃ 5 min,轉(zhuǎn)為4 ℃保存。反應(yīng)在Rotor-Gene 300 Real-time PCR儀上進行;用Rotor-Gene 6.1 software分析數(shù)據(jù)。
3.4線粒體Ca2+濃度檢測 Rhod-2 AM工作液(2 μmol/L)覆蓋細胞,37 ℃細胞培養(yǎng)箱中孵育60 min,洗滌后,HBSS 溶液覆蓋細胞,37 ℃培養(yǎng)箱中孵育約30 min,熒光顯微鏡檢測細胞(激發(fā)波長545 nm),熒光強度代表線粒體內(nèi)Ca2+濃度。
3.5PDH活性檢測 按照PDH活性檢測試劑盒說明書進行操作,每200萬細胞加入400 μL提取液,超聲波破碎細胞(功率200 W,工作3 s,間歇10 s,工作35次),12 000×g、 4 ℃離心30 min,取上清。PDH催化丙酮酸脫羧生成乙醛,添加乙醇脫氫酶進一步催化NADH還原乙醛生成乙醇和NAD+,NADH在340 nm有吸收峰,通過測定340 nm光吸收下降速率,來計算PDH活性。
3.6ATP濃度的檢測 按照ATP檢測試劑盒說明書進行操作,6孔板每孔加入200 μL裂解液完全裂解細胞,12 000×g、4 ℃離心5 min,取上清。當(dāng)螢光素酶和螢光素過量時,在一定范圍內(nèi)熒光產(chǎn)生和ATP濃度成正比,根據(jù)標準曲線計算樣品中ATP濃度。
3.7線粒體膜電位的檢測 用PBS洗滌6孔板中的細胞1次,每孔分別加入1 mL細胞培養(yǎng)液和1 mL JC-1染色工作液,充分混勻。37 ℃細胞培養(yǎng)箱中孵育20 min。棄上清,用1×染色緩沖液洗滌2次,加入2 mL細胞培養(yǎng)液,熒光顯微鏡下觀察。當(dāng)Δψm較高時,JC-1熒光探針聚集在線粒體的基質(zhì)中形成聚合物(aggregates),可以產(chǎn)生紅色熒光;當(dāng)Δψm處于較低水平時,JC-1不能聚集在線粒體的基質(zhì)中,JC-1單體(monomers)產(chǎn)生綠色熒光。用紅綠熒光相對比例的增減來反映Δψm的變化。
3.8活性氧簇檢測 MitoSOXTM染色法檢測心肌細胞線粒體ROS水平。按照1∶1 000用HBSS/ Ca2+/Mg2+稀釋MitoSOXTM,終濃度為5 μmol/L工作液。6孔板1孔中加入500 μL工作液,充分覆蓋細胞,另一個孔中加500 μL HBSS/Ca2+/Mg2+作為陰性對照,37 ℃避光孵育10 min。去除MitoSOXTM工作液,使用溫HBSS/Ca2+/Mg2+輕微清洗3遍。使用激光共聚焦顯微鏡觀察并拍照,用紅色熒光強度的相對比例來反映ROS水平。
數(shù)據(jù)采用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計分析,用均數(shù)±標準差(mean±SD)表示各組數(shù)據(jù),兩組之間的比較采用非配對t檢驗,多組之間的比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
Western blot結(jié)果顯示,與對照組比較,HG組和HG+Sp組H9c2細胞中MCU蛋白表達降低(P<0.05),見圖1A; RT-qPCR 檢測檢測結(jié)果顯示,與對照組比較,HG組及HG+Sp組MCU 的mRNA表達減低(P<0.05),見圖1B。
Rhod-2 AM探針檢測[Ca2+]m結(jié)果顯示,HG組[Ca2+]m較對照組明顯降低(P<0.05);與HG組相比,HG+Sp組[Ca2+]m升高(P<0.05),見圖2。PDH活性檢測結(jié)果顯示,HG組H9c2細胞中PDH的活性顯著低于對照組(P<0.05);與HG組相比,HG+SP組的H9c2細胞中PDH活性則顯著升高(P<0.05),見圖3A。ATP檢測試劑盒檢測結(jié)果顯示,HG組H9c2細胞的ATP濃度顯著低于對照組(P<0.05);與HG組的相比,HG+SP組的ATP濃度顯著增加(P<0.05),見圖3B。
Figure 1.Comparisons of the protein (A) and mRNA (B) expression of MCU among control group, HG group, and HG+Sp group. Mean±SD.n=6.#P<0.05vscontrol group.
圖1 各組心肌細胞中MCU蛋白及mRNA表達比較
Figure 2.Comparisons of [Ca2+]mamong control group, HG group, and HG+Sp group. Mean±SD.n=8.#P<0.05vscontrol group;*P<0.05vsHG group.
圖2 各組H9c2細胞線粒體中[Ca2+]m的比較
JC-1活性檢測結(jié)果顯示,HG組H9c2細胞的Δψm顯著低于對照組,JC-1 monomers/aggregates比值升高(P<0.05);與HG組相比,HG+Sp組的Δψm則顯著增加,JC-1 monomers/aggregates比值降低(P<0.05),見圖4。MitoSOXTM染色法檢測心肌細胞線粒體的ROS水平,結(jié)果顯示HG組的ROS水平顯著高于對照組(P<0.05);與HG組相比,HG+Sp組的ROS水平則顯著減低(P<0.05),見圖5。
Western blot結(jié)果顯示,與對照組相比,HG組H9c2細胞中caspase-9和caspase-3蛋白表達顯著增加(P<0.05);與HG組相比,HG+Sp組的H9c2細胞中caspase-9和caspase-3蛋白表達顯著減少(P<0.05),見圖6。
目前有關(guān)高血糖引起心肌細胞凋亡的作用機制還未明確。我們采用高糖條件下培養(yǎng)的大鼠心肌H9c2細胞模擬糖尿病高糖對心肌細胞損傷的病理過程。
Figure 3.Comparisons of pyruvate dehydrogenase (PDH) activity (A) and ATP content (B) among control group, HG group, and HG+Sp group. Mean±SD.n=8.#P<0.05vscontrol group;*P<0.05vsHG group.
圖3 各組心肌細胞中PDH活性和ATP濃度比較
Figure 4.Comparisons of mitochondrial membrane potential among control group, HG group, and HG+Sp group. Mean±SD.n=8.#P<0.05vscontrol group;*P<0.05vsHG group.
圖4 各組H9c2細胞Δψm水平的比較
Figure 5.Comparisons of mitochondrial ROS levels among control group, HG group, and HG+Sp group. Mean±SD.n=8.#P<0.05vscontrol group;*P<0.05vsHG group.
圖5 各組H9c2細胞線粒體ROS水平的比較
Figure 6.Comparisons of caspase-3 and caspase-9 protein levels among control group, HG group, and HG+Sp group. Mean±SD.n=6.#P<0.05vscontrol group;*P<0.05vsHG group.
圖6 各組H9c2細胞中caspase-3和caspase-9表達的比較
線粒體Ca2+攝取主要通過線粒體Ca2+單向轉(zhuǎn)運蛋白復(fù)合物(mitochondrial Ca2+uniporter complex, MCUC)實現(xiàn),蛋白質(zhì)MCU組成該復(fù)合物Ca2+跨膜轉(zhuǎn)運的孔道[1-2]。MCU通過依靠Δψm高選擇性地攝取Ca2+來調(diào)節(jié)[Ca2+]m穩(wěn)態(tài)[1-2]。我們的研究表明高糖通過MCU表達降低導(dǎo)致的活性下降使[Ca2+]m減低,這與前期研究結(jié)果一致[16-17]。但是高糖通過MCU表達降低導(dǎo)致的活性下降使[Ca2+]m降低與高糖促使心肌細胞凋亡之間的機制還不清楚。
我們的研究結(jié)果顯示MCU表達降低導(dǎo)致的活性下降,促使線粒體PDH活性、細胞ATP濃度和Δψm降低,而線粒體ROS水平升高。精胺沒有影響MCU蛋白和基因的表達,精胺可能通過變構(gòu)激活作用增加MCU對Ca2+的跨膜轉(zhuǎn)運[8-11]。同樣,心肌細胞中精胺可激動MCU增加線粒體[Ca2+]m[12-13]。[Ca2+]m可以激活線粒體基質(zhì)中的幾種三羧酸循環(huán)中脫氫酶(包括PDH),從而調(diào)節(jié)線粒體能量代謝及功能[3-4]。線粒體功能障礙和線粒體氧化應(yīng)激增強引起心肌細胞凋亡是糖尿病心肌病發(fā)病的主要病理機制[5-7]。在高糖培養(yǎng)的心肌細胞中加入精胺后,我們觀察到線粒體[Ca2+]m、線粒體PDH活性、細胞ATP濃度和Δψm都顯著升高,而ROS水平降低,caspase-9和caspase-3凋亡蛋白表達減少。因此,我們的研究結(jié)果表明在高糖培養(yǎng)的H9c2細胞中恢復(fù)線粒體[Ca2+]m對依賴Ca2+的線粒體功能產(chǎn)生正向影響?;謴?fù)高糖培養(yǎng)的的H9c2細胞中[Ca2+]m穩(wěn)態(tài)使線粒體PDH活性增加,細胞ATP濃度增加,線粒體膜電位升高,而ROS水平降低,可能是我們觀察到H9c2細胞凋亡減少的原因。
綜上所述,高糖通過降低MCU表達導(dǎo)致其活性下降可促進心肌H9c2細胞凋亡,其機制可能與線粒體的鈣離子穩(wěn)態(tài)失衡、三羧酸循環(huán)障礙和線粒體功能損傷有關(guān)。