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        非洲豬瘟病毒SYBR Green I實時熒光定量PCR檢測方法的建立

        2020-03-26 06:59:48賈云飛趙福杰朱靜靜王超群吳亞楠魏戰(zhàn)勇
        關(guān)鍵詞:標(biāo)準(zhǔn)檢測方法

        賈云飛, 趙福杰, 朱靜靜, 王超群, 吳亞楠, 魏戰(zhàn)勇,4

        (1.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)經(jīng)濟(jì)與管理學(xué)院,河南 鄭州 450002;2.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)牧醫(yī)工程學(xué)院,河南 鄭州 450002;3.許昌海關(guān),河南 許昌 461000;4.河南省動物性食品安全重點(diǎn)實驗室,河南 鄭州 450002)

        非洲豬瘟(African swine fever, ASF)是由非洲豬瘟病毒(African swine fever virus, ASFV)引起的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病[1],最早于1921年在肯尼亞暴發(fā),隨后相繼擴(kuò)散至歐洲、中美洲、非洲和亞洲的多個國家[2]。該病臨床癥狀以高熱、皮膚發(fā)紺、呼吸障礙和神經(jīng)癥狀為主,病程短、發(fā)病率和死亡率幾乎達(dá)100%,被世界動物衛(wèi)生組織(OIE)列為法定報告的動物疫病,也是中國動物病原微生物名錄中規(guī)定的一類動物傳染病[3-4]。中國首例非洲豬瘟疫情2018-08-03在遼寧沈陽暴發(fā)[5],隨后疫情持續(xù)在中國蔓延,迅速波及大陸地區(qū)全部省份,2019-05-10,隨著香港上水屠宰場內(nèi)一頭死亡生豬的內(nèi)臟樣本中檢測出非洲豬瘟病毒,疫情擴(kuò)大至香港,給中國生豬養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失,同時也影響著國內(nèi)豬肉市場的供需穩(wěn)定。

        雖然首次發(fā)現(xiàn)ASFV至今已將近100 a,各國科學(xué)家也一直致力于ASFV病原及免疫學(xué)相關(guān)方面的研究,但目前世界上仍沒有可有效預(yù)防ASFV感染的疫苗,也無有效的治療藥物,僅能依賴有限的抗原檢測方法對ASFV感染開展早期診斷,進(jìn)而通過撲殺感染動物來實現(xiàn)對非洲豬瘟疫情的控制。因此,對ASFV進(jìn)行快速、準(zhǔn)確的診斷在疫情防控方面尤為重要。但是,由于ASF與豬瘟等其他出血性豬病的發(fā)病癥狀非常相似,很難通過臨床診斷的方法進(jìn)行區(qū)分,ASF的確診只能依靠實驗室方法。目前,ASFV核酸的PCR和熒光定量PCR檢測方法是世界動物衛(wèi)生組織推薦的抗原檢測方法,研究人員建立過多種針對ASFV不同抗原的PCR檢測方法。AGUERO等[6]和曾少靈等[7]曾根據(jù)ASFVVP72基因設(shè)計引物,建立了用于ASFV 早期感染的快速診斷方法;吳憶春等[8]研制了ASFV快速檢測PCR試劑盒;BASTO等[9]建立了可用于檢測蜱蟲體內(nèi)ASFV的套氏PCR方法;崔尚金等[10]建立了ASFV的高效納米PCR檢測方法;KING 等[11]、李維彬等[12]、張泉等[13]、黃萍等[14]、TIGNON 等[15]、李洪利等[16]多個國內(nèi)外研究團(tuán)隊先后以ASFVVP72基因為靶基因建立基于TaqMan的ASFV實時熒光定量PCR檢測方法;曾少靈等[17]和董志珍等[18]也分別根據(jù)ASFVVP73和P54基因建立過 TaqMan 實時熒光定量 PCR檢測方法;郭少平等[19]根據(jù) ASFVK205R基因建立TaqMan實時熒光定量 PCR 檢測方法;MCKILLEN 等[20]根據(jù)9GL基因建立MGB探針實時熒光定量PCR 檢測方法。但是這些PCR檢測方法的靈敏度和特異性均相對偏低。因此,本研究擬建立一種更加靈敏、準(zhǔn)確的ASFV檢測方法。

        ASFV基因組約170~190 kb,含有151個ORF,可編碼150~200種蛋白質(zhì)[21]。其中,P72基因在不同ASFV間較為保守,因此可被用作ASFV檢測中的靶基因。在比對了多株ASFV的P72基因序列后,從中確定了P72基因的保守區(qū)域,根據(jù)中國動物衛(wèi)生與流行病學(xué)中心分離到的中國流行株ASFV-SY18的序列[4]設(shè)計了特異性引物,摸索了各種試驗條件后建立了ASFV的SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料

        1.1.1 病毒核酸樣品及質(zhì)粒 PEDV、PDCoV、HP-PRRSV和PRV的核酸樣品均由河南省動物性食品安全重點(diǎn)實驗室提取和保存。連接有ASFVP72目的基因的質(zhì)粒由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,命名為ASFV-P72-pUC57。其中,目的片段長度417 bp,連于pUC57載體。

        1.1.2 主要試劑及儀器 UltraSYBR Mixture購自于北京康為世紀(jì)生物科技有限公司;CFX96實時熒光定量PCR儀購自于Bio-Rad公司(美國)。

        1.1.3 定量引物的設(shè)計與合成 根據(jù)1.1.1中合成的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒ASFV-P72-pUC57的基因序列,選取其保守區(qū),應(yīng)用Primer 5.0基因分析軟件設(shè)計多對特異性引物,然后在GenBank數(shù)據(jù)庫上用BLAST進(jìn)行特異性和保守性的比較分析,最終選定的引物序列見表1。引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。

        表1 檢測ASFV-P72的相關(guān)引物與探針信息

        1.2 試驗方法

        1.2.1 熒光定量RT-PCR反應(yīng)條件與體系優(yōu)化 以1.0×105copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒為模板,反應(yīng)體系設(shè)為25 μL,在反應(yīng)體系中加入引物P72 F2/P72 R2,使其終濃度分別為0.20、0.40、0.60、1.00 μmol·L-1,根據(jù)RT-PCR結(jié)果,遵循Ct值最小和熒光閾值最高原則,并確保熔解曲線無非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物,進(jìn)行引物濃度的優(yōu)化篩選。將優(yōu)化后的反應(yīng)體系分別在Tm±8 ℃內(nèi)設(shè)置50~60 ℃的10個退火溫度,進(jìn)行反應(yīng)條件的優(yōu)化,最終確定最佳反應(yīng)體系與反應(yīng)條件。

        1.2.2 構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線 計算標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒濃度,用ddH2O進(jìn)行10倍倍比稀釋,稀釋成10個梯度(1.0×102~1.0×108copies·μL-1)作為模板。采用1.2.1中優(yōu)化后的反應(yīng)體系與反應(yīng)條件進(jìn)行熒光定量RT-PCR擴(kuò)增,根據(jù)所得的Ct值與對應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒濃度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.2.3 靈敏度試驗 以1.0~1.0×109copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒分別做模板,對SYBR Green I熒光定量PCR方法進(jìn)行敏感性測定,根據(jù)所得熔解曲線,獲得其最低檢出拷貝數(shù)。

        1.2.4 特異性試驗 按照1.2.1建立的反應(yīng)體系,分別以PEDV、PDCoV、HP-PRRSV、PRV核酸為模板,同時設(shè)1.0×107copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒為陽性對照,以ddH2O為陰性對照,進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增,檢測所建方法的特異性。

        1.2.5 重復(fù)性試驗 選取1.0×102、1.0×105、1.0×108copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒分別作為模板,進(jìn)行3次批內(nèi)與批間熒光定量RT-PCR反應(yīng)擴(kuò)增,根據(jù)Ct值計算變異系數(shù),驗證所建方法的可重復(fù)性。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 反應(yīng)條件與反應(yīng)體系優(yōu)化

        最終確定優(yōu)化后的SYBR Green I實時熒光定量PCR體系為2×UltraSYBR Mixture 12.5 μL, ddH2O 8.5 μL, P72 F2/P72 R2引物各1 μL,標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒模板2.0 μL。最佳反應(yīng)條件為:95 ℃,10 s;55 ℃,30 s;72 ℃,30 s;共40個循環(huán);95 ℃,15 s;65 ℃ 至 95 ℃,每0.5 ℃·s-1為間隔繪制熔解曲線。該條件下繪制的熔解曲線峰單一,在熔解溫度Tm=(80±0.5) ℃時出現(xiàn)特異性峰,無非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物和引物二聚體,表明該反應(yīng)特異性良好(圖1)。

        1. 標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒組;2. 陰性對照。1. Standard plasmid group;2. Negative control.

        2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        將建立的SYBR Green I熒光定量PCR方法對1.0×102~1.0×108copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒進(jìn)行定量檢測,以讀取的Ct值為y軸,以標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒濃度為x軸繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,獲得標(biāo)準(zhǔn)方程y=-3.318 4x+39.085, 相關(guān)系數(shù)R2=0.999 8(圖2),表明該檢測方法的Ct值與10倍倍比稀釋的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒之間具有良好的線性關(guān)系。

        2.3 靈敏性檢測

        用建立的SYBR Green I熒光定量PCR方法對1.0~1.0×109copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒進(jìn)行定量敏感性檢測。結(jié)果顯示該方法的最低檢出量為1.0 copies·μL-1(圖3),表明該檢測方法均具有極高的靈敏性。

        圖2 SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法的標(biāo)準(zhǔn)曲線

        2.4 特異性檢測

        用建立的SYBR Green I熒光定量PCR方法檢測PEDV、PDCoV、HP-PRRSV、PRV核酸樣品,以1.0×107copy·μL-1標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒為陽性對照,發(fā)現(xiàn)其余病毒均未出現(xiàn)陽性擴(kuò)增,并且無非特異性擴(kuò)增條帶(圖4),表明該檢測方法具有良好的特異性。

        2.5 重復(fù)性檢測

        對建立的SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法進(jìn)行重復(fù)性試驗。以1.0×102、1.0×105、1.0×108copies·μL-1的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒分別作為模板,進(jìn)行3次批內(nèi)與批間熒光定量PCR反應(yīng)擴(kuò)增,同一質(zhì)粒濃度的擴(kuò)增Ct值在批次內(nèi)與批次間都非常穩(wěn)定。計算批內(nèi)與批間Ct值的變異系數(shù)均小于1%(表2),表明該檢測方法具有良好的可重復(fù)性。

        圖3 SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法的靈敏性檢測結(jié)果

        圖4 SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法的特異性試驗結(jié)果(A)及熔解曲線分析(B)

        表2 SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法的重復(fù)性試驗結(jié)果

        3 討論

        在ASF的檢測中,病原PCR檢測具有簡單、快速、靈敏度高、特異性好等特點(diǎn),是目前最常用的ASFV實驗室檢測方法,也是世界動物衛(wèi)生組織推薦的ASFV抗原檢測方法。實時熒光定量PCR具有更高的敏感性和特異性,并且可以用于計算ASFV的相對或絕對含量,也被越來越多地應(yīng)用到了ASFV的檢測工作中,尤其還有學(xué)者利用不同病毒的保守基因建立了多重?zé)晒舛縋CR檢測方法,實現(xiàn)了ASFV和多種其他病原的鑒別診斷。MCKILLEN 等[22]建立了可同時鑒別 PRV、ASFV、豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)和豬細(xì)小病毒(PPV)的實時熒光定量 PCR 分子信標(biāo)檢測方法;于恒智等[23]建立了可同時鑒別ASFV、小反芻獸疫病毒(PPRV)、西尼羅河熱病毒(WNV)、亨德拉病毒(HeV)和尼帕病毒(NiV)等5種外來動物疫病的并聯(lián)熒光定量PCR檢測方法。但是,這些ASFV熒光定量檢測方法幾乎都是TaqMan探針法,操作中需要用到熒光標(biāo)記的探針,價格昂貴導(dǎo)致檢測成本很高,而本研究建立的SYBR Green I熒光定量檢測方法可以免于合成探針從而降低檢測成本,并且檢測靈敏性達(dá)到了1.0×100copies·μL-1,明顯優(yōu)于世界動物衛(wèi)生組織推薦的PCR檢測方法。

        除了檢測靈敏度極強(qiáng)以外,本研究建立的SYBR Green I熒光定量PCR檢測方法的特異性和重復(fù)性結(jié)果顯示也很好,可以準(zhǔn)確地從含豬流行性腹瀉病毒、豬δ冠狀病毒、高致病性豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬偽狂犬病毒等病原的樣品中鑒別檢測出ASFV。此外,本研究中用到的檢測基因P72,在ASFV毒株間序列相對保守,是ASFV熒光定量PCR檢測中的常用檢測基因,常被用于ASFV診斷和鑒別檢測方法的建立中;標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒序列來源于CN201801病毒株(GenBank:MH722357.1),它是由中國動物衛(wèi)生與流行病學(xué)中心于2019年分離鑒定的中國ASF疫情的流行毒株,該病毒株的P72基因序列與格魯吉亞Georgia 2007/1分離株、俄羅斯 Krasnodar 2012和Irkutsk 2017分離株、 以及愛沙尼亞Estonia 2014分離株的P72序列有100% 相似性,同屬于ASFV 基因型II型毒株,與其他基因型的ASFV毒株存在一定的序列差異[4]。因此,基于此毒株基因序列設(shè)計的特異性引物,對中國臨床樣品的檢測有更高的特異性,可以更加準(zhǔn)確地對中國目前流行的非洲豬瘟病毒株進(jìn)行檢測和診斷。

        本研究成功建立了一種基于SYBR Green I的ASFV熒光定量PCR檢測方法,且靈敏性、特異性和重復(fù)性都較好,可用于中國非洲豬瘟的準(zhǔn)確診斷及病原的定量分析,有助于國內(nèi)ASFV疫情的監(jiān)測和防控。

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