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        晶膠固載副干酪乳桿菌及合成苯乳酸的實(shí)驗(yàn)研究

        2020-03-26 03:51:24關(guān)今韜張頌紅贠軍賢關(guān)怡新姚善涇
        關(guān)鍵詞:催化劑生物

        許 娜,關(guān)今韜,張頌紅,贠軍賢,關(guān)怡新,姚善涇

        (1.浙江工業(yè)大學(xué) 化學(xué)工程學(xué)院 綠色化學(xué)合成技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室培育基地,浙江 杭州 310032;2.浙江大學(xué) 化學(xué)工程與生物工程學(xué)院,浙江 杭州 310027)

        1 引 言

        苯乳酸是一種典型的高值有機(jī)酸,能抑制革蘭氏陰性菌、陽性菌和部分真菌的生長,具有良好的抗菌性,也是合成新型高分子材料聚苯乳酸的單體,還可以作為合成新藥的中間體,在化工、食品、材料、醫(yī)藥等領(lǐng)域具有重要用途[1-4]。由于化學(xué)法合成苯乳酸路徑復(fù)雜,存在較為嚴(yán)重的環(huán)境污染問題,目前尚不能大規(guī)模生產(chǎn),而生物法合成苯乳酸條件溫和,工藝路線簡單,是近幾年國內(nèi)外重點(diǎn)關(guān)注的研究方向[5-6]。但是,微生物發(fā)酵合成苯乳酸存在成本高、高產(chǎn)菌株缺乏、工業(yè)化困難等難題。酶法合成苯乳酸雖合成效率高于野生菌株,但其制備過程成本高,步驟復(fù)雜,穩(wěn)定性和安全性仍有待考究[7-8]。固定化全細(xì)胞生物催化劑將為解決上述問題提供新的發(fā)展方向,它將游離的微生物細(xì)胞通過化學(xué)或物理的方法截留在一定的有限的空間內(nèi),既可以保持微生物細(xì)胞原有的催化活性,又可以改善活性流失,具有易于分離、減輕底物抑制和提高穩(wěn)定性等優(yōu)點(diǎn)[9-14]。

        晶膠介質(zhì)是近年來出現(xiàn)的一種新型生物分離介質(zhì),內(nèi)有尺寸數(shù)十到數(shù)百微米的超大孔隙并相互連通,在水中有良好的連通性和彈性,可以允許含有微生物細(xì)胞或細(xì)胞碎片的復(fù)雜料液通過,在生化分離領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景[15-18]。其中聚甲基丙烯酸羥乙酯(poly(2-hydroxyethyl methacrylate),pHEMA)晶膠具有生物相容性好、機(jī)械強(qiáng)度高、制備成本低等優(yōu)點(diǎn)。SAVINA等[19]提出pHEMA晶膠以其優(yōu)秀的力學(xué)性能,可以用作細(xì)胞培養(yǎng)支架載體;NIMET等[20]將干細(xì)胞包埋于HEMA復(fù)合葡聚糖晶膠,用于修復(fù)骨損傷;EFREMENKO等[14]利用聚乙烯醇晶膠復(fù)合用于釀酒酵母細(xì)胞長時(shí)間儲存。但是,將pHEMA晶膠用作制備生物催化劑合成苯乳酸,尚未見報(bào)道。

        本文通過結(jié)晶致孔法制備pHEMA晶膠,然后在其骨架上接枝帶有胺基陰離子的甲基丙烯酸二甲氨基乙酯(2-(dimethylamino)ethyl methacrylate,DMAEMA)得到陰離子交換晶膠,將該晶膠與微生物表面的負(fù)電基團(tuán)通過靜電力吸附結(jié)合,制得復(fù)合生物催化劑,并考察了所得復(fù)合生物催化劑合成苯乳酸的能力。

        2 材料和方法

        2.1 材料

        2.1.1 試劑

        L-苯乳酸(phenyllactic acid,PLA)、甲基丙烯酸羥乙酯(2-hydroxyethyl methacrylate,HEMA)、聚乙二醇二丙烯酸酯(poly(ethylene glycol) diacrylate,PEGDA)、四甲基乙二胺(N,N,N,N’–tetramethylethylenediamine,TEMED)、甲醇及牛血清白蛋白(Bovine albumin serum,BSA)購于Sigma公司;三氟乙酸、DMAEMA購于阿拉丁試劑;葡萄糖、蛋白胨、牛肉膏、酵母膏、檸檬酸氫二銨及無水乙酸鈉購于生工生物工程有限公司;硫酸鎂、硫酸錳、磷酸氫二鉀、吐溫80及鹽酸購于華東醫(yī)藥股份有限公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        2.1.2 儀器

        Agilent 1260 infinity高效液相色譜系統(tǒng)(Agilent,美國);CR21N高速冷凍離心機(jī)(Hitachi Koki,日本);Milli-Q Synthesis超純水機(jī)(Millipore,美國);SPX-150B-Z生化培養(yǎng)箱(上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠);HZ-2411KB疊式中型恒溫?fù)u床(太倉市華利達(dá)實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司);HS-1300-U超凈工作臺(蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司);DW-HL290超低溫冷凍儲存箱(中科美菱);LDZX-50KBS立式壓力蒸汽滅菌器(上海申安醫(yī)療器械廠);THD-3030低溫恒溫槽,寧波天恒儀器廠。

        2.1.3 菌種和培養(yǎng)基

        副干酪乳桿菌L.paracasei16C3菌株分離自泡菜,本課題組保藏。

        肉湯培養(yǎng)基(MRS培養(yǎng)基):葡萄糖20 mg?mL-1,蛋白胨10 mg?mL-1,酵母膏5 mg?mL-1,牛肉膏10 mg?mL-1,檸檬酸二胺 2 mg?mL-1,無水乙酸鈉 5 mg?mL-1,硫酸錳 0.25 mg?mL-1,硫酸鎂 0.58 mg?mL-1,磷酸氫二鉀 2 mg?mL-1,吐溫 801 mL?L-1。

        2.2 實(shí)驗(yàn)方法

        2.2.1 陰離子交換晶膠制備

        實(shí)驗(yàn)使用的陰離子交換晶膠pHEMA-DMAEMA,采用課題組建立的結(jié)晶致孔、聚合反應(yīng)和接枝修飾方法進(jìn)行制備[16-17]。在直徑4~6 mm,高為10 mm的玻璃管中通過低溫冷凍結(jié)晶致孔制備得到晶膠基質(zhì),按3~5 mm的厚度切片,然后用濃度為0.5 mol?L-1的DMAEMA單體進(jìn)行接枝而得。

        2.2.2 陰離子交換晶膠基礎(chǔ)性能測試[21]

        陰離子交換晶膠的孔隙率采用稱重法測定;吸附容量通過考察晶膠介質(zhì)對模型蛋白BSA的吸附進(jìn)行評價(jià):用磷酸鹽緩沖液(0.02 mol?L-1,pH 7.2)在不同流速(1、2和3 cm?min-1)下進(jìn)行吸附層析,測定陰離子交換晶膠介質(zhì)的吸附容量,蛋白濃度的測量采用考馬斯亮藍(lán)法;晶膠介質(zhì)內(nèi)部結(jié)構(gòu)通過掃描電鏡表征:將晶膠在不同體積濃度(10%~100%)的乙醇溶液中進(jìn)行梯度脫水、冷凍干燥,然后用離子濺射儀進(jìn)行噴金處理,最后用掃描電鏡觀察并拍攝照片。

        2.2.3 復(fù)合生物催化劑的制備與微觀結(jié)構(gòu)表征

        將甘油保藏的副干酪乳桿菌菌株經(jīng)活化一次,按6%接種量接種于肉湯培養(yǎng)基中,35 ℃靜置培養(yǎng)8 h,再將干燥后的pHEMA陰離子交換晶膠投入發(fā)酵液,于35 ℃繼續(xù)靜置培養(yǎng)16 h,瀝干晶膠表面水分,得到pHEMA種子晶膠。最后,將pHEMA種子晶膠投入肉湯培養(yǎng)基中,繼續(xù)35 ℃靜置培養(yǎng)48 h,瀝干晶膠表面水分,得到復(fù)合生物催化劑。其內(nèi)部結(jié)構(gòu)通過掃描電鏡進(jìn)行表征,過程與上述晶膠介質(zhì)相同。

        2.2.4 復(fù)合生物催化劑發(fā)酵合成苯乳酸

        將pHEMA種子晶膠于30 mL培養(yǎng)基中發(fā)酵培養(yǎng),以傳統(tǒng)發(fā)酵方式為對照實(shí)驗(yàn),每隔12 h(12、24、36、48、60、72和84 h)取樣,考察不同時(shí)間點(diǎn)發(fā)酵液中苯乳酸濃度。

        2.2.5 復(fù)合生物催化劑轉(zhuǎn)化合成苯乳酸

        復(fù)合生物催化劑和無晶膠的全細(xì)胞催化劑經(jīng)透性化處理后,以5 mL 0.1 mol?L-1的PB 8.0緩沖溶液為底物溶液,葡萄糖濃度為2 mg?mL-1,調(diào)節(jié)苯丙氨酸濃度分別為0.5、1、2和3 mg?mL-1,搖床轉(zhuǎn)速為75 r?min-1,搖床控溫35 ℃,轉(zhuǎn)化48 h,考察2種生物催化劑生物轉(zhuǎn)化能力,其中復(fù)合生物催化劑的用量按其固載細(xì)胞的量為100 mg?mL-1計(jì)算,無晶膠的全細(xì)胞催化劑用量也為100 mg?mL-1。

        3 結(jié)果與討論

        3.1 陰離子交換晶膠的形態(tài)結(jié)構(gòu)分析

        圖1是陰離子交換晶膠切片的形貌特征和內(nèi)部微觀結(jié)構(gòu)掃描電鏡圖像。從圖中可見,pHEMA-DMAEMA陰離子交換晶膠內(nèi)部具有相互連通的超大孔隙,其孔徑范圍為10~200 μm,介質(zhì)壁面光滑??紫堵史从沉司z介質(zhì)內(nèi)流體流動(dòng)空間的相對大小,以水為測試流體,測得該晶膠的有效孔隙率為 75.1%,絕干孔隙率為 82.7%,說明該晶膠介質(zhì)孔隙空間大,相互連通形成了網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),適用于微生物細(xì)胞的生長,有利于底物和代謝產(chǎn)物的交換和傳質(zhì)。

        圖1 陰離子交換pHEMA晶膠的形貌與微觀結(jié)構(gòu)Fig.1 Morphology and microstructure of the anion exchange pHEMA cryogels

        3.2 陰離子交換晶膠的吸附性能分析

        文獻(xiàn)中常以BSA為模型蛋白,來間接評價(jià)陰離子交換晶膠介質(zhì)吸附容量和吸附性能[15-18]。因此,以BSA為模型蛋白質(zhì),在不同流速條件下對pHEMA-DMAEMA晶膠介質(zhì)的吸附性能進(jìn)行了研究。用磷酸鹽緩沖液(0.02 mol?L-1,pH 7.2)平衡床柱,上樣蛋白濃度 1 mg?mL-1,洗脫液為 1 mol?L-1NaCl (相同磷酸鹽緩沖液配置)。不同流速下BSA的吸附曲線和吸附容量如圖2所示??梢?,不同流速下的BSA層析曲線無明顯差異,同時(shí)洗脫峰對稱性較好。通常,用于生物分離的pHEMA陰離子交換晶膠的吸附容量較大,例如DONG等[16]制備的pHEMA-DMAEMA晶膠,其在1、2和3 cm?min-1流速條件下對BSA的吸附容量分別為4.04、3.71和3.69 mg?mL-1。因此,通過控制接枝條件,適當(dāng)降低吸附容量,以便適度吸附細(xì)胞,形成復(fù)合生物催化劑,結(jié)果見圖2(b)??梢姡诹魉?、2和3 cm?min-1流速下,pHEMA-DMAEMA晶膠介質(zhì)對BSA的吸附容量分別為0.75、0.63和0.62 mg?mL-1,說明pHEMA晶膠具有一定數(shù)量的陰離子交換基團(tuán),適于后續(xù)吸附細(xì)胞,適合用于制備復(fù)合生物催化劑。

        圖2 不同流速下晶膠對BSA的吸附層析性能與吸附容量Fig.2 Chromatographic behaviors and BSA absorption capacities of the pHEMA-DMAEMA cryogel at various flow rates

        3.3 晶膠副干酪乳桿菌復(fù)合生物催化劑表征

        復(fù)合生物催化劑內(nèi)部結(jié)構(gòu)如圖3所示。由圖中可以看出,大量桿狀的副干酪乳桿菌在晶膠孔隙內(nèi)沉積,并成堆生長,與晶膠孔隙內(nèi)壁緊密結(jié)合。基于晶膠介質(zhì)較大的比表面積和較多的吸附位點(diǎn),形成了高濃度生物催化劑。

        圖3 晶膠復(fù)合生物催化劑內(nèi)部結(jié)構(gòu)電鏡照片F(xiàn)ig.3 SEM micrographs of the cell-immobilized cryogel biocatalysts

        3.4 復(fù)合生物催化劑發(fā)酵合成苯乳酸

        通過高效液相色譜分析發(fā)酵上清液中的苯乳酸含量,濃度變化如圖4所示。從圖中可以看出,發(fā)酵開始后12 h內(nèi),代謝苯乳酸濃度快速上升后逐漸趨平,到24 h時(shí),復(fù)合生物催化劑代謝的苯乳酸含量明顯高于傳統(tǒng)發(fā)酵下的細(xì)胞代謝,由0.71 mg?mL-1提升到0.95 mg?mL-1。圖5是復(fù)合生物催化劑發(fā)酵過程中生物量變化。由圖可見,按常規(guī)發(fā)酵,無晶膠時(shí)發(fā)酵液中的細(xì)胞生物量比較低,但隨時(shí)間呈穩(wěn)定上升趨勢;發(fā)酵36 h后,生物量趨于平衡,細(xì)胞干重最高為 2.83 mg?mL-1。而副干酪乳桿菌在pHEMA-DMAEMA陰離子交換載體中生長的速度迅速上升,經(jīng)過72 h發(fā)酵,細(xì)胞干重達(dá)到最高,為7.10 mg?mL-1,細(xì)胞濃度是無晶膠常規(guī)發(fā)酵時(shí)的 2.5倍。因此,以離子交換晶膠為載體,利用晶膠對副干酪乳桿菌細(xì)胞的吸附作用,在發(fā)酵過程中可以形成高濃度生物催化劑,通過減輕底物抑制和提高酶系的穩(wěn)定性,提高了發(fā)酵過程的生物量,這與本課題組關(guān)于晶膠微球固定化細(xì)胞培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)效果一致[22],進(jìn)而提高了苯乳酸產(chǎn)量。

        圖4 晶膠復(fù)合生物催化劑發(fā)酵與無晶膠發(fā)酵時(shí)產(chǎn)苯乳酸濃度的對比Fig.4 Comparison of PLA concentrations with and without cell-immobilized cryogel biocatalysts during fermentation synthesis

        3.5 復(fù)合生物催化劑轉(zhuǎn)化苯丙氨酸合成苯乳酸

        以苯丙氨酸為底物,利用復(fù)合生物催化劑進(jìn)行生物轉(zhuǎn)化,在不同底物濃度下合成苯乳酸,如圖6所示。從圖中可見,當(dāng)?shù)孜餄舛葹?.5 mg?mL-1時(shí),復(fù)合生物催化劑轉(zhuǎn)化生成的苯乳酸的產(chǎn)量明顯大于全細(xì)胞催化下的產(chǎn)量,苯乳酸濃度最高為0.15 mg?mL-1,苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率達(dá)30%,約為全細(xì)胞催化劑苯乳酸產(chǎn)量的3倍;當(dāng)?shù)孜餄舛葹? mg?mL-1時(shí),復(fù)合生物催化劑的轉(zhuǎn)化能力仍然大于全細(xì)胞催化劑,苯乳酸濃度最高為0.23 mg?mL-1,轉(zhuǎn)化率可達(dá) 20%,約為全細(xì)胞催化劑下苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率的2.5倍;當(dāng)?shù)孜餄舛葹? mg?mL-1時(shí),苯乳酸濃度最高為0.23 mg?mL-1,苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率可達(dá) 10%,約為全細(xì)胞催化劑苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率 1.5倍;當(dāng)?shù)孜餄舛葹? mg?mL-1時(shí),苯乳酸濃度最高為0.41 mg?mL-1,苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率仍為10% 與全細(xì)胞催化劑轉(zhuǎn)化能力相當(dāng)。 由此可以推斷,細(xì)胞表面帶負(fù)荷,晶膠骨架吸附位點(diǎn)通過離子交換作用將細(xì)胞固定在孔隙內(nèi)表面,在一定程度上提高了細(xì)胞內(nèi)酶系的穩(wěn)定性,從而提高了細(xì)胞對 PHE底物和苯乳酸產(chǎn)物抑制的耐受性;同時(shí),復(fù)合生物催化劑內(nèi)發(fā)達(dá)的孔隙有利于底物充分向細(xì)胞表面擴(kuò)散[22];當(dāng)?shù)孜餄舛仍降蜁r(shí),單位體積晶膠內(nèi)細(xì)胞生物量充足,大部分苯丙氨酸有較高的概率擴(kuò)散到達(dá)細(xì)胞表面和內(nèi)部,在酶的催化下進(jìn)行轉(zhuǎn)化合成苯乳酸,轉(zhuǎn)化率高;隨底物濃度的增大,晶膠內(nèi)細(xì)胞生物量不足以為所有的苯丙氨酸底物分子提供反應(yīng)機(jī)會,一部分苯丙氨酸分子將不能到達(dá)酶位點(diǎn),底物利用率低,從而轉(zhuǎn)化率下降,但合成的苯乳酸產(chǎn)物濃度仍然提高。

        圖5 晶膠復(fù)合生物催化劑發(fā)酵與無晶膠發(fā)酵過程中細(xì)胞干重隨時(shí)間變化的對比Fig.5 Comparison of dried cell concentrations with and without cell-immobilized cryogel biocatalysts during fermentation synthesis

        圖6 不同底物濃度下晶膠復(fù)合生物催化劑與使用全細(xì)胞催化劑轉(zhuǎn)化合成苯乳酸的對比Fig.6 Comparison of PLA concentrations and conversion ratios with cell-immobilized cryogel biocatalysts and whole-cell biocatalysts during biotransformation synthesis

        4 結(jié) 論

        利用陰離子交換功能 pHEMA-DMAEMA晶膠對副干酪乳桿菌的吸附作用,在發(fā)酵過程中可以形成高菌體濃度復(fù)合生物催化劑,能夠用于苯乳酸的發(fā)酵合成和轉(zhuǎn)化合成。pHEMA-DMAEMA晶膠內(nèi)部有尺寸10~200 μm量級的超大孔隙,其相互連通且十分發(fā)達(dá),有效孔隙率75.1%,絕干孔隙率為82.7%,對BSA蛋白吸附容量為0.75 mg?mL-1,適于吸附固定副干酪乳桿菌,并提供有利于菌體生長。復(fù)合生物催化劑發(fā)酵的生物量及苯乳酸產(chǎn)量均明顯高于常規(guī)游離細(xì)胞發(fā)酵情況,其生物量由常規(guī)的2.83 mg?mL-1提高到7.1 mg?mL-1,苯乳酸產(chǎn)量由常規(guī)的0.71 mg?mL-1提升到0.95 mg?mL-1。復(fù)合生物催化劑轉(zhuǎn)化生成的苯乳酸產(chǎn)量也明顯高于常規(guī)的全細(xì)胞催化劑,當(dāng)?shù)孜锉奖彼岬臐舛葹?.5 mg?mL-1時(shí),苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率高達(dá)30%,是全細(xì)胞催化劑的3倍;當(dāng)?shù)孜锉奖彼岬臐舛葹? mg?mL-1時(shí),苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率可達(dá)20%,是全細(xì)胞催化劑的2.5倍;當(dāng)?shù)孜锉奖彼岬臐舛仍黾又? mg?mL-1時(shí),苯丙氨酸轉(zhuǎn)化率為10%,是全細(xì)胞催化劑的 1.5倍。因此,復(fù)合型生物催化劑合成苯乳酸的性能明顯優(yōu)于常規(guī)全細(xì)胞催化劑,且制備過程簡單,分離容易,安全性好,易于放大,具有廣闊的應(yīng)用前景。

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